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Diversidad de Agaricomycotina en la Reserva Forestal Astilleros: listado, nuevos registros para Colombia y distribución en coberturas en restauración

Vélez-Jaramillo, Laura; Celis-Gómez, Juan José; Benjumea Aristizábal, Denis Cristina; Gómez-Montoya, Nataly; Franco-Molano, Ana Esperanza

Abstract

Aunque Colombia es reconocida por su alta biodiversidad en flora y fauna, los estudios que caracterizan su funga han sido escasos, comparados con los realizados en Europa y Norteamérica. En el caso de Agaricomycotina (subfilo de Basidiomycota que agrupa a los hongos que producen basidiomas), solo se han reportado cerca de 1.642 especies para este país, equivalente a menos del 5% de las descritas mundialmente. A nivel regional, Antioquia es el departamento con más muestreo de este grupo, sin embargo, en amplias áreas con remanentes de bosque primario se han hecho escasos o nulos estudios micológicos, como sucede en San Antonio de Prado, el corregimiento más grande del municipio de Medellín. Este trabajo representa la primera aproximación a la micobiota de esta zona, específicamente en la Reserva Forestal Astilleros. Se reportaron 12 órdenes, 57 familias, 99 géneros y 90 especies de Agaricomycotina. Se destacan los primeros registros para Colombia de Entoloma nubilosilvae, Inocybe lasseri, Tubaria bispora, Clavariochaete peckoltii y el género Mycenella, reportado aquí como basidioma, ya que anteriormente sólo había sido detectado como secuencias en análisis de metabarcoding. Asimismo, ampliamos la distribución conocida de seis especies previamente registradas en otros departamentos y describimos su representatividad por familias y grupos funcionales en relación con las coberturas vegetales del área, las cuales presentan distintos niveles de perturbación y recuperación. Los bosques primarios y las etapas sucesionales tardías (RBP-ST) concentraron la mayor diversidad y abundancia (82,5% del total de colecciones), en contraste con los pastizales y etapas sucesionales tempranas (P-ST).

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ISSN 2953-741X Funga Latina 3 (2025) V3A5 https://doi.org/10.5281/zenodo.17428693 1 © 2025 Fungalatina.com Diversidad de Agaricomycotina en la Reserva Forestal Astilleros: listado, nuevos registros para Colombia y distribución en coberturas en restauración Diversity of Agaricomycotina in the Astilleros Forest Reserve: species list, new records for Colombia and distribution in restoration settings Laura Vélez-Jaramillo1, Juan José Celis Gómez1, Denis Cristina Benjumea Aristizábal1, Nataly GómezMontoya1 y Ana Esperanza Franco-Molano 1 1 Laboratorio de Taxonomía y Ecología de Hongos (TEHO), Instituto de Biología, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Antioquia - UdeA, Calle 70 No. 52-21, Medellín, Antioquia, Colombia. E-mail: [email protected] Received: 26 August 2025 Accepted for publication: 23 October 2025 Published: 27 October 2025 Editor: Carlos Rojas Resumen: Aunque Colombia es reconocida por su alta biodiversidad en flora y fauna, los estudios que caracterizan su funga han sido escasos, comparados con los realizados en Europa y Norteamérica. En el caso de Agaricomycotina subfilo de Basidiomycota que agrupa a los hongos que producen basidiomas, solo se han reportado cerca de 1642 especies para este país, equivalente a menos del 5% de las descritas mundialmente. A nivel regional, Antioquia es el departamento con más muestreo de este grupo, sin embargo, en amplias áreas con remanentes de bosque primario se han hecho escasos o nulos estudios micológicos, como sucede en San Antonio de Prado, el corregimiento más grande del municipio de Medellín. Este trabajo representa la primera aproximación a la micobiota de esta zona, específicamente en la Reserva Forestal Astilleros. Se reportaron 12 órdenes, 57 familias, 99 géneros y 90 especies de Agaricomycotina. Se destacan los primeros registros para Colombia de Entoloma nubilosilvae, Inocybe lasseri, Tubaria bispora, Clavariochaete peckoltii y el género Mycenella, reportado aquí como basidioma, ya que anteriormente sólo había sido detectado como secuencias en análisis de metabarcoding. Asimismo, ampliamos la distribución conocida de seis especies previamente registradas en otros departamentos y describimos su representatividad por familias y grupos funcionales en relación con las coberturas vegetales del área, las cuales presentan distintos niveles de perturbación y recuperación. Los bosques primarios y las etapas sucesionales tardías (RBP-ST) concentraron la mayor diversidad y abundancia (82.5% del total de colecciones), en