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Annona cherimolia Mill.: Histología e histoquímica de raíz, tallo, hoja y fruto

Villar, A.,Cabo, J.,Ríos, J.L.,Barbera, J. M.

Abstract

Se ha realizado el estudio histológico e bistoquímico de la raíz, tallo, boja y fruto de Annona cherimolia Mill. Desde el punto de vista histoquímico, cabe destacar la presencia de alcaloides, flavonoides y taminos como componentes más abundantes, existiendo también aceites esenciales.

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ANNONA CHERIMOLIA MIL.: HISTOLOGIA E HISTOQUIMICA DE RAIZ, TALLO, HOJA Y FRUTO YILLAR, A.*; CABO, J.**; RIos, J. L.*; BARBERA, J. M.* RESUMEN Se ha realizado el estudio histológico e bistoquímico de la raíz, tallo, boja y fruto de Annona cherimo/ia Mili. Desde el punto de vista histoquímico, cabe destacar la presencia de alca loides, flavonoides y taminos como componentes más abundantes, existiendo tam bién aceites esenciales. ABSTRACT A histologic and histochemical study of roots, stems, leaves and fruits of Annona cherimolia MilI. has been carried out. From a bistochemical point of view alkaloids, flavonoids and tanins were tbe most quantitatively important compounds. Essential oil was also detected. RESUME Une étude histologique et bistocbimique a été pratiquée sur les racines, les tiges, les feuilles et les fruits de l'Annona cherimolia MilI. Les alcalo'ides, les flavono'ides et les tanins 'on la plus forte importance au point de vue bistologique. On a mis aussi en evidence la teneur en builes essentielles. * Departamento de Farmacognosia y Farmacodinamia de la Facultad de Farmacia de la Universidad de Valencia. ** Departamento de Farmacognosia y Farmacodinamia de la Facultad de Farmacia de la Universidad de Granada. Ars Pharmaceutica. Tomo XXIV. Núm. 3, 1983 232 ARS PHARMACEUTICA INTRODUCCION El chirimoyo es un árbol frutal de origen tropical que alcanza 7,5 m de altura en su plenitud (4). En España se ha logrado cultivar principalmente en zonas costeras de Málaga y Granada, donde las especies aclimatadas no sobrepasan los 4 m de altura. La Costa Gra nadina (concretamente Jete, Otívar, Itrabo y Almunécar, que en cierran el llamado «Valle del chirimoyo»), produce la mayoría de los frutos que se consumen en nuestro país. La escasez de trabajos histológicos e histoquímicos que se han efectuado de las Annonáceas, nos ha impulsado a la realización de este trabajo, ya que pensamos que valía la pena conocer la es tructura histológica e histoquímica de Annona cherimolia MilI. Así, tan sólo se han localizado dos trabajos de cierto interés. ROTH (7) realiza un estudio histológico comparativo de la corteza de cinco especies (Anaxagorea o «yarayara amarilla», Rollinia multiflora, Unonopsis glucopetala, Xilopia nítida var. nerviosa y Xilopia frutes cens). BLUDEN y cols. (1) estudiaron la histología de fruto de la especie Goniothalamus andersonii, de estructura muy similar a la de la chirimoya. MATERIAL y METO DOS Hemos trabajado con material fresco, recientemente recolec tado en el llamado «Valle del chirimoyo» entre los meses de Noviem bre y Diciembre, y nos hemos valido de tres tipos de microtomo: el manual, el criostato o microtomo de congelación (Brygh Crios tats, Freestanding) y el microtomo Erma con platina congeladora electrónica Komatsu. Para la observación de los cortes hemos empleado un micros copio binocular PZO serie ML-5 con un sistema fotográfico Nikkon. También se ha utilizado un fotomicroscopio Zeiss modelo IIJ, con capacidad para realizar estudios con luz ultravioleta. Se han utilizado dos grupos de reactivos. En el primero in cluímos aquellos que nos permiten observar y dilucidar estructuras, clasificándolos en: Aclarantes (3): agua, glicerina, soluciones al 20% de sosa, potasa e hipoclorito sódico, y mezcla aclarante (glicerina, hidrato de cloral yagua en proporción 5:3:2). De lindón de membra nas: SCHWEIZER (3), cloroyoduro de cinc (6), Múltiples: STEIN- ARS PHARMACEUTICA 233 METZ (8), TUCAKOV, verde de yodo acético y rojo congo (5) y hematoxilina verde de yodo acético (2). En el segundo grupo incluí mas aquellos que nos permiten localizar algunos principios, posibles responsables de las acciones farmacológicas, clasificándolos en: Reactivos de grasas y esencias (6): alcohol de 96° y Sudan lII. Reactivos de sustancias alcaloídicas (8): Dragendorff, Bouchardat y Técnica diferencial de Errera (9). Reactivos de taninos y otras