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Determinación de coeficientes de transferencia de materia en emu estabilizadas por nanohí Ingeniería Química y Tecnología del Determinación de coeficientes de transferencia de materia en emu lsiones estabilizadas por nanohí bridos tipo NTC/Soporte. Ingeniería Química y Tecnología del Medioambiente Autor : Adrián Ramírez Galilea Director : Antonio Monzón Bescós Escuela de Ingeniería y Arquitectura Universidad de Zaragoza Curso 2011 / 2012 Determinación de coeficientes de lsiones bridos tipo Ingeniería Química y Tecnología del : Adrián Ramírez Galilea : Antonio Monzón Bescós Escuela de Ingeniería y Arquitectura Universidad de Zaragoza Curso 2011 / 2012 Junio 2012 1 AGRADECIMIENTOS: El presente proyecto es un esfuerzo en el cual, directa o indirectamente, participaron varias personas ya fuese leyendo, opinando, corrigiendo, dando ánimo, o bien acompañando en los momentos de crisis y en los momentos de felicidad. En primer lugar quisiera agradecer a D. Antonio Monzón la oportunidad que me ha brindado para realizar este proyecto y aprender de él, y al Departamento de Ingeniería Química y Tecnología del Medioambiente el haberme permitido realizarlo. Gracias también a Fernando Cazaña por haberme ayudado en mi adaptación al laboratorio y haber ejercido de hermano mayor los primeros días. Gracias a todos aquellos profesores y alumnos de la universidad que de una u otra forma me han ayudado a realizar este trabajo, y aunque no les mencione de forma explícita, no les puedo negar un sincero agradecimiento. Y finalmente, no puedo dejar de agradecer la comprensión de mis familiares y amigos, gracias por su apoyo y por conseguir que todos los días valga la pena vivirlos con una sonrisa en la cara. Sin todos ellos, esto nunca habría sido posible. Gracias a todos. 2 Determinación de coeficientes de transferencia de materia en emulsiones estabilizadas por nanohíbridos tipo NTC/Soporte. RESUMEN El proyecto fin de carrera que se describe a continuación se enmarca dentro del proyecto de investigación "Desarrollo de nanohíbridos tipo Me-NTC- Soporte para nuevos procesos catalíticos de transferencia de fase". Uno de los objetivos del proyecto de investigación es el modelado del sistema catalítico de reacción "nanohíbrido-emulsión" en reactores semicontínuos de mezcla perfecta. Como reacción test se ha elegido el refino catalítico de los líquidos procedentes de la pirolisis de la biomasa. Más en concreto, se ha estudiado la hidrogenación de la vainillina en una emulsión agua-decalina tipo “pikering” (i.e. estabilizada por partículas sólidas) formada por nanohíbridos Me-NTC-Soporte. Estas partículas sólidas, además de favorecer la formación de la emulsión, actúan como catalizador selectivo en la reacción test seleccionada. El objetivo principal de este PFC es desarrollar un modelo matemático que describa los fenómenos de transferencia de materia que ocurren en las reacciones descritas anteriormente. De esta forma, se ha realizado el estudio de la reacción catalizada por transferencia de fase que transforma la vainillina (VA), soluble en la fase acuosa, en 2-metoxifenol (DMF), soluble en la fase orgánica. { { { { 1 32 1 2 kk k vainillina p cresol metoxifenol alcohol kvainillinico VA VOH MMF DMF − − − → → → ← En particular, se han determinado los coeficientes globales de transporte en ausencia de emulsión estable, así como los coeficientes de reparto entre ambas fases, para cada uno de los compuestos que aparecen en la reacción de hidrogenación de vainillina. En este estudio también se ha analizado la influencia de las principales variables de operación: i) velocidad de agitación ii) temperatura de operación En última instancia, se ha estudiado la emulsión agua-decalina tipo “pickering” formada por sílice hidrofóbica y se han determinado los respectivos coeficientes de transporte. Esto acerca el estudio al objetivo final del proyecto, ya que esta sílice será el soporte sobre el que se hace crecer los nanotubos de carbono (NTC) en los cuales pretende ir depositado el catalizador de la reacción de refino de bio-oil. 3 ÍNDICE 1.- Introducción……………………………………………………………………… 5 1.1.- Transferencia de masa entre fases inmiscibles 1.1.1.- Modelos de transferencia de masa 1.1.2.- Equilibrio y coeficientes de reparto 1.2.- Emulsiones estabilizadas tipo “pickering” 1.2.1.- Conceptos generales 1.2.2.- Angulo de contacto 1.2.3.- Sílice hidrofóbica 1.2.- Reacción test de refino catalítico de bio-oil 2.- Procedimiento experimental y resultados………………………………… 13 2.1.- Calibrado de los equipos 2.2.- Medida de transferencia de vainillina 2.2.1.-Transferencia entre fases sin agente emulsionante 2.2.1.1.- Influencia de la velocidad de agitación 2.2.1.2.- Influencia de la temperatura 2.2.2.-Transferencia entre fases en emulsión estable 2.2.3.-Curva de equilibrio 2.3.- Medida de transferencia de ρ-cresol 2.3.1.-Transferencia entre fases sin agente emulsionante 2.3.1.1.- Influencia de la velocidad de agitación 2.3.1.2.- Influencia de la temperatura 2.3.2.-Transferencia entre fases en emulsión estable 2.3.3.-Curva de equilibrio 2.4.- Medida de transferencia de alcohol vainillínico 3.- Modelado de la transferencia de materia: cálculo de los coeficientes de transferencia………………………..………………………………………...... 27 3.1.- Desarrollo de modelos cinéticos de transferencia 3.1.1.-Transferencia entre fases sin agente emulsionante 3.1.2.-Transferencia entre fases en emulsión estable 3.1.2.1.- Modelo potencial 3.1.2.2.- Modelo exponencial 3.2.- Transferencia de vainillina 3.2.1.-Transferencia entre fases sin agente emulsionante 3.2.1.1.- Influencia de la velocidad de agitación 3.2.1.2.- Influencia de la temperatura 3.2.1.3.- Cálculo de la longitud característica 3.2.2.-Transferencia entre fases en emulsión estable 3.2.2.1.- Fase aceite emulsión 3.2.2.2.- Fase agua emulsión 3.2.2.3.- Fase agua libre 3.2.2.4.- Selección y comparación de modelos 4 3.3.- Transferencia de ρ-cresol 3.3.1.-Transferencia entre fases sin agente emulsionante 3.3.1.1.- Influencia de la velocidad de agitación 3.3.1.2.- Influencia de la temperatura 3.3.1.3.- Cálculo de la longitud característica 3.3.2.-Transferencia entre fases en emulsión estable 3.3.2.1.- Fase aceite emulsión 3.3.2.2.- Fase agua emulsión 3.3.2.3.- Fase agua libre 3.3.2.4.- Selección y comparación de modelos 4.- Conclusiones……………………………….………………………………….. 53 5.- Bibliografía………………………………………………………….....……….. 54 6.- Nomenclatura…………………………………………………...….....……….. 55 7.- Anexos………………………………………………………………..