contraste con los pastizales y etapas sucesionales tempranas (P-ST). Palabras clave: Basidiomycota, bosque de roble, funga, lista de especies, macrohongos. Abstract: Despite the great biodiversity of flora and fauna described in Colombia, studies aimed at characterizing its funga have been limited compared to those in Europe and North America. For example, in the case of Agaricomycotina, a subphylum of Basidiomycota which includes fungi capable of producing basidiomata, only about 1642 species have been reported in the country—less than 5% of those described globally—. Although Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 2 Antioquia is the best-sampled region, it still contains extensive areas with important remnants of primary forest that have been virtually unexplored mycologically, such as San Antonio de Prado, the largest township of Medellín. This study represents the first approach to the mycobiota of this area, specifically within the Astilleros Forest Reserve. We recorded 12 orders, 57 families, 99 genera, and 90 species of Agaricomycotina. Notably, this includes the first record for Colombia of Entoloma nubilosilvae, Inocybe lasseri, Tubaria bispora, Clavariochaete peckoltii, and the genus Mycenella, the latter reported here for the first time in the country as a basidiomata, having previously been detected only as a sequence in a metabarcoding analysis. In addition, we expand the known distribution of six species previously reported from other departments and describe the distribution by families and functional groups across the land cover types in the study area, which vary in disturbance and recovery levels. Primary forest and latesuccessional stages (RBP-ST) exhibited the highest diversity and abundance (82.5% of total collections), compared to pastures and early successional stages (P-ST). Keywords: Basidiomycota, checklist, funga, macrofungi, oak forest. Esta obra está bajo una Licencia Creative Commons Atribución 4.0 Internacional. Introducción La mayor parte de la diversidad conocida de Basidiomycota se encuentra dentro del subfilo Agaricomycotina, grupo que incluye a las especies de este filo que son capaces de formar estructuras de reproducción sexual conspicuas – basidiomas – las cuales presentan una gran diversidad morfológica y ecológica entre los diferentes linajes que componen a este subfilo (Maurice et al. 2021). Hasta el año 2025, se han descrito 50037 especies dentro de Agaricomycotina (Kirk 2025), de las cuales solo 1642 han sido registradas en Colombia (Franco-Molano et al. 2022), las cuales se agrupan en aproximadamente 24 órdenes, 96 familias y 418 géneros (Gómez-Montoya et al. 2022). Esta cifra resulta modesta si se considera que Colombia es uno de los países más biodiversos del planeta, gracias a su ubicación geográfica, condiciones climáticas y variedad de ecosistemas. Aunque hasta ahora se han descrito 7241 especies de hongos para el país (Gaya et al., 2021), se estima que la diversidad fúngica en Colombia está aún lejos de ser completamente caracterizada. A escala regional, el departamento de Antioquia es uno de los más biodiversos y al mismo tiempo, entre los que tienen el mayor índice de deforestación en Colombia. Se encuentra ubicado en el noroccidente del país, sobre la región de los Andes tropicales, reconocida como la zona con mayor diversidad de plantas del planeta, pues el 25% de las especies vegetales descritas a nivel mundial ocurren allí (Quintero y Benavides 2017), Antioquia alberga además el mayor número de especies registradas de Agaricomycotina en Colombia, con alrededor de 440 especies reportadas hasta la fecha, esta cifra se debe en parte, a que es el departamento más muestreado en términos de macrohongos del país, debido a una mayor concentración de grupos de investigación micológica en esta región (Gómez-Montoya et al. 2022). No obstante, amplias zonas de Antioquia que aún conservan relictos de bosque andino dominado por el roble colombiano – Quercus humboldtii – el cual forma asociaciones ectomicorrícicas con múltiples especies fúngicas, muchas de ellas endémicas, siguen siendo escasa o nulamente exploradas frente a la diversidad de macrohongos que puedan albergar. Este es el caso del corregimiento de San Antonio de Prado, el más extenso del municipio de Medellín que, a pesar de conservar fragmentos significativos de bosques dominados por roble, no había sido objeto de estudios micológicos. Recientemente los trabajos de Zapata Ocampo et al. (2022) y Celis y Vélez (2023) fueron los primeros esfuerzos en documentar la funga de esta localidad. Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 3 Estos primeros acercamientos a la caracterización de la funga de San Antonio de Prado son especialmente relevantes si se tiene en cuenta el riesgo creciente que presenta este territorio por pérdida de bosques dominados por roble y biodiversidad asociada, como consecuencia de la expansión urbana y la deforestación. Tales procesos representan una amenaza significativa para la conservación de la diversidad biológica de la zona (Secretaría de Medio Ambiente de Medellín 2021). Esta investigación aporta una línea base de la biodiversidad fúngica local y permitió realizar un análisis ecológico preliminar de estos macrohongos, considerando el tipo de sustrato, las asociaciones simbióticas con roble y la distribución de especies en diferentes coberturas vegetales, con diferente grado de perturbación. Materiales y métodos Área de estudio Los especímenes fueron recolectados en el municipio de Medellín, Antioquia (Colombia), dentro de la Reserva Forestal Astilleros (6.24667, -75.67099), ubicada en el oriente del corregimiento de San Antonio de Prado. Esta reserva comprende 88 hectáreas de bosque húmedo montano bajo (bmh-MB) (Holdridge 1967) a una altura de 2240-2660 msnm y tiene una temperatura promedio de 17-19 °C. Desde hace 20 años esta zona protegida ha estado bajo un proceso de regeneración asistida, que busca recuperar las zonas que fueron transformadas por uso agrícola durante 60 años. Los relictos de bosque denso que se conservan son dominados por roble. Muestreo La recolección de basidiomas se hizo siguiendo el método de muestreo oportunista (Mueller et al. 2004) durante el mes de agosto del 2019 y entre los meses de mayo-diciembre del 2022. Se buscó abarcar la mayor área dentro de la reserva, haciendo un transecto que comenzaba desde un punto aleatorio distinto en cada salida. El muestreo se realizó siguiendo la metodología de Franco-Molano et al. (2005), teniendo en cuenta los diferentes sustratos como suelo, hojarasca, madera en descomposición y árboles vivos. Los especímenes después de ser georreferenciados, descritos y fotografiados in situ, fueron empacados en papel parafinado y trasladados al laboratorio base. Las muestras recolectadas en 2019 fueron procesadas en la Universidad CES y depositadas en el Herbario de la misma institución (CEBUCES-H) y las recolectadas en 2022 se procesaron en el Laboratorio de Taxonomía y Ecología de Hongos (TEHO) y se depositaron en el Herbario de la Universidad de Antioquia (HUA). Determinación morfológica Las descripciones macroscópicas se hicieron siguiendo la terminología y recomendaciones de Franco-Molano et al. (2000, 2005), Ryvarden y Johansen (1980) y Wright y Albertó (2002, 2006). Los caracteres microscópicos fueron examinados y descritos según Largent et al. (1977), Ryvarden y Johansen (1980), Balkema et al. (1988), Largent y Baroni (1988) y Wright y Albertó (2002). La carta de colores usada para realizar las descripciones fue Online Auction Color (2004), el acrónimo de referencia para las tonalidades dadas es OAC seguido de su codificación numérica. Las muestras fueron examinadas en agua, Hidróxido de Potasio al 3% (KOH), reactivo de Melzer (IKI), y Rojo Congo. Las medidas de Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 4 basidiósporas, basidios y cistidios, se tomaron siguiendo el estándar de 30 recuentos por estructura (n =30). La identificación de las especies se realizó con base en criterios morfológicos, empleando claves dicotómicas o politómicas, así como artículos de revisión. La asignación de los grupos funcionales se efectuó a partir de la información disponible en la literatura especializada. El repositorio usado como referencia para los nombres actuales de entidades taxonómica fue Mycobank (Robert 2013). Creación de mapas Para la creación de mapas se usó el programa QGIS versión 3.28.12 (http://qgis.org). Para ello, se usaron fotografías tomadas por Google Earth (https://earth.google.com) a través del programa S.A.S Planet (https://sasgis.org) y para la creación de la capa ráster de coberturas de la reserva se utilizó el complemento llamado dzetsaka classification tool (Karasiak 2019), tomando en cuenta el mapa actual satelital, así como información de mapas anteriores depositados en el repositorio de la corporación Pro Romeral (https://www.proromeral.org/). Se unificaron las coberturas tipo rastrojo y pastos bajo una sola categoría llamada: pastizales y estados de sucesión temprana (abreviado como P-ST); para las coberturas tipo bosque denso y bosque ripario se unificaron en la categoría: relictos de bosque primario y estados de sucesión tardía (RBP-ST). Resultados El muestreo realizado en la Reserva