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Repositorio de la Universidad de Zaragoza – Zaguán http://zaguan.unizar.es Proyecto Fin de Carrera Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) Autor María Betrán Cebrián Director Joaquín Aibar Lete Escuela Politécnica Superior de Huesca 2013 ÍNDICE Resumen ........................................................................................................................................ 1 Abstract ......................................................................................................................................... 2 1. Introducción .......................................................................................................................... 3 1.1. El manzano .................................................................................................................... 3 1.1.1. Origen e historia .................................................................................................... 3 1.1.2. Situación actual del manzano ............................................................................... 5 1.1.3. Descripción botánica ............................................................................................. 9 1.1.4. Exigencias del cultivo........................................................................................... 12 1.1.5. Principales plagas y enfermedades ..................................................................... 13 1.2. Control biológico y control integrado ......................................................................... 14 1.3. Panonychus ulmi ......................................................................................................... 16 1.3.1. Descripción de la plaga ........................................................................................ 16 1.3.2. Ciclo biológico ..................................................................................................... 18 1.3.3. Daños provocados por p.ulmi ............................................................................. 20 1.3.4. Control de la plaga .............................................................................................. 22 1.3.5. Historia y situación actual de la plaga ................................................................. 27 1.4. Amblyseius andersoni .................................................................................................. 28 1.4.1. Descripción del depredador ................................................................................ 28 1.4.2. Ciclo biológico ..................................................................................................... 30 1.4.3. Modo de accióncontrol ..................................................................................... 31 1.4.4. Situación geográfica del depredador .................................................................. 32 1.4.5. Hábitats ............................................................................................................... 33 1.5. Antecedentes .............................................................................................................. 33 1.5.1. En el mundo ........................................................................................................ 33 1.5.2. En España ............................................................................................................ 34 1.5.3. En Aragón ............................................................................................................ 35 2. Objetivos ............................................................................................................................. 36 3. Material y métodos ............................................................................................................. 37 3.1. Situación geográfica del ensayo .................................................................................. 37 3.2. Zona de estudio ........................................................................................................... 39 3.3. Materiales ................................................................................................................... 40 3.3.1. Material vegetal .................................................................................................. 40 3.3.2. Material biológico ............................................................................................... 41 Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 3.3.3. Embudos berlese ................................................................................................. 43 3.4. Diseño experimental ................................................................................................... 44 3.5. Análisis de datos .......................................................................................................... 45 3.6. Procedimiento ............................................................................................................. 46 3.6.1. Colocación de sobres ........................................................................................... 46 3.6.2. Colocación de material suelto ............................................................................. 47 3.6.3. Muestreo de hojas en campo .............................................................................. 47 3.6.4. Muestreo con embudos berlese ......................................................................... 49 4. Resultados y discusión ........................................................................................................ 51 5. Conclusiones........................................................................................................................ 75 6. Bibliografía .......................................................................................................................... 