…………. 7.1.- Características del método instrumental 7.2.- Rectas de calibrado para el cromatógrafo de gases 7.3.- Parámetros de ajuste de la transferencia de vainillina en emulsión 7.4.- Parámetros de ajuste de la transferencia de p-cresol en emulsión 5 1.- INTRODUCCIÓN Con el fin de utilizar como combustible los aceites derivados de la pirólisis de la biomasa, los productos hidrófilos deben ser eliminados por varias etapas de refinado. De esta forma, las reacciones catalíticas deben llevarse a cabo en un sistema con dos fases inmiscibles, una fase acuosa y otra orgánica [1]. Para aumentar el área superficial interfacial, y así facilitar la transferencia de masa entre las fases, se forma una emulsión estable por medio de la adición de tensoactivos. Sin embargo, los tensoactivos convencionales son difíciles de separar del producto final, mientras que las partículas sólidas pueden estabilizar la emulsión y son recuperables de forma más sencilla 1.1.- Transferencia de masa entre fases inmiscibles La transferencia de materia dentro de la fase puede originarse mediante difusión molecular o mediante la convección y la difusión molecular simultáneamente. En un medio inmóvil la transferencia solamente ocurre por difusión molecular. Cuando el medio es móvil, el transporte se producirá tanto por difusión molecular como por convección. En los cálculos típicos que se realizan en el estudio de la transferencia de masa se suele definir un parámetro que agrupa todos los efectos convectivos y difusivos, de tal forma que el flujo total sea proporcional a dicho parámetro global, a un gradiente de concentraciones, e inversamente proporcional al espesor de la capa en la cual se efectúa la transferencia [2]. Este parámetro es el coeficiente global de transferencia de masa, KL. De esta forma, para un soluto A que se transfiere desde una fase acuosa (w) a una orgánica (o), la ecuación de transferencia en la fase orgánica es la siguiente: ( ) ( ) ,* o o o o A A A A dC KL a C C dt = ⋅ − [1-1] Donde , A o C y * , A o C son la concentración del soluto en la fase orgánica y el límite de saturación en dicha fase respectivamente, mientras que a es el área interfacial. Asimismo, el producto o A KL a representa el coeficiente volumétrico de transferencia en la fase orgánica. 1.1.1.- Modelos de transferencia de masa Existen una serie de modelos teóricos que se utilizan para tratar de explicar el mecanismo de transferencia de masa entre las distintas fases, siendo los más conocidos la teoría de la capa límite, la teoría de la doble capa, la teoría de la renovación de superficie, y el modelo película-renovación [3]. 6 Pese a ser todos los modelos usados y conocidos, la teoría de la renovación de superficie y el modelo película-renovación no mejoran las dos primeras teorías en cuanto a resultados. Además, la teoría más aceptada a nivel académico es la teoría de la doble capa. La teoría de la doble capa fue desarrollada por Lewis y Whitman en 1924. Esta teoría se basa en dos postulados: • La resistencia a la transferencia reside en la existencia de dos películas muy delgadas a ambos lados de la interfase, una por cada fase. • Las fases se encuentran en equilibrio con la interfase. La figura 1-1 muestra el concepto de la doble película para un soluto A que se transfiere de la fase acuosa (w) a la fase orgánica (o) a través de la interfase (i) formada por la doble película: Figura 1-1: Teoría de la doble capa 1.1.1.- Equilibrio y coeficientes de reparto Cuando un soluto, a temperatura constante, es añadido en dos solventes inmiscibles que se encuentran en contacto entre sí, el soluto se distribuye entre los dos solventes con diferentes equilibrios de concentración [4]. Si C A y C B representan las concentraciones en el primer y segundo solvente, entonces:  =     [1-2] La constante H es llamada el coeficiente de distribución o de reparto del soluto entre los dos solventes a la temperatura dada. 7 La ecuación anterior es la forma matemática de la ley de distribución de Nernst. Esta ley establece que a temperatura constante, cuando un soluto se puede distribuir entre dos solventes inmiscibles en contacto entre ellos, la relación en equilibrio entre la concentración del soluto en las dos fases es constante. Esta ley funciona para soluciones ideales, no obstante, si la cantidad de soluto añadida es lo suficientemente pequeña, entonces el coeficiente de distribución es relativamente independiente de las concentraciones. La figura 1-2 muestra la relación entre las concentraciones para un sustrato A que se transfiere de la fase acuosa (w) a la orgánica (o), teniendo en cuenta la teoría de la doble capa. Figura 1-2: Curva de equilibrio Las concentraciones con el superíndice * representan la concentración final o de saturación en cada una de las fases, mientras que las concentraciones en la interfase (i) están en equilibrio entre sí como indica la teoría de la doble capa. De esta forma, cuanto mayor sea el coeficiente de reparto menor será la solubilidad del soluto en la fase orgánica y viceversa. Figura 1-3: Influencia del coeficiente de reparto en la solubilidad 8 1.2.- Emulsiones estabilizadas tipo “pikering” 1.2.1.- Conceptos generales La emulsión es un sistema de dos fases que consta de dos líquidos parcialmente miscibles, uno de los cuales es dispersado en el otro en forma de gotas. La fase dispersa o discontinua es el líquido en forma de gotas, mientras que el líquido circundante es la fase continua [5]. La suspensión es un sistema de dos fases muy semejante a la emulsión, cuya fase dispersa es un sólido. El camino más simple para la obtención de una emulsión es proporcionar energía mecánica al sistema. Este propósito puede ser fácilmente alcanzado usando agitadores mecánicos, o por efectos de cavitación mediante ultrasonidos. La baja estabilidad de las emulsiones requiere generalmente la adicción de un estabilizante para la formación de la emulsión, ya que las emulsiones son sistemas termodinámicamente inestables pero cinéticamente estables. Existen tres tipos de estabilizantes: surfactantes, macromoléculas o partículas sólidas finas. Las partículas finas estabilizan las denominadas emulsiones tipo “pickering” que son las formadas en el sistema estudiado. Las partículas finas tienen la ventaja de ser más fácilmente recuperables una vez rota la emulsión. Las emulsiones tipo “pickering” se descubrieron en el año 1900 cuando Ramsden y Pickering observaron que partículas sólidas muy pequeñas podían adsorberse sobre una interfase aceite/agua y con ello estabilizar emulsiones. Sin embargo, no fue hasta el trabajo de Finkle et al. cuando se encontró una relación entre el tipo de partícula sólida y la naturaleza de la emulsión [6]. Estos investigadores encontraron que en una emulsión que contenga dos líquidos inmiscibles uno de los líquidos moja más la partícula que el otro líquido, siendo este último la fase dispersa que se encuentra en forma de gotas. Este hecho es similar la regla de Bancroft que ocurre en el caso de los agentes tensoactivos. Recientemente, Resasco y col. han demostrado que las emulsiones pueden ser formadas y estabilizadas utilizando nanohíbridos del tipo NTC/soporte [7]. Después de la impregnación con un metal catalítico, por ejemplo paladio o platino, los nanohíbridos NTC/SIO2 son capaces de estabilizar y simultáneamente catalizar algunas de las reacciones en una de las fases. 