Forestal Astilleros permitió determinar un total de 174 morfotipos de Agaricomycotina, distribuidos en 12 órdenes, 57 familias y 99 géneros (Cuadro 1). De estos, 84 fueron identificados hasta el nivel de género y 90 hasta el nivel de especie (Cuadro 2). Entre las especies registradas se destacan cuatro nuevos reportes para Colombia: Entoloma nubilosilvae, Inocybe lasseri, Tubaria bispora y Clavariachaete peckoltii. Asimismo, se reporta por primera vez para el país el género Mycenella con base en una muestra de basidiomas, pues anteriormente sólo se había detectado mediante metabarcoding. Adicionalmente, se aportan seis nuevos registros de especies para el departamento de Antioquia: Antrodia neotropica, Clathrus archeri, Entoloma pseudopapillatum, Favolaschia dealbata, Hygrocybe subcaespitosa y Polyporus guianensis (Cuadro 3). Cuadro 1. Listado de órdenes, familias y géneros de Agaricomycotina registrados dentro de la Reserva Forestal Astilleros. Orden Familia Género Agaricales Agaricaceae Amanitaceae Bolbitiaceae Campanellaceae Clavariaceae Cortinariaceae Agaricus Cyathus Amanita Conocybe Campanella Clavaulinopsis Clavulinopsis Ramariopsis Cortinarius Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 5 Auriculariales Boletales Crepidotaceae Entolomataceae Galeropsidaceae Hydnaginaceae Hygrocybaceae Inocybaceae Lycoperdaceae Lyophyllaceae Marasmiaceae Mycenaceae Omphalotaceae Phyllotopsidaceae Physalacriaceae Pleurotaceae Pluteaceae Porotheleaceae Psathyrellaceae Pterulaceae Resupinataceae Schizophyllaceae Strophariaceae Strophariaceae Tricholomataceae Tubariaceae Auriculariaceae Exidiaceae Boletaceae Pyrrhoglosum Crepidotus Entoloma Panaeolus Laccaria Hygrocybe Inocybe Calvatia Lycoperdon Morganella Arthromyces Campanella Chaetochalatus Collybia Crinipellis Marasmius Megacollybia Favolaschia Mycena Panellus Gymnopus Marasmiellus Rhodocollybia Tricholomopsis Gloiocephala Oudemansiella Hohenbuehelia Pleurotus Pluteus Gerronema Coprinellus Homophron Psathyrella Pterula Resupinatus Schizophyllum Galerina Gymnopilus Hypholoma Pholiota Stropharia Agrocybe Mycenella Tricholoma Tubaria Auricularia Exidia Exidiopsis Cyanoboletus Leccinum Phylloporus Xerocomellus Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 6 Cantharellales Dacrymycetales Hymenochaetales Phallales Polyporales Russulales Thelephorales Tremellales Boletinellaceae Paxillaceae Sclerodermataceae Suillaceae Cantharellaceae Hydnaceae Dacrymycetaceae Hirschioporaceae Hymenochaetaceae Clathraceae Fomitopsidaceae Irpicaceae Panaceae Pleurotaceae Podoscyphaceae Polyporaceae Postiaceae Steccherinaceae Auriscalpiaceae Russulaceae Stereaceae Bankeraceae Thelephoraceae Tremellaceae Boletinellus Paxillus Calostoma Suillus Pseudocraterellus Clavulina Craterellus Hydnum Dacrymyces Pallidohirschioporus Clavariachaete Coltricia Fomitiporia Fuscoporia Hymenochaete Phellinus Clathrus Antrodia Hydnopolyporus Irpex Raduliporus Cymatoderma Pleurotus Abortiporus Cerioporus Dichomitus Ganoderma Lentinus Neodictyopus Polyporus Trametes Cyanosporus Steccherinum Lentinellus Lactarius Lactifluus Russula Stereum Phellodon Thelephora Tremella Cuadro 2. Especies de Agaricomycotina registradas en la Reserva Forestal Astilleros con los respectivos números de herbario de las colecciones de respaldo. En negrilla se resaltan los nuevos reportes para Colombia. Especie Número de colección de herbario* Abortiporus biennis Amanita brunneolocularis Amanita colombiana HUA 237878; HUA 237939 HUA 237881 HUA 237910 Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 7 Amanita flavoconia Amanita fuligineodisca Antrodia neotropica Arthromyces pulverulentus Auricularia delicata Calostoma cinnabarinum Campanella aeruginea Campanella alba Cerioporus flavus Chaetocalathus magnus Clathrus archeri Clavariachaete rubiginosa Clavulinopsis fusiformis Clavulinopsis zollingeri Collybia nigrita Coltricia cinnamomea Conocybe siennophylla Cortinarius iodes Craterellus boyacensis Craterellus cornucopioides Cyanoboletus pulverulentus Cyanosporus caesius Cyathus olla Cymatoderma caperatum Dacrymyces capitatus Dacrymyces lacrymalis Entoloma incanum Entoloma nubilosilvae Entoloma pseudopapillatum Favolaschia dealbata Fomitiporia robusta Fuscoporia wahlbergii Fuscoporia wahlbergii Gerronema citrinum Gloiocephala quercetorum Gymnopus androsaceus Gymnopus dryophilus Gymnopus johnstonii Gymnopus Macropus Gyrodon exiguus Hohenbuehelia atrocoerulea Hydnopolyporus palmatus Hydnum repandum Hygrocybe conica Hygrocybe subcaespitosa Hymenochaete damicornis Hymenochaete peckoltii Hypholoma fasciculare Inocybe lasseri Irpex rosettiformis Laccaria amethystina Laccaria