77 Anexos Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 1 RESUMEN En este trabajo se realizó un ensayo de control biológico de araña roja (Panonychus ulmi) en manzano, mediante la suelta del depredador fitoseido Amblyseius andersoni. El ensayo tuvo lugar en una finca de manzano con amplio historial de araña roja situada en Calatayud. Se compararon cuatro tesis diferentes realizando tres repeticiones de cada una de ellas. En la Tesis 1 se soltaron 75.000 individuos/ha en formato de sobre, en la Tesis 2 se soltaron 50.000 individuos/ha en sobres, en la Tesis 3 se soltaron 50.000 individuos/ha en cajitas con material suelto y por último la tesis 4 era el testigo. Semanalmente se procesaron en campo muestras de hojas en las que se determinaron el porcentaje de ocupación por fitoseidos y por adultos de P.ulmi. Cada quince días fueron también se recogieron muestras para procesarlas mediante embudos Berlese, considerando el número de formas móviles de fitoseidos y arañas presentes en las muestras. Los resultados obtenidos determinan que los fitoseidos, sin diferencia entre las tesis, no se han instalado correctamente, al no haberse mostrado ningún tipo de incremento de su población tras la suelta. Dicho resultado ha podido ser debido a las anómalas condiciones meteorológicas que han tenido lugar durante el ensayo, con temperaturas más elevadas de lo habitual y principalmente con humedades relativas muy bajas. Por su parte, la población de araña roja, tampoco ha mostrado diferencias entre las tesis, tras aumentar su población durante las primeras semanas de ensayo, ha ido disminuyendo con el tiempo hasta alcanzar niveles bajos de ocupación hacia el final del verano. Stethorus spp., un coccinélido común en zonas con presencia de araña roja, ha realizado una intensa labor depredadora causando el descenso de población de plaga. Se ha realizado un análisis estadístico de los resultados obtenidos mediante los embudos Berlese; así como un cálculo de los costes del tratamiento biológico frente a los costes de un tratamiento químico convencional. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 2 ABSTRACT In this study it was made a test of biological control of Panonychus ulmi, by the release of phytoseiid predator Amblyseius andersoni. The test took place on a farm with an extensive history of apple red spider located in Calatayud. Four different thesis, with three repetitions each one, were compared on this test. In Thesis 1, 75,000 ind./ha were released in small bags, in Thesis 2, 50,000 ind./ha were released in small bags, in Thesis 3 were released 50,000 ind./ha in boxes with and finally the thesis 4 was the control. Each week leaf samples were processed, determining the occupancy rate by phytoseiid and P.ulmi adults. Every fortnight was also collected sample for processing by Berlese funnels, considering the number of mobile forms of phytoseiid and spiders present in the samples. The results determined that the phytoseiid, with no difference between the thesis, not installed correctly, without having shown any increase in its population after the release. Surely this result is due to abnormal weather conditions that occurred during the test, with higher temperatures than usual and mainly very low relative humidities. Meanwhile, the population of spider mites, which also showed no differences between the thesis, after increasing in the first weeks of test, has been declining over time to achieve low levels of occupancy by the end of summer. Stethorus spp. worked intensively to decrease plague population. There was a statistical analysis of the results obtained using Berlese funnels, confirming the absence of significant differences among thesis for different sampling dates. Finally, it has carried out a calculation of biological treatment costs compared to the costs of conventional chemical treatment. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 3 1. INTRODUCCIÓN 1.1. EL MANZANO El manzano, Malus domestica, Borkh, es un árbol de la familia de las rosáceas, cultivado por su fruto y muy apreciado como alimento. Se trata de un cultivo ampliamente extendido en el mundo debido a su adaptabilidad a diferentes climas y condiciones, existiendo multitud de variedades con diferentes características organolépticas y cualidades nutricionales. 1.1.1. ORIGEN E HISTORIA Se desconoce el origen exacto del manzano cultivado (Malus x domestica, Borkh), aunque se cree que el Malus sieversii (Ledeb.) Roem., una especie silvestre que crece en las regiones montañosas de Asia Central, podría ser el progenitor de las primeras especies cultivadas hace 15.000 o 20.000 años. Muchos han sido los investigadores que hasta hoy han intentado desvelar esta incógnita y determinar el origen del manzano mediante sus estudios y teorías. En 1930, el biólogo y genetista ruso Vavilov, sugirió (formando parte de su Teoría de los centros de origen o centros de genes), que Turkestán (región de Asia Central) pudo ser el lugar de origen de M. sieversii y M. domestica (Robinson et al., 2001). Como en esta zona existe una gran variedad de manzanos, muchos autores están de acuerdo en situar el origen de la planta en Asia Central (Janick et al., 1996). Por otra parte, Zhou (1999) se refiere a China como lugar originario, argumentando que alrededor del 80% de las variedades existentes las podemos encontrar en este país. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 4 Büttner et al. (2000) propusieron que algunas de las especies de manzano con grandes frutos, se desarrollaron entre Asia Central y Europa Central y que M. sieversii es el antecesor de nuestro M x domestica. Al emigrar a través de la “Ruta de la Seda” pudieron cruzarse con otras especies silvestres. Todos estos autores coinciden en que M. sylvestris var. Sylvestris no tuvo nada que ver en el proceso, sin embargo Boré y Fleckinger (1997) afirman lo contrario. Janick et al. (1996) consideran que M. sieversii pudo cruzarse con otras especies como M. orientalis, M. sylvestris, M. baccata, M. mandshurica y M. prunifolia. Mediante avanzadas técnicas de análisis, Pereira et al. (2009) demostraron que las especies silvestres de Asia Central y las cultivadas tienen mucho en común con M. asiática, M. orientalis, M. niedzwetyana y M. prunifolia. Diversos estudios arqueológicos revelan que en Europa Central en la Edad de