15 Figura 2-2: Influencia de la velocidad de agitación en la transferencia de vainillina en la fase acuosa 2.2.1.2.- Influencia de la temperatura Los experimentos a realizar son análogos a los realizados para estudiar la influencia de la velocidad de agitación en el apartado 2.2.1.1, pero ahora se mantiene fija la velocidad de agitación a 300 rpm y se varía la temperatura. De esta forma, se ponen en contacto 5 ml de una disolución de vainillina en agua de concentración 0.01 M con 5 ml de decalina (proporción 1:1) en un vial de 20 mL. A continuación se añade un agitador magnético y se mantiene en agitación a 300 rpm durante distintos tiempos de contacto. Una vez cumplido el tiempo de contacto seleccionado se separan las dos fases y se inyectan en el cromatógrafo de gases para su análisis. Las temperaturas estudiadas son 25, 40 y 60ºC, y se consiguen mantener mediante un baño de polietilenglicol controlado mediante un termopar. Todas las disoluciones iniciales se encuentran a la temperatura de trabajo mediante un baño de polietilenglicol idéntico al anterior. Los resultados obtenidos para las distintas temperaturas, a 300 rpm, se muestran en las figuras 2-3 y 2-4. 0,0075 0,0080 0,0085 0,0090 0,0095 0,0100 0,0105 0 50 100 150 200 Concentración VA (M) Tiempo (min) CVA (water) exp 1000 rpm CVA (water) exp 800 rpm CVA (water) exp 500 rpm CVA (water) exp 400 rpm CVA (water) exp 300 rpm 16 Figura 2-3: Influencia de la temperatura en la transferencia de vainillina en la fase orgánica Figura 2-4: Influencia de la temperatura en la transferencia de vainillina en la fase acuosa 0,0000 0,0005 0,0010 0,0015 0,0020 0,0025 0,0030 0 50 100 150 200 Concentración VA (M) Tiempo (min) CVA (oil) exp 333 K CVA (oil) exp 313 K CVA (oil) exp 298 K 0,0070 0,0075 0,0080 0,0085 0,0090 0,0095 0,0100 0,0105 0 50 100 150 200 Concentración VA (M) Tiempo (min) CVA (water) exp 333 K CVA (water) exp 313 K CVA (water) exp 298 K 2.2.2.- Transferencia entre fases Los experimentos se llevan a cabo poniendo en contacto 5 ml de agua con 5 ml de decalina (proporción 1:1) en u se le han añadido 20 mg de Aerosil R972. La cantidad de sílice necesaria para estabilizar la emulsión se estima teniendo en cuenta que, como se detalló en el apartado 1.2.3, hay que llegar a un compromiso entre el tamaño el coste económico del estabilizante. Así, una concentración de sílice del 0,4% en peso en fase acuosa (20 mg de sílice en 5 mL de agua) nos proporciona un tamaño de gota adecuado sin necesidad de emplear una cantidad elevada de estabilizante. Para formar la emulsión se introduce el vial en un sonicador durante 4 minutos a una amplitud del 20% sin pulsos. se deja durante 24 horas en reposo para q muestra el aspecto del vial antes de realizar la sonicación y una vez formada la emulsión. Figura 2 Se puede observar como antes de la sonicación la fase acuosa y la fase orgánica no están mezcladas, sin tres fases: la decalina o aceite libre en la parte superior, el agua libre en la parte inferior y la propia emulsión formada por gotas de agua suspendidas en decalina. Luego, se tendrán que analizar cuatro fracc libre, agua libre, agua de la emulsión y aceite de la emulsión. Una vez la emulsión es estable se inyectan 2 mL de vainillina en agua 0.037 M al vial. Estos 2 mL de disolución de vainillina van a parar a la parte inferior de la e mulsión por diferencia de densidades, aumentando el volumen del agua libre y siendo la única fase que a tiempo cero contiene vainillina. 17 Transferencia entre fases en emulsión estable Los experimentos se llevan a cabo poniendo en contacto 5 ml de agua con 5 ml de decalina (proporción 1:1) en u n vial de 20 mL, al que previamente se le han añadido 20 mg de Aerosil R972. La cantidad de sílice necesaria para estabilizar la emulsión se estima teniendo en cuenta que, como se detalló en el apartado 1.2.3, hay que llegar a un compromiso entre el tamaño el coste económico del estabilizante. Así, una concentración de sílice del 0,4% en peso en fase acuosa (20 mg de sílice en 5 mL de agua) nos proporciona un tamaño de gota adecuado sin necesidad de emplear una cantidad elevada de Para formar la emulsión se introduce el vial en un sonicador durante 4 minutos a una amplitud del 20% sin pulsos. Una vez la emulsión está formada se deja durante 24 horas en reposo para q ue se estabilice. La figura 2 muestra el aspecto del vial antes de realizar la sonicación y una vez formada la Figura 2 -5 : Sistema antes y después de la sonicación Se puede observar como antes de la sonicación la fase acuosa y la fase orgánica no están mezcladas, sin embargo, después de la sonicación coexisten tres fases: la decalina o aceite libre en la parte superior, el agua libre en la parte inferior y la propia emulsión formada por gotas de agua suspendidas en decalina. Luego, se tendrán que analizar cuatro fracc iones del sistema: aceite libre, agua libre, agua de la emulsión y aceite de la emulsión. Una vez la emulsión es estable se inyectan 2 mL de vainillina en agua 0.037 M al vial. Estos 2 mL de disolución de vainillina van a parar a la parte mulsión por diferencia de densidades, aumentando el volumen del agua libre y siendo la única fase que a tiempo cero contiene vainillina. Los experimentos se llevan a cabo poniendo en contacto 5 ml de agua n vial de 20 mL, al que previamente se le han añadido 20 mg de Aerosil R972. La cantidad de sílice necesaria para estabilizar la emulsión se estima teniendo en cuenta que, como se detalló en el apartado 1.2.3, hay que llegar a un compromiso entre el tamaño de las gotas y el coste económico del estabilizante. Así, una concentración de sílice del 