gomezii HUA 238119; HUA 238121; HUA 238149; HUA 238150; HUA 238153 CBUCES 051 HUA 237945 HUA 233492 CBUCES 098 CBUCES 007; HUA 238157 HUA 237954 CBUCES 011 CBUCES 061 HUA 237942 CBUCES 025; CBUCES 050; HUA 238084 CBUCES 034; CBUCES 035 CBUCES 063 HUA 237956 HUA 238087 HUA 238139; HUA 238144 CBUCES 088 HUA 238141 HUA 238115; HUA 238135; HUA 238138 HUA 238116; HUA 238158 CBUCES 068 CBUCES 101 CBUCES 077 CBUCES 052 CBUCES 064; CBUCES 066 CBUCES 015 CBUCES 079 HUA 237890 HUA 237905 HUA 237923 CBUCES 018 CBUCES 019 HUA 238104 CBUCES 028 HUA 238120; HUA 238130; HUA 238143 HUA 237902 HUA 237916; HUA 238128 HUA 237922 CBUCES 009; CBUCES 024; HUA 238092 CBUCES 074; HUA 238076; HUA 238089; HUA 238109 HUA 237928 CBUCES 014; HUA 238105 HUA 238117; HUA 238146; HUA 238156 HUA 237913; HUA 237925 HUA 237947 CBUCES 020; HUA 238100 HUA 238145 CBUCES 046 HUA 238108 HUA 238111 HUA 237911; HUA 237912 CBUCES 054 Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 8 Laccaria laccata Lactarius rimosellus Lactifluus deceptivus Lactifluus gerardii Lycoperdon perlatum Marasmius cladophyllus Marasmius haematocephalus Marasmius hymenogloeus Megacollybia platyphylla Morganella fuliginea Mycena alcalina Mycena haematopus Mycena holoporphyra Mycena pura Neodictyopus atlanticae Pallidohirschioporus biformis Panellus pusillus Phylloporus centroamericanus Phylloporus fibulatus Pluteus cubensis Pluteus nanus Polyporus guianensis Polyporus leprieurii Pyrrhoglossum pyrrhum Raduliporus aneirinus Resupinatus applicatus Resupinatus niger Russula emetica Russula idroboi Stereum hirsutum Stereum Ostrea Suillus luteus Thelephora palmata Tremella mesenterica Tubaria bispora CBUCES 008; HUA 238098; HUA 238118; HUA 238154 CBUCES 045 CBUCES 048; HUA 238112 HUA 238106; HUA 238107; HUA 238133; HUA 238134 CBUCES 002; CBUCES 058; HUA 237889 HUA 237924; HUA 238059 CBUCES 083 HUA 238085; HUA 238110; HUA 238140 CBUCES 033 CBUCES 026; CBUCES 087 CBUCES 060; HUA 238060 HUA 238159 CBUCES 043; HUA 238095; HUA 238097; HUA 238103 CBUCES 099 HUA 238132 CBUCES 057 CBUCES 086 HUA 238142 CBUCES 031 HUA 238088 CBUCES 032; CBUCES 084 CBUCES 093 CBUCES 029; CBUCES 037; CBUCES 040 HUA 238090 CBUCES 094 CBUCES 095 CBUCES 038 CBUCES 044 CBUCES 059 CBUCES 006; HUA 237927; HUA 237943 HUA 237944 HUA 238137 HUA 237906 CBUCES 027 HUA 238093 * HUA= Herbario Universidad de Antioquia, CBUCES= Colecciones Biológicas de la Universidad CES. Con respecto al análisis de composición taxonómica en las diferentes coberturas, se halló que en ambas, tanto pastizales y sucesión temprana, como relictos de bosque primario y sucesión tardía, la familia Russulaceae fue la más abundante. En términos generales las familias Mycenaceae, Marasmiaceae, Omphalotaceae y Polyporaceae fueron las más frecuentes, con al menos diez registros cada una, destacándose también por su elevada riqueza de especies. A este grupo se suman Hydnaceae, Hymenochaetaceae, Amanitaceae y Entolomataceae, todas con un mínimo de diez registros diferentes. Comparando entre los resultados obtenidos por coberturas, se observa que, si bien en ambos tipos algunas de las familias con mayor abundancia se comparten, como es el caso de Marasmiaceae, Polyporaceae y Omphalotaceae, se encontraron las siguientes diferencias: en RBP-ST hubo una mayor diversidad de familias y representatividad de aquellas que son ectomicorrícicas, como Hydnaceae, Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 9 Amanitaceae y Cortinariaceae (Fig 1), en contraste con P-ST, que fueron coberturas menos diversas y donde predominaron familias lignícolas y folícolas como Pleurotaceae, Mycenaceae y Stereaceae (Fig. 2). Figura 1. Riqueza y abundancia de familias Agaricomycotina colectadas en cobertura tipo bosque primario y sucesión tardía dentro de la Reserva Forestal Astilleros. Se indican las familias con mayor abundacia en cada cobertura. Figura 2. Riqueza y abundancia de familias Agaricomycotina colectadas en cobertura tipo pastizales y sucesión temprana dentro de la Reserva Forestal Astilleros. Se indican las familias con mayor abundacia en cada cobertura. En cuanto a los grupos funcionales, se registraron hongos ectomicorrícicos, folícolas, humícolas, lignícolas, entre otros (por ejemplo, con ecologías asociadas a insectos o a briófitos). En ambos tipos de Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 16 Pileipelis tipo cutis, formado por hifas repentes, algunas diverticuladas; pared con incrustaciones extraparietales irregulares de tamaño variable, contenido citoplasmático amarillo (Fig. 6E-F). Distribución: género reportado principalmente para las zonas templadas del hemisferio norte, Nueva Zelanda y