Piedra ya consumían manzanas desecadas al sol. Los restos más antiguos corresponden a la primera época de la Edad de Hierro, entre 8.000 y 2.500 años antes de Cristo. Egipto, China, Grecia, Israel y Roma revelan la presencia del manzano en distintas fuentes documentales. Las civilizaciones egipcia, griega y romana cultivaron manzanos. Esta última los extendió por la mayor parte de sus colonias mediterráneas e inmortalizaron esta fruta en historias mitológicas y textos de gastronomía romana (De recoquinaria de Apicio en el siglo I d.C.). Aunque ya en época romana se producía manzana en la Península Ibérica, fueron los musulmanes quienes, a partir del siglo VIII, popularizaron su consumo. Durante la edad media, a pesar de su origen salvaje, fue cultivada y consumida por las clases sociales acomodadas y en los alrededores de los monasterios. En el siglo XVI llega con los nuevos colonizadores a Iberoamérica y unos cien años más tarde ya se cultivaba en América del Norte (Yapert, 2000). También fueron los colonizadores europeos los que introdujeron el cultivo en Sudáfrica, Australia y Nueva Zelanda. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 5 A partir del siglo XX, después de la primera guerra mundial, comienzan a aparecer las primeras plantaciones comerciales en España, principalmente en la provincia de Zaragoza en los Valles de los ríos Jalón y Jiloca aunque no será hasta los años 50 y 60 cuando se produzca la gran expansión de este cultivo con importantes plantaciones para manzana de mesa en Cataluña y en Aragón y para sidra en Asturias. En esta última región debido a la tradición sidrera en la zona ya era importante este cultivo con anterioridad. 1.1.2. SITUACIÓN ACTUAL DEL MANZANO El cultivo del manzano crece espontáneamente en montes de Europa y Asia Central (Janick, 2002). Por su adaptación a un amplio rango de condiciones climáticas, a diversos suelos y sistemas de cultivo, el manzano se cultiva extensamente en Europa, Norte y Sur de América, Nueva Zelanda, Australia y Asia. En el mundo En la figura 1 se presenta el mapa del mundo en diferentes tonalidades de verde en función de la producción media mundial de manzana entre el año 2000 y 2010: Figura 1. Mapa del mundo de producción media mundial de manzana entre el año 2000 y 2010 (FAOSTAT 2012) Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 6 Más concretamente, en el año 2010, los diez países del mundo con mayor producción de manzana son detallados en la siguiente tabla: Tabla 1. Los diez países del mundo con mayor producción de manzana en 2010. (FAOSTAT 2012) PAÍS PRODUCCIÓN (toneladas/año) China 33.265.186 Estados Unidos 4.212.330 Turquía 2.600.000 India 2.204.970 Polonia 2.163.400 Francia 1.858.970 Irán 1.711.230 Brasil 1.662.430 Chile 1.275.850 Federación Rusa 1.100.000 España quedaría en el lugar número diecinueve en esta lista con una producción en 2.010 de 596.000 tm/año, según datos de la FAOSTAT. Durante la década del año 2000 a 2010, de manera general la producción de manzana aumentó aunque con diversas fluctuaciones, mientras que la superficie disminuyó paulatinamente también con alguna fluctuación, de lo que se deduce que los rendimientos registrados en el año 2000 son menores que los registrados en 2010. En la figura 2 se detalla lo expuesto anteriormente: Figura 2. Gráfico de evolución de producción y superficie mundial durante la década de 2000 a 2010 (FAOSTAT 2012) Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 13 características extremas. No debe aconsejarse nunca el establecimiento de plantaciones frutales en terrenos muy arenosos o excepcionalmente calizos, ni en los compactos, de encharcamiento fácil y difícil aireación. Los mejores terrenos son aquéllos en los que la proporción de arcilla no pasa del 30% y la de limo del 20-25%. El manzano utiliza gran cantidad de agua, como todos los vegetales de frutos carnosos, y un árbol adulto necesita entre 200 y 300 litros de agua por año y kilogramo de fruta producido; consumo que viene repartido a lo largo del ciclo vegetativo (Alvarez Requejo, 1988). 1.1.5. PRINCIPALES PLAGAS Y ENFERMEDADES ENFERMEDADES: - Causadas por hongos en hojas y frutos: Oídio (Oidium farinosum), Moteado o Roña (Venturia inaequalis) y Momificado de frutos (Monilia sp.) - Causadas por hongos en la madera: Chancro común (Cylindrocarpon heteronemum y Nectria galligena), Chancro de las ramas (Shaeropsis malorum y Botrysphaeria obtusa) y Chancro rugoso (Phomopsis mali) - Causadas por hongos y oomycetos en cuello y raíz: Mal del cuello (Phytophthora cactorum), Mal blanco de raíz (Armillaria mellea y Rosellinia necatrix) y Mal del plomo (Chondrosteeum purpureum) - Causadas por bacterias: Fuego bacteriano (Erwinia amylovora) y Agrobacterium (Agrobacterium tumefaciens) PLAGAS: - Ácaros: Araña roja (Panonychus ulmi) - Orden Thysanópteros: Trips (Frankliniella occidentalis, Trips tabaci, Taeniothrips incosequens) Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 14 - Orden Dermápteros: Tijeretas (Forficula auricularia) - Orden Homópteros: Pulgón lanígero (Eriosoma lanigenum), Pulgón ceniciento (Dysaphis plantaginea), Piojo de San José (Quadraspidiotus perniciosus), Cochinillas (varias especies de la familia Diaspididae) - Orden Coleópteros: Antonomo del manzano: (Anthonomus pomorum) - Orden Himenópteros: Hoplocampa (Hoplocampa pomorum) - Orden Dípteros: Mosca de la fruta o Mosca mediterránea (Ceratitis capitana) - Orden Lepidóptero: Taladro amarillo (Zeuzera pyrina), Taladro rojo (Cossus cossus), Sesia (Synanthedon myopimorfis), Capua (Adoxophyes orana), pandemis (Pandemis heparana), Arañuelo (Hyponomeuta malinellus), Orugas minadoras de hojas (Lyonetia clerkella, Leucoptera malifoliella, Lithocolletis blancardella), Carpocapsa (Cydia pomonella) (Bovey, 1971); (Domínguez García-Tejero, 1982); (De Liñan Vicente, 1998) 1.2. CONTROL BIOLÓGICO Y CONTROL INTEGRADO Varias son las razones por las que en los últimos años ha aumentado el interés por nuevas estrategias de control de plagas y enfermedades. La mayoría asociadas a problemas causados por el uso indiscriminado de plaguicidas que provocan la aparición de resistencias de los insectos, tienen un impacto negativo sobre organismos beneficiosos y pueden conllevar riesgos para la salud y el medio ambiente. El control biológico consiste en el empleo de enemigos naturales para combatir la plaga existiendo varios tipos de control biológico: - CONTROL BIOLÓGICO CLÁSICO: Consiste en la importación de enemigos naturales exóticos desde el sitio de origen de la plaga. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 15 - CONTROL BIOLÓGICO AUMENTATIVO: Consiste en la liberación del enemigo beneficioso en cantidades elevadas (inundativo) o en cantidades bajas esperando que se multiplique en el cultivo (inoculativo). Al contrario que en el control biológico clásico, los enemigos no se establecen en el cultivo de forma permanente. - CONTROL BIOLÓGICO DE CONSERVACIÓN: En este tipo de control se evita el uso de pesticidas, se favorece la existencia de refugios y zonas de cría y alimentación, etc. Para conservar los enemigos naturales al hacer el ambiente más favorable. Además de los enemigos naturales, existen otras alternativas que ayudan a controlar biológicamente las plagas. Las trampas y la utilización de feromonas son una práctica común en numerosos cultivos; los baculovirus utilizados para infectar insectos obtienen resultados muy positivos; y en el caso del manzano la confusión sexual es una medida cada vez más extendida para solucionar los problemas de carpocapsa. A veces este control biológico viene complementado con tratamientos químicos, siempre compatibles con los depredadores o parásitos encargados de controlar la plaga. Éstos deben limitarse únicamente a los momentos en los que el insecto beneficioso no sea capaz de controlar los niveles de plaga por debajo de aquellos que se consideran perjudiciales. En este caso en el que se integran control biológico y control químico se denomina control integrado. La producción integrada frutícola ha sido definida como “la producción económica de frutos de alta calidad, dando prioridad a los métodos de producción ecológicamente seguros, minimizando los efectos secundarios indeseables y el uso de los agroquímicos, para mejorar la protección del medio ambiente y la sanidad humana”. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 16 1.3. PANONYCHUS ULMI 1.3.1. DESCRIPCIÓN DE LA PLAGA La araña roja (Panonychus ulmi) es el ácaro más importante como plaga en los frutales de hoja caduca. Es una especie polífaga que ataca principalmente a manzano, peral, ciruelo y membrillero, aunque también produce daños en melocotonero, almendro, cerezo, viñedo, etc. Para su clasificación se acepta la propuesta por van der Hammen en 1972 y Krantx en 1978, que actualmente cuenta con un mayor número de seguidores (García Marí et al., 1990). Clase: Arachnida Subclase: Ácaros Orden: Acariformes Suborden: Actinedida Familia: Tetranychidae Género: Panonychus Especie: ulmi Este ácaro pasa por las fases de huevo y cuatro instares activos, larva, protoninfa, deutoninfa y adulto. HUEVOS: P.ulmi realiza dos puestas; huevos de verano y de invierno, el huevo de verano tiene un diámetro de 0,15 mm. aproximadamente, y el de invierno tiene un diámetro ligeramente superior. Ambos huevos son morfológicamente iguales, la única diferencia reside en que el huevo de invierno es retenido por la hembra hasta un estado embrionario más avanzado, y son puestos con el recubrimiento céreo, mientras que en la puesta de verano la secreción cérea comienza después de ser depositado, por ésta razón los huevos presentan diferente adaptabilidad a las condiciones ambientales. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 17 El huevo, mostrado en la figura 8, es casi esférico, ligeramente aplanado en la parte superior y de color rojo ladrillo en invierno. En verano, el color varía con el sustrato y el estado de desarrollo puede ser marrón, rojo, naranja, etc. Posee un pelo en la parte superior del que salen unos finos hilos de seda que lo unen al sustrato (García-Marí, et al., 1990). Figura 8: Huevos de Panonychus ulmi LARVAS: Las larvas son redondeadas, con una longitud de 0,3 a 0,4 mm. Tienen tres pares de patas y son de color rojo intenso. NINFAS: Las ninfas no son tan redondeadas como las larvas, tienen una longitud de 0,4 a 0,5 mm., se aprecian pelos dorsales y poseen cuatro pares de patas. ADULTOS: La hembra, representada en la figura 9, es de forma globosa, de 0,6 a 0,9 mm. de longitud, de color rojizo más o menos intenso; los machos son más pequeños, más alargados y de coloración más pálida que la hembra. Tanto las hembras como los machos tienen cuatro pares de patas (García-Marí et al., 1990). Figura 9: Adulto de Panonychus ulmi Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 18 La araña roja se trata de una plaga inducida, beneficiada por el propio uso de productos fitosanitarios (Mc-Murtry et al., 1970). Sus poblaciones se ven favorecidas por un clima cálido y seco, un exceso de abono nitrogenado y poda; y son más abundantes en fincas comerciales donde el uso de fitosanitarios está más extendido (Vilajeliu, 1996). 1.3.2. CICLO BIOLÓGICO P.ulmi inverna en forma de huevo en la corteza de la base de las yemas. La puesta de estos huevos de invierno se realiza de agosto a octubre, preferentemente en madera de 2-3 años junto a las axilas y yemas y del lado sur de los árboles (Sobreiro, 1981). La iniciación de esta puesta invernal está sujeta a varios factores: la mala calidad del alimento, la disminución de la temperatura promedio estival o la disminución del fotoperíodo. Uno de estos factores, o la combinación de ellos, induce a la hembra a depositar los huevos. Estos huevos necesitan pasar por un período frío para romper la diapausa, tras la cual comienza la incubación y la eclosión (Costa-Comelles et al., 1992). El momento de la eclosión del huevo varía de un año a otro, y también difiere entre parcelas del mismo año; transcurriendo en su mayoría en unos 20 días principalmente durante el mes de abril (García Marí et al., 1990). De la eclosión de los huevos se originan las larvas, que se dirigen hacia las hojas de las que se alimentan. El tiempo de transformación de larva a adulto depende estrictamente de las condiciones ambientales siendo de 