0,4% en peso en fase acuosa (20 mg de sílice en 5 mL de agua) nos proporciona un tamaño de gota adecuado sin necesidad de emplear una cantidad elevada de Para formar la emulsión se introduce el vial en un sonicador durante 4 Una vez la emulsión está formada ue se estabilice. La figura 2 -5 muestra el aspecto del vial antes de realizar la sonicación y una vez formada la : Sistema antes y después de la sonicación Se puede observar como antes de la sonicación la fase acuosa y la fase embargo, después de la sonicación coexisten tres fases: la decalina o aceite libre en la parte superior, el agua libre en la parte inferior y la propia emulsión formada por gotas de agua suspendidas en iones del sistema: aceite Una vez la emulsión es estable se inyectan 2 mL de vainillina en agua 0.037 M al vial. Estos 2 mL de disolución de vainillina van a parar a la parte mulsión por diferencia de densidades, aumentando el volumen del agua libre y siendo la única fase que a tiempo cero contiene vainillina. 18 Posteriormente se introduce un agitador magnético y se mantiene en agitación a 100 rpm durante distintos tiempos de contacto. A continuación se separan las distintas fases que coexisten en el vial (agua libre, aceite libre y la propia emulsión) con la ayuda de una jeringuilla. Acto seguido se rompe la emulsión por filtrado y se separan el agua y la decalina. Finalmente, se vuelven a filtrar cada una de las cuatro fracciones para eliminar los posibles restos de sílice y se introducen en el cromatógrafo de gases para su análisis. Los resultados obtenidos para la vainillina en el aceite de la emulsión se muestran en la gráfica 2-6. Figura 2-6: Concentración de vainillina en el aceite de la emulsión La evolución de la concentración de vainillina en las gotas de agua de la emulsión y en el agua libre se muestra en la gráfica 2-7. De los resultados se desprende que la concentración de vainillina en el agua libre disminuye con el tiempo, ya que se transfiere tanto al agua de la emulsión como al aceite de la emulsión hasta que el sistema alcanza el equilibrio. Por otro lado, la concentración de vainillina en el aceite libre es cero para todos los tiempos estudiados, por lo que no será necesario su ajuste en etapas posteriores. Esto se debe a que la baja agitación empleada (100 rpm) solamente es apreciable en la interfase agua-emulsión en la parte inferior del vial. Por ello, aunque en un principio la decalina es la fase continua, la vainillina no llega por difusión al aceite libre en la parte superior del vial. Es decir, el vial se comporta como un flujo pistón de forma que, a los tiempos de contacto estudiados, la vainillina no llega a transferirse al aceite libre situado en la parte superior. 0,0000 0,0002 0,0004 0,0006 0,0008 0,0010 0,0012 0,0014 0 200 400 600 800 1000 Concentración VA (M) Tiempo (min) Conc. VA OIL-E 19 Figura 2-7: Concentración de vainillina en el agua de la emulsión y en el agua libre 2.2.3.- Curva de equilibrio Los experimentos se llevan a cabo poniendo en contacto 5 ml de una disolución de vainillina en agua con 5 ml de decalina en un vial de 20 mL. Se trabaja a una velocidad de agitación de 1000 rpm durante 16 horas variando las concentraciones iniciales de la disolución de vainillina en agua. La alta velocidad de agitación y el elevado tiempo de contacto implican que se alcanza el equilibrio entre las dos fases, puesto que, como se puede observar en la figura 2-1, para una velocidad de agitación de 1000 rpm 50 minutos son suficientes para alcanzar la saturación de una disolución de concentración inicial de vainillina en agua 0.01 M. Una vez cumplidas las 16 horas se separan las dos fases y se inyectan en el cromatógrafo de gases para su análisis. Los resultados obtenidos para las distintas concentraciones iniciales de vainillina, así como la recta que se ajusta a los puntos experimentales, se muestran en la figura 2-8. La curva de equilibrio nos indica que, para las concentraciones de trabajo, nos situamos en la zona lineal de la curva de equilibrio, por lo que se puede aplicar la ley de distribución de Nernst para relacionar las concentraciones entra la fase acuosa y la orgánica mediante el coeficiente de reparto correspondiente. 0,000 0,005 0,010 0,015 0,020 0,025 0,030 0,035 0,040 0 200 400 600 800 1000 Concentración VA (M) Tiempo (min) Conc. VA WATER-E Conc. VA WAtER-L 20 Figura 2-8: Curva de equilibrio de la vainillina 2.3.- Medida de transferencia de p-cresol 2.3.1.- Transferencia entre fases sin agente emulsionante El sistema experimental es análogo al empleado para la vainillina, cambiando únicamente el sustrato. Así, el sistema consta de dos fases inmiscibles, una orgánica formada por decalina y una acuosa formada por una disolución de ρ-cresol (MMF) en agua, que se ponen en contacto con una velocidad de agitación determinada. 2.3.1.1.- Influencia de la velocidad de agitación Los experimentos se llevan a cabo poniendo en contacto 5 ml de una disolución de MMF en agua de concentración 0.005 M con 5 ml de decalina en un vial de 20 mL. A continuación se mantiene el vial en agitación a unas revoluciones determinadas durante distintos tiempos de contacto. Una vez cumplido el tiempo elegido se separan las dos fases y se analizan mediante cromatografía de gases para determinar la concentración de MMF en ambas fases. Los resultados obtenidos para las distintas velocidades de agitación se muestran en las figuras 2-9 y 2-10. y = 1,44E-01x + 3,51E-04 R² = 9,98E-01 0 0,001 0,002 0,003 0,004 0,005 0,006 0 0,005 0,01 0,015 0,02 0,025 0,03 0,035 0,04 Concentración VA OIL (M) Concentración VA WATER (M) 21 Figura 2-9: Influencia de la velocidad de agitación en la transferencia de MMF en la fase orgánica Figura 2-10: Influencia de la velocidad de agitación en la transferencia de MMF en la fase acuosa -0,001 8E-18 0,001 0,002 0,003 0,004 0,005 0 20 40 60 80 100 120 140 160 180 200 Concentración MMF (M) Tiempo (min) CMMF (oil) exp 1000 rpm CMMF (oil) exp 800 rpm CMMF (oil) exp 500 rpm CMMF (oil) exp 400 rpm CMMF (oil) exp 300 rpm 0 0,001 0,002 0,003 0,004 0,005 0,006 0 50 100 150 200 Concentración MMF (M) Tiempo (min) CMMF (water) exp 1000 rpm CMMF (water) exp 800 rpm CMMF (water) exp 500 rpm CMMF (water) exp 400 rpm CMMF (water) exp 300 rpm 22 2.3.1.2.