Argentina (Komorowska 2005; Niveiro et al. 2014; Cooper 2016; Romano et al. 2017). Sin embargo, estudios edáficos metagenómicos sugieren una amplia distribución en suramérica, ya que secuencias de Mycenella han sido detectadas en suelos de Brasil, Panamá, Costa Rica, Bolivia, Ecuador e incluso Colombia (Větrovský et al. 2020). Comentarios: Mycenella (J.E. Lange) Singer es un género caracterizado por presentar basidiomas de morfología micenoide o collibioide, con coloraciones apagadas (grisáceas, crema a pardas) y ornamentación pruinosa a lo largo del estípite, a veces también en el píleo. Poseen esporas subglobosas, con apéndice hilar conspicuo, hialinas, <10 µm de longitud, inamiloides en reactivo de Melzer y, en muchas especies, con ornamentación nodular o ampliamente verrucosa. Los cistidios himeniales son típicamente fusiformes a lageniformes, con ápices agudos, digitados, levemente ramificados o con incrustaciones (Boekhout 1985, Emmett 1993, Wright y Albertó 2002, Komorowska 2005, Cuesta et al. 2011, Niveiro y Albertó 2012, Niveiro et al. 2014, Romano et al. 2017). Las características diagnósticas del género están presentes en el material examinado, por lo tanto constituye el primer registro soportado por basidiomas, del género Mycenella para Colombia, donde previamente solo se había documentado mediante secuencias obtenidas por metabarcoding. La determinación a especie no fue posible, pues la única especie conocida de Mycenella con tonalidades rojizas es M. maxima, un taxón inédito de Australia representado por la colección PDD 27239 (posible holotipo del nombre no publicado) (Cooper 2016). Sin embargo, M. maxima difiere del material examinado en la ausencia de pleurocistidios, lo que en conjunto con sus distancia geográfica, sugiere que se trata de una especie nueva. Orden Hymenochaetales Familia Hymenochaetaceae Clavariachaete peckoltii (Lloyd) Corner, Ann. Bot. Mem. 1: 269 (1950). Material Examinado: Colombia • Antioquia • Medellín; corregimiento San Antonio de Prado; Reserva Forestal Astilleros; 6°25ʹ22.00ʺN, 75°66ʹ46.10ʺO; 2500-2800 msnm; 16.V.2022; Celis J #15; HUA 238145; gregario a cespitoso sobre suelo. Descripción: basidioma clavarioide, 6-8 cm de altura, ramificándose repetidamente de forma bifurcada;superficie café-naranja (oac 747), tomentosa en la base, pubescente hacia los ápices; ápices planos y finos. Contexto sólido, leñoso, café (oac 747). Reacción xantocroica en KOH t (Fig. 5E-F). Presencia de setas en forma de agujas, 60-100 x 16-20 μm, con una cubierta envolvente fácilmente desprendible; Sistema hifal monomítico con hifas generativas 4-7 µm de grosor, pared delgada a gruesa, algunas con ramificaciones cortas. Fibulas presentes (Fig. 6B). Distribución: reportado para Río de Janeiro y Sao Pablo, Brasil (Parmasto 2010). Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 17 Figura 6. Estructuras microscópicas de las especies y género de Agaricomycotina por primera vez reportados en Colombia. A. Entoloma nubilosilvae, B. Clavarichaete peckolti, C. Tubaria bispora, D. Inocybe laserii, E-F. Mycenella sp. Ba= Basidio, PC= Pleurocistidio, QC= Queilocistidio, Es= Espora, Se= Seta, Hi= Hifas del contexto. Barra=10 µm. Comentarios: el material examinado no presentaba esporas, por lo cual no fue posible tener este carácter a consideración, sin embargo, varios autores sostienen que esta condición es común en los Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 18 especímenes de Clavariachaete peckoltii (Corner 1950). El tamaño de las esporas no es un caracterer diferencial entre las dos especies hasta ahora descritas dentro del género, ya que ambas presentan esporas de dimensiones muy similares; por otra parte, los ápices de las ramificaciones del basidioma sí es un carácter diagnóstico que ayuda a diferenciarlas, ya que en C. pecktoltii son cortos y aplanados, mientras que en C. rubiginosa, son más redondeados y alargados (Parmasto 2010). Constituye el primer registro de la especie para Colombia. Discusión La riqueza de los hongos Agaricomycotina registrada en la Reserva Forestal Astilleros, con 174 morfotipos, 90 de los cuales fueron identificados a nivel de especie, es el primer acercamiento y una muestra preliminar de la composición de especies presentes en esta reserva. Al comparar estos resultados con estudios previos realizados en el país, se observa que la composición fúngica de la Reserva Forestal Astilleros estaría representada por aproximadamente el 59,38 % de las familias, 23,68 % de los géneros y 5,48 % de las especies de Agaricomycotina hasta ahora reportadas para Colombia y el 20,45 % de las especies reportadas para Antioquia. Estos