18-20 días durante la primavera, 7-8 días durante el verano y 20-25 días durante el otoño (Sobreiro, 1981). A continuación se suceden las generaciones en número variable durante el período vegetativo. Cada generación dura alrededor de un mes, por lo que P.ulmi puede tener de 5 a 8 generaciones anuales (García Marí et al., 1990). Las hembras son Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 19 fecundadas una vez finalizada su transformación en adulto iniciando las puestas en las hojas, principalmente en el envés y en general, a lo largo de las nervaduras (Soenen et al., 1977). Una hembra pone como media 50 huevos en su vida (García Marí et al., 1990). En esta especie de ácaro, la duración del período de desarrollo del huevo y la de los estados inmaduros postembrionarios es similar, y ambos períodos sumados son aproximadamente iguales a la longevidad de las hembras adultas, es decir, huevos, inmaduros (protoninfa y deutoninfa) y hembra adulta ocupan ¼, ¼ y ½ aproximadamente de la vida del ácaro. La duración de ésta depende estrechamente de la temperatura, de forma que a 13ºC (temperatura media de inicio de la primavera) es de 70 días, mientras que a 24ºC (temperatura media de verano) es solo de 20 días (van de Vrie et al., 1972). El intervalo de tiempo durante el cual podemos encontrar individuos de una generación dada depende también de la amplitud del periodo en que los ácaros de la población inician el desarrollo. La 1ª generación inicia el desarrollo durante 20 días, pero la mayoría de huevos de la 2ª generación son puestos durante un período mayor, de unos 40 días. Dado que la hembra pone huevos a lo largo de toda su vida, cabe esperar un progresivo alargamiento de la duración de cada generación por este efecto (García Marí et al., 1990). Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 20 Figura 10: Ciclo evolutivo y generaciones de Panonychus ulmi en manzano (Roberto H. González R., 1971) 1.3.3. DAÑOS PROVOCADOS POR P.ULMI El síntoma típico del ataque de tetraníquidos, mostrado en la Figura 11, es la presencia de pequeñas manchas incoloras, como puntos, que corresponden a las células epidérmicas absorbidas por el ácaro. También, en muchos casos tienen lugar cambios en la coloración de las hojas, que pasan del verde al amarillo, o bien pierden su brillo característico para tomar un aspecto mate. (García-Marí et al., 1990) Figura 11: Foto de daños en la hoja de manzano producidos por Panonychus ulmi (tomada en la finca del ensayo) Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 21 La magnitud del daño producido depende del tamaño de los estiletes, del tiempo dedicado a la alimentación y de la densidad poblacional. Depende también de las propias características de la planta, y puede verse potenciado por condiciones climáticas adversas o por un deficiente estado vegetativo (García-Marí et al., 1990). La alimentación de los tetraníquidos causa profundas modificaciones en la estructura y fisiología foliar. Los cloroplastos de las células atacadas desaparecen y el resto del material celular no ingerido se coagula. Generalmente sólo la célula atacada sufre daños, no haciéndose patente éste en las células adyacentes. Se producen cambios sustanciales en la fotosíntesis y en la tasa de transpiración, la eficacia de la actividad fotosintética disminuye, debido a las perdida de clorofila y puede inhibirse completamente en algunos casos, y la transpiración se acelera, como consecuencia de lo cual las hojas se secan y pueden llegar a caer (García-Marí et al., 1990). La determinación del nivel económico de daños (NED) de P.ulmi es uno de los trabajos más complejos y difíciles, ya que el crecimiento que realizan los ácaros sobre las hojas afecta de forma indirecta a la cosecha y al crecimiento del árbol. Los diversos estudios realizados han obtenido resultados dispares, debido a que la misma población del ácaro puede realizar más o menos daño según la época del año, la variedad, el vigor y cantidad de cosecha del árbol, condiciones climáticas y edáficas, antecedentes de la parcela, etc. Existen diversos estudios acerca de los daños producidos por Panonychus ulmi en manzano. Aunque estos estudios no siempre obtienen los mismos resultados, siendo incluso contradictorios. Vilajeliu et al. (1996) realizó un estudio de los daños producidos por la araña roja sobre manzanos Golden Smoothe determinando que esta plaga tuvo efecto significativo en el grado de decoloración y en el nivel de clorofila de las hojas, pero no se encontraron efectos negativos sobre la producción, calidad del fruto, índices de penetrometría y azúcares en cosecha, y número total de frutos cuajados en el siguiente año vegetativo. La cantidad de ácaros causó decoloración en las hojas pero no efectos negativos sobre los parámetros de la producción. Otros Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 22 factores como la naturaleza del suelo, agua, nutrientes disponibles, sensibilidad de la variedad y vigor de los árboles deben tener, necesariamente, mayor influencia en el fruto y en las características de los árboles que la actividad de la araña roja hasta los niveles de estudio. La falta de efecto de la plaga sobre el parámetro de producción también fue determinado por Hull y Beers (1990) y Pasqualini et al. (1982). Sin embargo, otros estudios (Hardman et al., 1985), encontraron reducciones significativas ente la producción y valores de 1700 ADAs (ácaros-día acumulados). Por otro lado, Sacco y Stoppa (1989) y Hull y Beers (1990) observaron una reducción del tamaño de los frutos cuando los ataques de araña roja se producían precozmente en verano (hasta finales de julio). Por el contrario, Vilajeliu et al. (1996) en su ensayo en Golden Smoothee difieren con estos autores ya que la mayor actividad de la plaga tuvo lugar en junio y julio y en cambio no se observaron efectos significativos sobre el calibre del fruto. Para Costa-Comelles et al. (1988), en casos extremos, la capacidad de asimilación de las hojas se reduce, lo que se traduce durante el año del ataque en una defoliación precoz de los árboles. Beers&Hull (1990) y Pasqualini et al. (1990) determinaron una reducción de los crecimientos del año y del diámetro del tronco y por último, Sobreiro (1981) concluyó que al año siguiente pueden producirse pérdidas en la floración. 