- Influencia de la temperatura La forma de operar es análoga a la empleada para determinar la influencia de la temperatura en la transferencia de vainillina en el apartado 2.2.1.2. En primer lugar, se ponen en contacto 5 ml de una disolución de MMF en agua de concentración 0.005 M con 5 ml de decalina en un vial de 20mL. A continuación se pone el sistema en agitación a 300 rpm durante distintos tiempos de contacto para las distintas temperaturas estudiadas (25, 40 y 60 ºC). La temperatura elegida se mantiene mediante un baño de polietilenglicol controlado mediante un termopar. Las disoluciones iniciales se encuentran a la temperatura de trabajo gracias un baño de polietilenglicol idéntico al anterior. Una vez cumplido el tiempo elegido se separan las dos fases y se analizan mediante cromatografía de gases. Los resultados obtenidos para las distintas temperaturas se muestran en las gráficas 2-11 y 2-12. Figura 2-11: Influencia de la temperatura en la transferencia de MMF en la fase orgánica 0 0,001 0,002 0,003 0,004 0,005 0 50 100 150 200 Concentración MMF (M) Tiempo (min) CMMF (oil) exp 333 K CMMF (oil) exp 313 K CMMF (oil) exp 298 K 23 Figura 2-12: Influencia de la temperatura en la transferencia de MMF en la fase acuosa 2.3.2.- Transferencia entre fases en emulsión estable Como en el caso de la transferencia entre fases sin emulsión, el sistema experimental es análogo al empleado para la vainillina cambiando únicamente el sustrato. Así, la formación de la emulsión sigue las mismas pautas que en el apartado 2.2.2. Una vez la emulsión es estable se inyectan 2 mL de MMF en agua 0.037 M al sistema. A continuación se introduce un agitador magnético y se mantiene en agitación a 100 rpm durante distintos tiempos de contacto. Los resultados obtenidos para la concentración de MMF en el aceite de la emulsión se muestran en la figura 2-13, mientras que la evolución de la concentración de MMF en las gotas de agua de la emulsión y en el agua libre se muestra en la figura 2-14 Además, como ocurre con la transferencia de vainillina, la concentración de MMF en el aceite libre es cero para todos los tiempos estudiados. 0,000 0,001 0,002 0,003 0,004 0,005 0,006 0 50 100 150 200 Concentración MMF (M) Tiempo (min) CMMF (water) exp 333 K CMMF (water) exp 313 K CMM (water) exp 298 K 24 Figura 2-13: Concentración de MMF en el aceite de la emulsión Figura 2-14: Concentración de MMF en el agua de la emulsión y en el agua libre 0,000 0,002 0,004 0,006 0,008 0,010 0,012 0,014 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 Concentración MMF (M) Tiempo (min) Conc. MMF OIL-E 0,000 0,005 0,010 0,015 0,020 0,025 0,030 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 Concentración MMF (M) Tiempo (min) Conc. MMF WATER-E Conc. MMF WATER-L 31 Las ecuaciones finales dan: ( ) ,0 , , , (1 · ) L L f A A L L f A A L d obs A C C C C k t − = + + [3-31] ( ) , ,0 , , (1 · ) E f E A A E E f A A E d obs A C C C C k t − = − + [3-32] Siendo: 1 1 d n = − [3-33] , ,0 , (1 ) ( 1)· ( ) L LA obs A L L F n A A n K kC C − − =− [3-34] , , ,0 (1 ) ( 1)· ( ) E EA obs A E f E n A A n K kC C − − =− [3-35] Donde los parámetros a ajustar son n, , obs A k , 0 A C y f A C . 3.1.2.2.- Modelo exponencial En este modelo suponemos que la transferencia de materia en la emulsión se puede explicar como una suma de funciones exponenciales. Las ecuaciones que rigen el modelo para una sustancia A que se transfiere desde la fase libre (L) hasta la emulsión (E) son: ( ) 1 ·exp · n L L L A i i i C C k t = = − ∑ [3-36] ( ) ( ) 1 · 1 exp · n E E E A i i i C C k t = = − − ∑ [3-37] Donde n es el orden del modelo, Ci el parámetro preexponecial de la exponencial i, y k i la constante observada para la exponencial i. 32 3.2.- Transferencia de vainillina 3.2.1.- Transferencia entre fases sin agente emulsionante 3.2.1.1.- Influencia de la velocidad de agitación A partir de los datos experimentales correspondientes a la transferencia de vainillina, recogidos en el apartado 2.2.1.1, se realiza el ajuste matemático de la ecuación 3-20, minimizando el error absoluto a través del programa informático Microsoft Excel. Las curvas obtenidas, así como los datos experimentales, se recogen en la figura 3-1. Figura 3-1: Modelado de la transferencia de vainillina. Influencia de la velocidad de agitación Los valores obtenidos de cada uno de los parámetros ajustados, con su respectivo error estándar, se muestran en la tabla 3-1.  Velocidad agitación (rpm)    ·  (min-1) ± e.e. H VA ± e.e. R2 1000 0,368 0,028 4,00 3,44E-02 0,998 800 0,222 0,016 4,00 5,36E-02 0,996 500 0,063 0,007 4,26 1.58E-01 0,984 400 0,063 0,006 4,38 1,44E-01 0,987 300 0,038 0,002 4,22 1,03E-01 0,995 Tabla 3-1: Parámetros de ajuste de vainillina 0,0000 0,0005 0,0010 0,0015 0,0020 0 50 100 150 200 Concentración VA (M) Tiempo (min) CVA (oil) exp 1000 rpm CVA (oil) calc 1000 rpm CVA (oil) exp 800 rpm CVA (oi) calc 500 rpm CVA (oil) exp 500 rpm CVA (oil) calc 500 rpm CVA (oil) exp 400 rpm CVA (oil) calc 400 rpm CVA (oil) exp 300 rpm CVA (oil) calc 300 rpm 33 La representación de los coeficientes volumétricos de transferencia frente a la velocidad de agitación se muestra en la figura 3-2. Se puede observar cómo el coeficiente volumétrico para la fase orgánica aumenta con la velocidad de agitación, ajustándose con muy buena regresión a una función exponencial. Figura 3-2: Dependencia del coeficiente volumétrico de transferencia de la vainillina con la velocidad de agitación Es decir, entre el intervalo de velocidades de agitación estudiadas, se puede afirmar que el coeficiente volumétrico de transferencia para la vainillina en la fase orgánica aumenta con la velocidad de agitación siguiendo una tendencia exponencial. 3.2.1.2.- Influencia de la temperatura A partir de los datos experimentales mostrados en el apartado 2.2.1.2 se realiza un ajuste de la ecuación 3-20 de forma análoga al realizado en el apartado anterior. Los parámetros obtenidos para las distintas temperaturas, a 300 rpm, se detallan en la tabla 3-2. Temperatura (ºC)    ·  (min-1) ± e.e. H VA ± e.e. R2 25 0,038 0,002 4,22 1,03E-01 0,995 40 0,053 0,004 3,39 8,34E-02 0,994 60 0,059 0,007 2,90 1,20E-01 0,982 Tabla 3-2: Parámetros de ajuste de vainillina a distinta temperatura y = 1,46E-02e3,27E-03x R² = 9,82E-01 0,00 0,05 0,10 0,15 0,20 0,25 0,30 0,35 0,40 0,45 0 200 400 600 800 1000 1200 KLVA·a (oil) (min-1) rpm KVA·a (oil) Exponencial (KVA·a (oil)) 34 La figura 3-3 muestra tanto las funciones ajustadas como los datos experimentales. Asimismo, la figura 3-4 muestra la representación del coeficiente volumétrico de transferencia y del coeficiente de reparto frente a la temperatura. Figura 3-3: Modelado de la transferencia de vainillina. Influencia de la temperatura Figura 3-4: Dependencia del coeficiente