resultados evidencian que la Reserva Forestal Astilleros constituye un escenario promisorio para el desarrollo de estudios micológicos, considerando que estos registros se derivan de un esfuerzo de muestreo relativamente corto, por lo que es razonable suponer que una exploración más prolongada incrementaría significativamente las cifras de riqueza observada. La representatividad de familias como Russulaceae, Mycenaceae y Polyporaceae coincide con otros estudios de diversidad hechos en ecosistemas de bosque de niebla montano bajos andinos de la región, como el de Toro et al. (2011), donde estas familias suelen ser comúnmente reportadas con un índice alto de abundancia; además son de las familias más diversas globalmente. Según el Catalogue of Life, Russulaceae comprende aproximadamente 2424 especies, Mycenaceae 1854 y Polyporaceae 1746, lo que incrementa la probabilidad de ser encontradas en muestreos de campo. El hallazgo de nuevos registros para Colombia y para el departamento de Antioquia amplía el conocimiento sobre la distribución geográfica de estas especies en el neotrópico. Considerando los tipos de coberturas muestreadas, esto apunta a que zonas de restauración y los relictos de bosque primario son importantes reservorios de diversidad fúngica poco conocida, siendo a su vez clave en la conservación de hongos en ecosistemas fragmentados, pues en comparación con zonas de mayor grado de pertubación presentan una mayor riqueza de especies, y una mayor cantidad de registros (Avendaño 2018, Putzke et al. 2022). Las diferencias en composición taxonómica entre pastizales y estados sucesionales tempranos (PST) y relictos de bosque primario y estado sucesionales tardíos (RBP-ST), reflejan una diferencia entre ellas, probablemente asociado al estado de sucesión vegetal. En ambas coberturas, Russulaceae fue la familia dominante, lo cual es consistente con su amplia distribución, resistencia frente a disturbios, en comparación de otras familias ectomicorrícicas, y su capacidad de adaptación a diversos hospederos, considerando además que en los bosques montanos neotropicales suelen haber dominancia de especies arbóreas ectomicorrícicas (Corrales et al. 2016, Hughes et al. 2025) como es el caso del roble (Quercus humboldtii) el cual es hospedero de varias especies de dicho género (Restrepo 2021). Entre las familias con mayor abundancia para ambas coberturas, y en las que difieren, se registró una mayor riqueza de familias compuestas en su mayoría por especies ectomicorrícicas en RBP-ST, en comparación con coberturas tipo P-ST donde fueron más abundantes las familias que con ecologías usualmente asociadas a Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 19 la descomposición de material orgánico. Estas diferencias en los resultados pueden estar asociados, por un lado, a que la presencia de hongos ectomicorrícicos suele darse en estadíos tardíos de suceciones ecológicas donde aparecen árboles hospederos simbiontes maduros, mientras que, varias especies de hongos lígnicolas suelen aparecer como especies pioneras es coberturas de suceciones tempranas; sin embargo, vale la pena resaltar que hay una gran porcentaje de hongos lignícolas con capacidad enzimática para generar degradación más completa de la madera, que son más abundantes en estadíos sucesionales tardíos, de los cuales suelen ser dominantes, por lo cual también se espera una mayor diversidad de este grupo funcional en dichas etapas (Leski et al. 2019, Lepinay et al. 2021, Vizzini et al. 2024). También es importante resaltar que algunos hongos ectomicorrícos específicos pueden adaptarse al disturbio ecológico y tener una mayor representatibilidad en coberturas transformadas. Esto se observó respecto a la familia Hydnangiaceae, que tuvo una alta abundancia en la cobertura P-ST; si bien esta familia está compuesta por especies principalmente ectomicorrícicas (el tercer grupo funcional más representativo para esta cobertura), varios estudios han encontrado que algunas de las especies del género Laccaria, son abundantes en este tipo de coberturas, actuando incluso como especies pioneras que juegan un rol importante en la restauración ecológica (Wilson et al. 2017, Zhang et al. 2023). La alta frecuencia de hongos lignícolas en ambas coberturas nos sugiere el rol fundamental de este grupo funcional en la descomposición de madera, lo cual conlleva al reciclaje de nutrientes en ecosistemas andinos. Como anteriormente se mencionó, la abundancia de este grupo está directamente relacionada con la disponibilidad de sustratos leñosos, por lo que se espera que su representatividad sea mayor en la coberturas