sustancias polifenólicas (8): cloruro fé rrico, v.ainillina clorhídrica y dicromato potásico. RESULTADOS y DrscusION Histología La raíz (fig. 1) presenta estructura secundaria, con una capa de súber (s), producto de la actividad meristemática del felógeno, seguida de felodermo (f). debajo se encuentra el parénquima corti cal (p) que en su parte más interna contiene células alargadas de pared lignificada (ce) que constituyen un conjunto de fibras peri cíclicas. El sistema conductor está formado por haces .Ieptoconcén tricos (li, c, le y v). Los radios medulares (r) tienen incrustaciones de oxalato cálcico (cristales que no desaparecen al tratarlos con ácidos débiles como el acético). 'Rlf'¡<-----<: e c===:::cJ j ------le ----- v Fig. 1. -RAIZ: súber (s), felodermo (1), parénquima cortical (p), fibras pericíelicas (ce), líber (li), eambium (e), leño (le), vasos (v) y radios medulares (r). 234 ARS PHARMACEUTICA El tallo (fig. 2) presenta estructura secundaria, con una capa de súber estratificado (s) seguida de felógeno (f) y felodermo (fd). El parénquima cortical (pc) contiene esclerénquima (e) formado por las llamadas «células pétreas» y células esclerenquimatosas (ce) for mando anillos discontínuos. El sistema conductor (líc, c, le y v) está formado por haces leptoconcéntricos. Los radios medulares (r) son bastante más cortos que los encontrados en la raíz, conteniendo también incrustaciones de oxalato cálcico. Sigue el colénquima (cl) y el parénquima medular (pm) que contiene incrustaciones de oxa lato cálcico formando pequeñas drusas. La hoja (fig. 3), protegida por una capa de cutina en haz (ch) y envés (ce) presenta mesofilo heterogéneo asimétrico -epidermis del haz (eh) y del envés (ee)- con células colenquimatosas en el nervio medio (co), parénquima clorofílico (pc) y parénquima lagu nar (pI) con dos filas de' parénquima en empalizada (pc) pelos uni celulares largos (p) y nerviaciones muy lignificadas (li, le y v) que le proporcionan una fuerte consistencia. Fig. 2. -TALLO: Súber (s), felógeno (f),. felodermo (fd), parénquima cortical (pe), células eselerenquimatosas (ce), eselerénquima (e), líber (li), eambium (e), leño (le), vasos (v), radios medulares (r), colénquima (el) y parénquima medular (pm). ARS PHARMACEUTICA 235 Fig. 3. -HOJA: cutina en haz (eh) y en vés (ce), epidermis del haz (eh) y del envés (ee), células colenquimatosas (co), parénquima clorofílico (pe), parénqui ma lagunar (pI), pelos (p), líber (Ji), leño (le) y vasos (v). Fig. 4.-FRUTO: epicarpio (Ep), cutí cula (e), epidermis (e), pelos (p), dru sas (d), mesocarpio (M), esclerénqui ma (s), endocarpio (Eh) y vasos (v). El fruto (fig. 4) presenta un epicarpio (ep) formado por una cutícula (c), epidermis (e), pelos (p) y parénquima subepidérmico con drusas (d); un mesocarpio (M) constituído por parénquima con esclerénquima (s) y drusas; y un endocarpio (En) con gran cantidad de vasos conductores (v) incluídos en tejido fundamental. En las células de parénquima son frecuentes las drusas. 236 ARS PHARMACEUTICA Histoquímica Se han detectado principios con fluorescencia a la luz ultra violeta que dan positivas las reacciones habituales de alcaloides (Dragendorff, Bouchardat y Diferencial de Errera) en raíz (Pot. 1) -sobre todo a nivel de parénquima cortical, sistema conductor y radios medulares -, tallo (Pot. 2) -a nivel también del parénquima cortical, radios medulares y felodermo-, hojas (Pot. 3) -parénquima lagunar y de empalizaday en distintas partes de frutos inmaduros (Pot. 4). Estos principios fluorescentes posiblemente se traten de alcaloides oxoaporfínicos detectados en estos órganos (10) (12). Independientemente aparecen precipitados de sustancias no fluorescentes (Pots. 5, 6, 7 Y 8) correspondientes a los alcaloides aporfínicos y bencilisoquinoleínicos ya detectados en la planta (11) (13). FOTO 1 Raiz: corte trasversal. Espesor: 25)J. Aumentos: 10 x 10. Observación con luz UV FOTO 2 Tallo: corte trasversal. Espesor: 25)/. Aumentos: 10 x 10. Observación con luz UV FOTO 3 Hoja: corte trasversal. Espesor: 25)/. Aumentos: 10 x 10. Observación con luz UV FOTO 4 Fruto: corte trasversal. Espesor: 25.J1. Aumento: 10 x 10. Observación con luz UV FOTO 5 Raíz: corte trasversal. Espesor: 25 y. Aumentos: 10 x 10. Tinción: Bouchardat FOTO 6 Tallo: corte trasversal. Espesor: 25 JIAumentos: 10 x 10. Tinción: Bouchardat FOTO 7 Hoja: corte trasversal. Espesor: 25)1. Aumentos: 10 x 10. Tinción: Bouchardat