1.3.4. CONTROL DE LA PLAGA Es una plaga muy influenciada en sus ataques por diversos factores que le favorecen extraordinariamente, como el clima cálido o seco, el abonado adecuado, sobre todo nitrogenado, y la poda de las ramas, así como los tratamientos que se realizan contra otras plagas y eliminan sus enemigos naturales. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 29 potentillae, Amblyseius britannicus y Amblyseius reflexus y Tyohlodromus andersoni. Para su descripción morfológica se debe considerar que tiene diferentes estadíos: huevo, larva, protoninfa, deuteroninfa y adulto. HUEVOS: Los huevos son pequeños, esféricos y achatados por los poros, de color blanco translúcido y de una longitud aproximada de 0,2 mm. LARVAS, PROTONINFAS Y DEUTERONINFAS: Todos los estadios juveniles son parecidos morfológicamente a los adultos, pero las larvas tienen 6 patas y las protoninfas y deuteroninfas 8 patas. ADULTOS: Como se observa en Figura 12, los adultos tienen forma de gota, levemente dorsoventral aplanado. El protector dorsal tiene una longitud de 0,33 mm. Los ácaros son de color marrón pálido, pero este varía dependiendo de la fuente de alimento. La identificación exacta no se puede hacer en el campo, hay que hacerla sobre la longitud y la distribución de pelos en el protector dorsal, entre otras características, y requiere el examen de especímenes preparados bajo alta ampliación. Figura 12: Adulto de Amblyseius andersoni Amblyseius andersoni tolera las temperaturas altas, incluso por encima de 40ºC y es activo con temperaturas desde los 6ºC (García Jiménez, 2003). Por otro lado, es Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 30 más exigente en cuanto a humedades relativas, ya que las humedades bajas limitan su establecimiento. Sobrevive bien sin alimento y sin agua, puede incluso aguantar más de 10 días, posiblemente tomando el líquido de la planta huésped (Kolodochka y Lysaya, 1976). 1.4.2. CICLO BIOLÓGICO El ciclo de vida de Amblyseius andersoni comienza con el estadío de huevecillo (inactivo), seguido por los estadios de larva (L), protoninfa (Pn), deuteroninfa (Dn) y adulto (A). Entre cada dos estadíos activos, hay un estadío de reposo (quiescencia (Q)) de poca duración. En término general, el estadio de huevecillo dura dos días y la larva un día en lugares cálidos. Cada estadio ninfal dura 1,5 días a la temperatura de laboratorio (22-24ºC). A.andersoni inverna en las ramas de los árboles y en las hierbas de la cubierta vegetal (Costa-Comelles et al, 1986). La diapausa en cultivos en campo se induce a finales de agosto y principios de septiembre, cuando la longitud del día es de 13 horas, y la temperatura de la noche raramente inferior a 14ºC; esta puede inducirse en ácaros adultos así como en etapas juveniles. Los ácaros comenzarán a emerger de la diapausa y a poner los huevos, de enero en adelante. Este fitoseido se mantiene en los árboles durante todo el período vegetativo, sin descender a la cubierta vegetal. Las hembras no apareadas no se reproducen (Kolodochka y Lysaya, 1976) Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 31 A continuación se presenta la vida y reproducción de Amblyseius andersoni, según Amano y Chant (1977): Tabla 4: Datos de vida y reproducción de Amblyesius andersoni según Amano H. y Chant, D (1977) Amblyseius andersoni Duración de desarrollo de las hembras 7,43 días Duración de desarrollo de los machos 7,13 días Pre-oviposición 2,14 días Oviposición 35,33 días Post-oviposición 62,0 días Producción total de huevos 46,33 Ratio de depredación de las hembras apareadas * 7,17 Ratio de depredación de las hembras no apareadas * 2 *Hembras adultas de Tetranychus pacificus 1.4.3. MODO DE ACCIÓNCONTROL Los fitoseidos se dispersan generalmente por corrientes de aire, caminando de planta a planta, o con el material vegetal que se está transportando comercialmente de un sitio a otro. En su fase adulta y en etapas juveniles móviles del ácaro son depredadores de pequeños artrópodos presa. Su presa preferida incluye arañas rojas tales como Tetranychus spp. y Panonychus spp. Los fitoseidos localizan las colonias de ácaros plaga a través de las señales volátiles producidas por las plantas que son atacadas por la plaga (Llusia y Peñuelas, 2001), entonces se alimentan de los huevos y todas las etapas móviles del ácaro plaga, reduciendo el crecimiento de colonias y previniendo el establecimiento de otras nuevas. Los fitoseidos depredadores tienen una serie de características que hace que sean eficientes en su labor: Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 32 - Presentan una duración corta de desarrollo de huevos y estadios inmaduros en comparación con los Tetraníquidos, lo que les confiere un desarrollo completo más rápido que su presa, resultando en una ventaja numérica frente a ellos. - Son capaces de alimentarse de varios ácaros o de polen, lo cual es esencial para su supervivencia en épocas con escasez de presa. - Tienen la mínima capacidad de consumo de presa en comparación con los insectos depredadores de Tetraníquidos, lo que les supone una desventaja en cuanto a control de elevadas poblaciones de presa, pero les permite sobrevivir cuando hay bajas poblaciones. 