RBP-ST, dado que tienen un componente vegetal leñoso más diverso y abundante, lo cual ofrece una mayor cantidad y variedad de este sustrato para aprovechar (Ferreira de Araujo et al. 2017). No obstante, si comparamos las proporciones en la composición de grupos funcionales en ambas coberturas, en P-ST más de la mitad de los hongos recolectados fueron lignícolas, con una alta representatividad de familias como Pleurotaceae y Stereaceae, que en efecto suelen ser asociadas a la descomposición de este recurso (Vizzini et al. 2024), mientras que en la cobertura RBP-ST este porcentaje fue menor, donde además se observó una representación más equitativa del uso de otros recursos y sustratos disponibles (para el caso de los hongos ectomicorrícicos, humícolas y folícolas). Esto puede asociarse a que, como en otros estudios se ha observado, a medida que mejora el estado de conservación del bosque y aumenta la presencia de nutrientes, se incrementa la riqueza de especies saprótrofas que usan otros sustratos, especialmente humícolas y folícolas (Kerekes et al. 2013), así como la de ectomicorrícicas (Leski et al. 2019). En conjunto, los resultados evidencian que la Reserva Forestal Astilleros alberga una alta diversidad de macrohongos, incluyendo especies raras y poco conocidas para la micobiota regional. No obstante, resaltamos que esta línea base no representa aún una estimación precisa de la riqueza fúngica del área, dado que la producción de basidiomas está condicionada por factores como la fluctuación, la periodicidad, la estacionalidad y la longevidad de los basidiomas. A esto se suma la detectabilidad de especies crípticas, para lo cual los análisis moleculares constituyen una herramienta valiosa, más aún si se considera que por ejemplo el uso de ADN ambiental ha ayudado a detectar nuevos taxones fúngicos (Tedersoo et al. 2014, Khan et al. 2020). No obstante, es de considerar que el uso de dicha herramienta debe hacerse de manera integrativa con la taxonomía tradicional basada en caracteres morfológicos, dado que la identificación de hongos basada únicamente en el análisis de secuencias también puede representar riesgos, entre ellos la subrepresentación o sobrerrepresentación de grupos fúngicos en estudios de biodiversidad (Cazabonne et al. 2022). Por lo anterior, es recomendable ejecutar muestreos en campo durante tiempos prolongados, ya que permite recopilar no solo información de composición sino Funga Latina 3 (2025) V3A5 Vélez-Jaramillo et al 20 información útil sobre los ciclos de vida de las especies, la diversidad de hábitos, reconocer los diferentes tipos de interacción, ya sea con otras especies fúngicas, de plantas, animales, entre otros, construyendo de forma más completa el conocimiento sobre la historia natural de las diferentes especies. En este sentido, se ha señalado que para obtener una detección más completa de la diversidad fúngica es necesario realizar muestreos como mínimo de 5 años (Straatsma et al. 2001). Adicionalmente, 84 morfotipos no pudieron ser identificados a nivel de especie, lo cual puede atribuirse, en parte, a la limitada bibliografía disponible sobre los hongos de la región o del país; aunque también es posible que algunos de estos registros, teniendo en cuenta sus características, correspondan a especies nuevas. En conjunto, estos hallazgos refuerzan la necesidad de continuar y ampliar los monitoreos micológicos en diferentes coberturas y estados sucesionales, incorporando enfoques taxonómicos, ecológicos y moleculares que permitan mejorar la resolución en la identificación de especies y comprender con mayor precisión los patrones de distribución fúngica en los Andes tropicales. Agradecimientos Los autores expresan su agradecimiento a Carlos Alberto López-Quintero y Jaime Andrés Duque Barbosa por su valiosa contribución en la determinación de las muestras, también a los guardabosques Llimi Efray Sánchez Alzate y Marisol Zapata Caro, por su acompañamiento y guianza durante las salidas de campo; el apoyo que nos briandaron todos los mencionados fue fundamental para el establecimiento de la línea base de macrohongos en la Reserva Forestal Astilleros. Referencias Avendaño Villegas ME. 2018. Diversidad funcional y recambio de especies macrofúngicas en un ecosistema urbano del centro de Oaxaca, México [MSc Thesis] [Oaxaca, México] (MX); Instituto Politécnico Nacional. Boekhout T. 1985. Notulae ad Floram agaricinam neerlandicam—IX. Mycenella. Persoonia 12(4): 427440. Cazabonne J, Bartrop L, Dierickx G, Gafforov Y, Hofmann TA, Martin TE, Piepenbring M, RivasFerreiro M, Haelewaters D. 2022. 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