volumétrico de transferencia de la vainillina con la temperatura 0,0000 0,0005 0,0010 0,0015 0,0020 0,0025 0,0030 0 50 100 150 200 Concentración VA (M) Tiempo (min) CVA (oil) exp 333 K CVA (oil) calc 333 K CVA (oil) exp 313 K CVA (oil) calc 313 K CVA (oil) exp 298 K CVA (oil) calc 298 K 0 0,5 1 1,5 2 2,5 3 3,5 4 4,5 0 0,01 0,02 0,03 0,04 0,05 0,06 0,07 290 300 310 320 330 340 H VA KLVA·a (oil) (min-1) Temperatura (K) KVA·a (oil) HVA 35 A partir de estos resultados se puede observar que el coeficiente volumétrico de transferencia aumenta con la temperatura. Esto nos indica que la transferencia de materia es más rápida conforme aumenta la temperatura, ya que aumenta la energía cinética de las partículas del sistema y disminuye la viscosidad de la mezcla. Asimismo, la solubilidad de la vainillina en la fase orgánica también aumenta con la temperatura puesto que el coeficiente de reparto disminuye. Finalmente, también hay que destacar que los valores superiores a la unidad del coeficiente de reparto H VA confirman que la vainillina es más soluble en la fase acuosa que en la orgánica. 3.2.1.3.- Cálculo de la longitud característica Las constantes obtenidas en los dos apartados anteriores mediante el ajuste matemático de la ecuación 3-20 no representan únicamente el valor del coeficiente global de transferencia, ya que incluyen también el término a que representa el área interfacial. El área interfacial (a) se define como la superficie de contacto por unidad de volumen. Para simplificar los cálculos se considera que el sistema bifásico en agitación esta constituido por una dispersión de gotas esféricas de decalina en agua, sin llegar a formar emulsión. De esta forma, el área interfacial se define como: 2 6 2 2 L a L L π π       = =       [3-38] Donde L es la longitud característica. Esta longitud se relaciona con la constante global de transferencia (K L) mediante el número adimensional de Sherwood (Sh): ef L D LK Sh · = [3-39] Siendo D ef la difusividad efectiva del soluto en el fase que se considera. La difusividad efectiva se calcula a partir de la difusividad teórica usando la fórmula conocida como ecuación de Wilke y Chang [11]: ( ) 0.5 16 0.6 , 1.173·10 · · w w wmVA M T DV φ µ − = [3-40] 36 El factor w ϕ es una constante adimensional que depende del medio, M w es el peso molecular del disolvente, T es la temperatura en Kelvin, µ la viscosidad de la solución, y V m,VA el volumen molar de la vainillina que se calcula por sus grupos constitucionales [12]. Por otro lado, el número de Sherwood se compone de dos términos: • Un término debido al transporte de materia difusivo (Sh 0 ), que intenta igualar los potenciales químicos de ambas fases. • Un término convectivo debido a la transferencia forzada que tiene lugar por la agitación, y que depende del fenómeno de turbulencia representado por el número de Reynolds (Re) y del propio transporte convectivo que viene descrito por el número de Schmidt (Sc). Según lo expuesto, el número de Sherwood queda expresado como: { ( ) 43421 forzada convección molecular difusión ScfShSh Re, 0 + = [3-41] La expresión exacta ha sido estudiada por diferentes autores en función de las características del sistema, sin que haya una única fórmula que sirva para cualquier sistema y sin que exista una fórmula que se ajuste perfectamente a la realidad de cada caso. En nuestro caso consideraremos válida la ecuación general de Frössling [13] que define el número de Sherwood como: 3 1 ··Re55.02 5.0 ScSh += [3-42] Despejando K L de la ecuación 3-39: · ef L D Sh K L = [3-43] Cuando no existe emulsión y el soluto está disuelto, la difusividad efectiva se puede considerar igual a la calculada por la ecuación 3-40, mientras que Sh se obtiene mediante la ecuación 3-42. Multiplicando la ecuación 3-39 por el área interfacial: · · 6 ··· w w L D Sh D Sh K a a L L L = = [3-44] 37 Finalmente, la única variable desconocida es la longitud característica: · ( · ) w L D Sh L K a = [3-45] Así, el procedimiento a seguir consiste en calcular el valor de L a partir de los coeficientes volumétricos de transferencia obtenidos en el apartado 3.2.1.1. A continuación se calcula el área interfacial mediante la ecuación 3-38 y finalmente se despeja el valor del coeficiente global de transferencial, K L VA . Los valores obtenidos se muestran en la tabla 3-3. rpm Sh    ·  (min-1) L (m) a (m-1)    (m/s) 1000 1475,00 0,368 0,0041 1462,28 2,52E-04 800 1319,49 0,222 0,0050 1199,61 1,85E-04 500 1043,57 0,063 0,0083 719,07 8,77E-05 400 933,61 0,063 0,0079 759,33 8,28E-05 300 808,79 0,038 0,0095 632,69 5,98E-05 Tabla 3-3: Coeficientes globales de transferencia de vainillina Se observa que el valor del área interfacial aumenta con la velocidad de agitación siguiendo una tendencia exponencial. Es decir, conforme aumentan las revoluciones por minuto la superficie de transferencia por unidad de volumen se incrementa. Por otro lado,    también aumenta con la velocidad de agitación, por lo que una mayor velocidad de agitación favorece el transporte de materia de vainillina. Figura 3-5: Dependencia de los coeficientes globales de transferencia de vainillina con la velocidad de agitación y = 435,89e0,0012x R² = 0,9657 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 0,00E+00 5,00E-05 1,00E-04 1,50E-04 2,00E-04 2,50E-04 3,00E-04 0 200 400 600 800 1000 1200 a (m-1) KLVA (oil) (m/min) rpm KL VA a Exponencial (a) 38 3.2.2.- Transferencia entre fases en emulsión estable Como ya se ha explicado anteriormente, la dificultad de los procesos de transferencia de materia que tienen lugar en el seno de la emulsión nos llevan a realizar un ajuste experimental de los datos, suponiendo a priori que la concentración de vainillina sigue una evolución potencial o exponencial. De esta forma, se calcularán los parámetros de ajuste para los dos modelos, potencial y exponencial, y finalmente se elegirá el más óptimo según el criterio de selección de modelos. Los datos experimentales de transferencia entre fases con emulsión para la vainillina están recogidos de forma gráfica en el apartado 2.2.2. Este procedimiento se repetirá para cada una de las tres fracciones del sistema analizadas (aceite emulsión, agua emulsión y agua libre), teniendo en cuenta que la concentración de vainillina en el aceite libre es cero. Los distintos parámetros obtenidos, así como sus respectivos errores estándar, para cada modelo y fase se muestran en el anexo 7.3. 3.2.2.1.- Fase aceite emulsión En primer lugar se realizará el ajuste siguiendo el modelo potencial desarrollado en el apartado 3.1.2.1. Así, a partir de los datos experimentales de transferencia de vainillina en el aceite de la emulsión se realiza el ajuste matemático de la ecuación 3-32 minimizando el error absoluto. La figura 3-6 muestra el ajuste potencial sobre los datos experimentales. La ecuación que nos minimiza el error es una potencial de orden dos. Este orden dos se explica porque la vainillina se transfiere al aceite de la emulsión mediante dos mecanismos complementarios: desde el agua libre en la parte inferior y desde las gotas de agua que se encuentran en el seno de la emulsión. Este fenómeno de orden dos se mantendrá en todos los modelos cuando ajustemos datos procedentes de experimentos de transferencia en presencia de emulsión, ya que siempre la fase estudiada estará en contacto con otras dos fases que intervendrán en la transferencia de materia. A continuación se realiza en ajuste de los mismos datos mediante el modelo exponencial. De esta forma, se realizará el ajuste de la ecuación 3-37 con n=2 para mantener el orden del sistema y poder comparar los modelos. La figura 3-7 muestra el ajuste exponencial sobre los datos experimentales. 39 Figura 3-6: Modelo potencial de transferencia de vainillina en el aceite de la emulsión Figura 3-7: Modelo exponencial de transferencia de vainillina en el aceite de la emulsión 0,0000 0,0002 0,0004 0,0006 0,0008 0,0010 0,0012 0,0014 0 200 400 600 800 1000 1200 CVA O-E (M) Tiempo (min) CVA O-E CVA calc Mod_Pot 0,0000 0,0002 0,0004 0,0006 0,0008 0,0010 0,0012 0,0014 0 200 400 600 800 1000 1200 CVA O-E (M) Tiempo (min) CVA O-E CVA cal Mod_Exp exp1 exp2 40 3.2.2.2.- Fase agua emulsión La formar de trabajar es similar a la empleada en el apartado anterior. En primer lugar se aplicará el modelo potencial sobre los datos experimentales recogidos en el apartado 2.2.2 para la transferencia de vainillina en el agua de la emulsión, y posteriormente se ajustarán los mismos datos empleando el modelo exponencial. Así, ajustando la ecuación 3-32 de forma que se minimiza el error absoluto, se obtiene una ecuación potencial de orden dos que se representa junto a los datos experimentales en la figura 3-8. Figura 3-8: Modelo potencial de transferencia de vainillina en el agua de la emulsión Como en el caso anterior de transferencia en el aceite de la emulsión, el orden dos se explica porque existe transferencia de vainillina mediante dos mecanismos: entre el de agua de la emulsión y el agua libre, y entre el agua de la emulsión y el aceite de la emulsión. A continuación se realiza el ajuste de los mismos datos mediante el modelo exponencial. Como ya se ha explicado, se realizará el ajuste de la ecuación 3-37 con n=2 para mantener el orden del sistema y poder comparar los modelos. La exponencial obtenida, así como los datos experimentales, se representan en la figura 3-9. 0,000 0,001 0,002 0,003 0,004 0,005 0,006 0,007 0 200 400 600 800 1000 1200 CVA W-E (M) Tiempo (min) CVA calc Mod_Pot CVA W-E 47 Figura 3-15: Dependencia del coeficiente volumétrico de transferencia del MMF con la temperatura 3.3.1.3.- Cálculo de la longitud característica La forma de operar para obtener los valores de longitud característica es análoga a la empleada para la vainillina. Así, el procedimiento a seguir consiste en calcular el valor de L a partir de los coeficientes obtenidos para cada velocidad de agitación en el apartado 3.3.1.1. A continuación se calcula el área interfacial mediante la ecuación 3-38 y finalmente se despeja el valor del coeficiente global de transferencial, K L MMF . Los valores obtenidos para cada uno de los parámetros se muestran en la tabla 3-7. rpm Sh    ·  (min-1) L (m) a (m-1)    (m/s) 1000 1488,65 0,263 0,0048 1247,77 2,11E-04 800 1331,70 0,110 0,0070 852,09 1,29E-04 500 1053,22 0,017 0,0159 378,18 4,52E-05 400 942,24 0,008 0,0218 275,81 2,95E-05 300 816,27 0,006 0,0246 243,63 2,26E-05 Tabla 3-7: Coeficientes globales de transferencia de p-cresol Se puede observar que el valor del área interfacial aumenta al aumentar la velocidad de agitación siguiendo una tendencia exponencial. Asimismo, el coeficiente global de transferencia también aumenta con la velocidad de agitación como sucede con la transferencia de vainillina. 0 0,02 0,04 0,06 0,08 0,1 0,12 0,14 0,16 0,000 0,005 0,010 0,015 0,020 0,025 0,030 290 300 310 320 330 340 H MMF KLMMF·a (oil) (min-1) Temperatura (K) KMMF·a (oil) HMMF 48 Figura 3-16: Dependencia de los coeficientes globales de transferencia de MMF con la velocidad de agitación 3.3.2.- Transferencia entre fases en emulsión estable La forma de trabajar es análoga a la empleada en el apartado 3.2.2 para la transferencia de vainillina. De esta forma, se calcularán los parámetros de ajuste para los dos modelos, potencial y exponencial, y finalmente se elegirá el más óptimo según el criterio de selección de modelos. Este procedimiento se repetirá para cada una de las tres fracciones del sistema analizadas (aceite emulsión, agua emulsión y agua libre) teniendo en cuenta que, al igual que ocurre con la vainillina, la concentración de MMF en el aceite libre es cero. Los datos experimentales de transferencia entre fases en emulsión para el MMF se muestran representados de forma gráfica en el apartado 2.3.2. Los distintos parámetros obtenidos para cada modelo y fase se muestran en el anexo 7.4. Hay que señalar que, como sucede para la transferencia de vainillina, el orden de las ecuaciones de ajuste que mejor representa el fenómeno de trasferencia es el orden dos, ya que siempre la fase estudiada estará en contacto con otras dos fases que intervendrán en la transferencia de materia. 3.3.2.1.- Fase aceite emulsión La figura 3-17 muestra el ajuste potencial (ecuación 3-32) sobre los datos experimentales en el aceite de la emulsión para el MMF, mientras que la figura 3-18 muestra el ajuste exponencial (ecuación 3-37). y = 1,11E+02e2,46E-03x R² = 9,93E-01 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 0,00E+00 5,00E-05 1,00E-04 1,50E-04 2,00E-04 2,50E-04 0 200 400 600 800 1000 1200 a (m-1) KL MMF (m/min) rpm KL MMF a Exponencial (a) 49 Figura 3-17: Modelo potencial de transferencia de MMF en el aceite de la emulsión Figura 3-18: Modelo exponencial de transferencia de MMF en el aceite de la emulsión 0,000 0,002 0,004 0,006 0,008 0,010 0,012 0,014 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 CMMF OIL-E (M) Tiempo (min) CMMF calc Mod_Pot CMMF OIL-E 0,000 0,002 0,004 0,006 0,008 0,010 0,012 0,014 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 CMMF OIL-E (M) Tiempo (min) CMMF OIL-E CMMF calc Mod_Exp exp1 exp2 50 3.3.2.2.- Fase agua emulsión La figura 3-19 muestra el ajuste potencial (ecuación 3-32) sobre los datos experimentales y la figura 3-20 muestra el ajuste exponencial (ecuación 3-37). Figura 3-19: Modelo potencial de transferencia de MMF en el agua de la emulsión Figura 3-20: Modelo exponencial de transferencia de MMF en el agua de la emulsión 0,0000 0,0002 0,0004 0,0006 0,0008 0,0010 0,0012 0,0014 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 CMMF W-E (M) Tiempo (min) CMMF calc Mod_Pot CMMF W-E 0,0000 0,0002 0,0004 0,0006 0,0008 0,0010 0,0012 0,0014 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 CMMF W-E (M) Tiempo (min) CMMF W-E CMMF calc Mod_Exp Exp1 Exp2 51 3.3.2.3.- Fase agua libre La figura 3-21 muestra el ajuste potencial (ecuación 3-31) sobre los datos experimentales y la figura 3-22 muestra el ajuste exponencial (ecuación 3-36). Figura 3-21: Modelo potencial de transferencia de MMF en el agua libre Figura 3-22: Modelo exponencial de transferencia de MMF en el agua libre 0,000 0,002 0,004 0,006 0,008 0,010 0,012 0,014 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 CMMF W-L (M) Tiempo (min) C MMF calc Mod_Pot CMMF W-L 0,000 0,002 0,004 0,006 0,008 0,010 0,012 0,014 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 CMMF W-L (M) Tiempo (min) CMMF W-L CMMMF cal Mod_Exp exp 1 exp 2 52 3.3.2.4.- Selección y comparación de modelos Para comprobar que método de ajuste es más óptimo se aplica el criterio de selección de modelos (ecuación 3-46). Los valores del parámetro de selección se muestran en el anexo 7.4 para cada modelo y fase, resultando siempre superior el valor obtenido por el modelo potencial. Así, como ocurre con la vainillina, el modelo potencial es preferible al exponencial ya que para una regresión similar necesita un menor número de parámetros para su ajuste. De forma análoga al apartado 3.2.2.4, para poder comparar constantes es necesario aplicar también el modelo potencial a los datos obtenidos en los experimentos de transferencia de MMF sin emulsión (apartado 2.3.1). Las distintas constantes potenciales para el MMF en la fase orgánica se recogen en la tabla 3-7. Como sucede con la transferencia de vainillina, estos valores son muy inferiores al obtenido para la transferencia de MMF en el aceite de la emulsión ( K   =2,05 L/mol·min). T (º C) rpm    (min-1) ± e.e. 25 1000 1,157 0,348 25 800 1,035 0,272 25 500 0,227 0,030 25 400 0,119 0,014 25 300 0,084 0,011 40 300 0,184 0,032 60 300 0,253 0,034 Tabla 3-7: Constantes potenciales de transferencia de p-cresol 53 4.- CONCLUSIONES A partir de los resultados obtenidos se observa que la velocidad transferencia de materia en el sistema agua-decalina está fuertemente influenciada por la velocidad de agitación y por la temperatura. Un incremento en la velocidad de agitación favorece la mezcla entre las dos fases y facilita el transporte de materia, ya que aumenta la turbulencia y el área de contacto. Un incremento de la temperatura aumenta la energía cinética de las moléculas del sistema, favoreciendo la difusión y disminuyendo la viscosidad de la mezcla. Esto explica que los coeficientes volumétricos de transferencia de la vainillina y el p-cresol aumenten con la temperatura y la velocidad de agitación (i.e. figuras 3-2, 3-3, 3-13 y 3-15). Por otro lado, los resultados obtenidos para los coeficientes de reparto confirman la suposición inicial que consideraba la vainillina más soluble en la fase acuosa y el p-cresol más soluble en la fase orgánica. Igualmente, se ha comprobado, mediante el cálculo de las áreas interfaciales del sistema bifásico, que la agitación aumenta la superficie por unidad de volumen disponible para la transferencia siguiendo una tendencia exponencial. Asimismo, se ha determinado que la transferencia de materia del alcohol vainillínico es inexistente, al menos con la sensibilidad del equipo instrumental empleado, considerándose sus coeficientes globales de transferencia iguales a cero. A la hora de estudiar el efecto de la emulsión estable en el sistema, la complejidad de los fenómenos que tienen lugar simultáneamente en el seno de la emulsión ha conducido al ajuste empírico de los datos, seleccionándose el modelo potencial de orden dos como el que mejor representa la evolución de la concentración de la vainillina y el p-cresol en la emulsión. Finalmente, se ha comprobado que la formación de una emulsión tipo “pikering” influye significativamente en la velocidad de transferencia de materia, aumentando en gran medida los valores de los coeficientes obtenidos con el modelo potencial para el sistema sin emulsión. En resumen, el trabajo desarrollado ha permitido desarrollar una metodología sistemática para calcular los coeficientes de transferencia necesarios para el futuro planteamiento de un modelo global del proceso de transformación de la vainillina en 2-metoxifenol. 54 5.- BIBLIOGRAFÍA [1] “An overview of aqueous-phase catalytic processes for production of hydrogen and alkanes in a biorefinery” G.W. Huber, J.A. Dumesic. Catalysis Today (2006), 111-119. [2] Operaciones de Transferencia de Masa. Robert E. Treybal. McGraw-Hill (1988) [3] Ingeniería Química. Flujo de fluidos, transmisión de calor y transferencia. John Metcalfe Coulson, J. F. Richardson. Reverté (1979) [4] Termodinámica Química. Juan A. Rodríguez Renuncio. Síntesis (1998) [5] Emulsions, Foams, and Suspensions: Fundamentals and Applications. Laurier L. Schramm. Wiley-VCH (2005) [6] “The theory of emulsification”. P. Finkle, H.D. Draper, and J.H. Hildebrand. Journal of the American Chemical Society (1923), 45, 2780-2788. 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Prentice Hall (2003). 55 6.- NOMENCLATURA o A KL a : Coeficiente volumétrico de transferencia de A en la fase orgánica, 1/min o A KL : Coeficiente global de transferencia de A en la fase orgánica, m/min a : Área interfacial, 1/m A H : Coeficiente de reparto de A o A C : Concentración de A en la fase orgánica, mol/L * o A C : Concentración de saturación de A en la fase orgánica, mol/L w A C : Concentración de A en la fase acuosa, mol/L * w A C : Concentración de saturación de A en la fase acuosa, mol/L t : Tiempo, min S h : Número de Sherwood Re : Número de Reynolds S c : Número de Schmidt L : Longitud característica, m ef D : Difusividad efectiva, 1/min n : Orden de ajuste del modelo o A K : Constante potencial en la fase orgánica, (L/mol) n-1 /min C SM : Parámetro de selección de modelos