1.4.4. SITUACIÓN GEOGRÁFICA DEL DEPREDADOR Amblyseius andersoni es una especie común en Europa y ampliamente distribuida por todo el mundo. La siguiente lista de localizaciones está tomada de Moraes et al (2004): Argelia, Azerbayán, Canadá, Dinamarca, Inglaterra, Francia, Georgia, Alemania, Grecia, Hungría, Italia, Japón, Moldavia, Marruecos, Países Bajos, Polonia, Portugal, España, Suecia, Suiza, Turquía, Ucrania y Estados Unidos. En España, Amblyseius andersoni se presenta de forma natural y se distribuye en áreas del tercio norte de la Península, siendo escaso o inexistente en el resto del país (García-Marí et al., 1994). Las primeras determinaciones sistemáticas de la presencia de ácaros depredadores de P. ulmi tuvieron lugar en Cataluña, en la Comunidad Valenciana y, de una forma menos sistemática, en el resto de España, desde 1984. Amblyseius andersoni ha sido hallado en manzanos de La Rioja (Pérez-Moreno, 1998) y es la especie mayoritaria en las plantaciones de Lérida (Costa-Comelles et al., Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 33 1986, Vilajeliu et al., 1994). En Girona está sustituyendo paulatinamente a Neoseiulus californicus (Vilajeliu et al., 1994). También en Asturias fue el fitoseido más abundante en los muestreos del ensayo de Miñarro et al. (2002). Y en el Bierzo (León), dentro de la familia de los fitoseidos, destacó marcadamente frente al resto de especies, siendo la especie dominante y más frecuente en casi todas las parcelas estudiadas (De la Iglesia et al., 2007). En Aragón, en 2011, varios ejemplares de fitoseidos encontrados en parcelas de frutales fueron identificados en su mayoría como Amblyseius andersoni, considerando a esta especie como la más común en la Comunidad Autónoma (Núñez y Lozano, 2011, comunicación personal) 1.4.5. HÁBITATS Son diversos los hábitats de agricultura y horticultura donde pueden encontrarse Amblyseius andersoni: Rosa, Buxus, Tilia, Acer, Fraxinus, Prunus, Malus, uvas de viña, melocotón, manzana, pera, coníferas, Skimmia japonica, frambuesa (Rubus idaeus), Potentilla repens, Rumex sp. Trifolium pratense, Convulvulus arvensis, Bromus madritensis, Rubus sp., Abies spp. Pseudotsuga, Pinus (Oregon), Picea abies, Abies nordmania (UK, Fitzgerald y Solomon, 2000), Grosella negra (Riber niger), puerro, Corylus avellana (independiente de la altitud) (Tsolakis, Ragusa, Chiara 2000) 1.5. ANTECEDENTES 1.5.1. EN EL MUNDO La acción reguladora de la araña roja en frutales por parte de los ácaros útiles de la familia Phytoseiidae es bien conocida y empleada en varios países del mundo: Estados Unidos, Italia, Suiza, Alemania, Reino Unido… Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 34 La capacidad de control biológico de los Phytoseiidae sobre las poblaciones de las arañas rojas ha sido documentada por varios autores: Sabelis y Helle, 1985; Badii y McMurtry, 1984b; Landeros et al., 2001, etc. Existen dos formas de control, bien por medio de la población natural de campo de los fitoseidos; o bien mediante la liberación de los mismos. En Estados Unidos se están desarrollando programas de control integrado contra Panonychus ulmi desde hace más de 40 años. También en Europa es un método de control bastante extendido desde hace varios años. Canadá, Estados Unidos (Indiana), Chile, Inglaterra, Italia, suiza, Francia y Portugal son algunos de los países donde se han realizado este tipo de programas de control. 1.5.2. EN ESPAÑA En España, principalmente se han realizado ensayos de control integrado en manzano en Cataluña, aunque también se tiene constancia de estudios en La Rioja y en Navarra: - La Rioja: Pérez- Moreno at al., 1998 - Navarra: Iraola et al., 1994 - Cataluña: Vilajeliu, 1992; Vilajeliu, 1994; Vilajeliu, 2009; Costa-Comelles, 1990; Costa-Comelles, 1992. Concretamente, en Lérida, se vienen desarrollando a nivel experimental programas de control integrado desde 1984, y en ellos se han demostrado las posibilidades del control biológico del ácaro rojo mediante la utilización de fitoseidos, siendo Amblyseius andersoni y Amblyseius californicus las especies más importantes. Uno de los ensayos más recientes y que fue planteando de manera similar a como se ha realizado este ensayo en Zaragoza, fue el realizado en la Estación Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 35 Experimental Agrícola Mas Badía, situada en la Tallada (comarca de Baix Empordá), en Gerona; donde se obtuvieron resultados positivos en el control de Panonychus ulmi mediante suelta de Amblyseius andersoni en manzano. 1.5.3. EN ARAGÓN La única experiencia existente en Aragón relacionada con el control biológico de araña roja en manzano fue la llevada a cabo, dentro de este proyecto final de carrera, en el Centro de Investigación y Tecnología Agroalimentaria de Aragón (CITA) por Carlos Lozano y Eva Nuñez en 2011, en la que se hizo una prueba de campo realizando sueltas de Amblyseius andersoni a una dosis de 75.000 individuos/ha, en dos formatos distintos, en manzanos Golden Smoothee, tratando un total de 2 hectáreas, con el fin de obtener información sobre esta estrategia de control. La suelta se llevó a cabo el 30 de junio y se realizaron conteos semanales en campo, así como controles con embudos Berlese cada 15 días. No se hicieron repeticiones por lo que simplemente se pretendió observar el efecto que estas sueltas de depredadores pudieran tener sobre las poblaciones de araña, así como observar la instalación de los fitoseidos en las condiciones climáticas de la zona. Se observó, de manera muy general, que los fitoseidos se instalaban satisfactoriamente sin dependendia del formato de suelta, y que el pico de araña coincidía con el pico de fitoseidos a partir del cual ambas poblaciones descendían. Se concluyó que los fitoseidos se instalaron correctamente y que se produjo un control de la araña sin necesidad de tratamientos químicos; aunque sin diferencias entre las zonas con suelta y el testigo. Estos resultados tan generales pero positivos fueron los que incentivaron la realización de este ensayo llevado a cabo en 2012. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 36 2. OBJETIVOS El objetivo principal de este estudio es comprobar el establecimiento de Amblyseius andersoni y determinar la eficacia y capacidad de control de este depredador en las condiciones medioambientales del ensayo, para reducir las poblaciones de Panonychus ulmi en plantaciones de manzano, y así, plantearlo como una alternativa a los tratamientos químicos. Además se pretende: - Observar las fluctuaciones presa-depredador a lo largo del tiempo. - Determinar posibles variaciones en el control de la araña dependiendo del formato de presentación del depredador. - Determinar los factores que pueden influir en el resultado del control de araña mediante el depredador Amblyseius andersoni. - Conocer las condiciones de instalación y desarrollo de los fitoseidos, estudiando la posible influencia de temperatura y humedad en sus poblaciones. - Realizar una comparativa económica del tratamiento químico y del tratamiento biológico para el control de Panonychus ulmi. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 37 3. MATERIAL Y MÉTODOS 3.1. SITUACIÓN GEOGRÁFICA DEL ENSAYO Este proyecto, realizado en el año 2012, se ha desarrollado en Calatayud, municipio de Aragón que da nombre a la comarca a la que pertenece, Comarca de Comunidad de Calatayud, en la provincia de Zaragoza. Esta comarca se encuentra ubicada en la zona centro occidental de Aragón, limitando al norte con la Comarca del Aranda y de Valdejalón; al este con la Comarca del Campo de Cariñena y al sur con la Comarca del Campo de Daroca. Figura 13. Mapa de las comarcas de Aragón y mapa de la Comunidad de Calatayud Calatayud está situada a orillas del río Jalón, y debido a su localización en el Valle del Jalón, las faldas del Sistema Ibérico y su proximidad a la depresión del Valle del Ebro, su clima es mediterráneo continentalizado, por lo que sus temperaturas son muy bajas en invierno y muy altas en verano. Este clima se caracteriza también por la escasez e irregularidad de las lluvias, con precipitaciones medias de 400 mm anuales y fuertes tormentas en primavera y otoño. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 38 A continuación se pueden observar en las Figuras 14 y 15, las gráficas de los datos diarios de temperaturas y humedades relativas durante los meses de julio, agosto y septiembre de 2012, meses durante los cuales se realizó este ensayo. Estos datos perteneces a la estación meteorológica que tiene la Oficina del Regante de SIRASA en el término municipal de Calatayud. Figura 14: Temperaturas diarias medias, máximas y mínimas recogidas por la Estación Meteorológica de Calatayud durante el ensayo de 2012 Figura 15: Humedades relativas diarias medias, máximas y mínimas recogidas por la Estación Meteorológica de Calatayud durante el ensayo de 2012 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 Temperatura (ºC) TEMPERATURA MEDIA TEMPERATURA MÁXIMA TEMPERATURA MÍNIMA 0 20 40 60 80 100 % Humedad relativa HR MEDIA HR MÁXIMA HR MÍNIMA Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 45 Figura 18: Plano de la colocación de los bloques al azar en los que se divide la parcela de estudio 3.5. ANÁLISIS DE DATOS Para realizar los distintos análisis estadísticos de los datos obtenidos se han utilizado los siguientes programas: - PAQUETE OFFICE 2010: Se ha utilizado el programa de texto denominado Microsoft Word 2010 para redactar el proyecto y el programa de hojas de cálculo Microsoft Excel 2010 para la realización de tablas y gráficos. - SPSS 19.0: Programa informático de tratamiento estadístico para Windows mediante el cual se han realizado los análisis estadísticos de los conteos tanto de campo como de laboratorio. Para ello, se ha utilizado el Test de Kolmogorov-Smirnov (K-S de una muestra) para comprobar la normalidad de una distribución y el Parámetro de Levene para la homogeneidad de las varianzas. Tras realizar el Análisis de varianza (ANOVA) y en caso de mostrar diferencias significativas se han realizado análisis de comparaciones múltiples mediante las pruebas para varianzas homogéneas: Test de Tukey o Test de Duncan, y para varianzas heterogéneas: T3 de Dunnet. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 46 3.6. PROCEDIMIENTO 3.6.1. COLOCACIÓN DE SOBRES Con presencia de las primeras arañas encontradas en la parcela se procedió a la colocación de los sobres de Amblyseius andersoni el día 3 de julio de 2012. Los sobres se colgaron en los árboles a una altura media en un lugar protegido evitando que quedasen expuestos a la luz solar directa y grapándolos por la parte inferior, dejando los agujeros (parte blanca del sobre) hacia abajo. En las parcelas de la Tesis 1 cuya dosis es 75.000 individuos/ha (300 sobres/ha) se colocaron 195 sobres en los 6.500 m2 de las tres repeticiones, a razón de 1 sobre por cada 8 árboles. Se dispusieron 5 ó 6 sobres alternativamente por cada fila, quedando finalmente 5 filas con 6 sobres y 7 filas con 5 sobres cada una. En las parcelas de la Tesis 2 cuya dosis es 50.000 individuos/ha (200 sobres/ha) se colocaron 130 sobres en los 6.500 m2 de las tres repeticiones, a razón de 1 sobre cada 12 árboles. Se dispusieron 3 ó 4 sobres alternativamente por cada fila, quedando finalmente 7 filas con 4 sobres y 5 filas con 3 sobres cada una. Figura 24: Fotos de los sobres colocados de Amblyseius andersoni realizadas el día de la suelta Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 47 3.6.2. COLOCACIÓN DE MATERIAL SUELTO El mismo día de la colocación de los sobres, el 3 de julio de 2012, en las parcelas de la Tesis 3 cuya dosis es 50.000 individuos/ha., el material suelto se repartió en cajas de suelta. Se necesitaron 2 botes de 25.000 individuos/bote, de los que se utilizaron un bote completo y 300 ml del segundo bote, colocando así 32.500 individuos. Para su colocación se repartió el material en 130 cajas de suelta que se colocaron con la misma distribución que en el caso de la Tesis 2. Figura 25: Fotos de las cajas con material suelto de Amblyseius andersoni realizadas el día de la suelta 3.6.3. MUESTREO DE HOJAS EN CAMPO Los muestreos de las hojas en campo se realizaron semanalmente. El primer muestreo fue previo a la difusión, se realizó por la mañana el mismo día de la suelta, el día 3 de julio, en él se cogieron 75 hojas por bloque (A, B y C). Posteriormente el primer muestreo tras la suelta se realizó el día 10 de julio, y a partir de ese momento semanalmente se repitió el mismo proceso. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 48 Para la realización de los muestreos se cogieron 25 hojas por repetición de cada una de las tesis. Siempre se muestreaban las mismas tres filas, correspondientes a la parte central del bloque, consideradas representativas. Se alternaba cada semana recogiendo una semana de la fila central y la de la izquierda y a la semana siguiente de la central y la de la derecha, así sucesivamente. Figura 26: Imagen del SIGPAC de la parcela de ensayo con las filas de las cuales se recogían las muestras marcadas en verde Las hojas se recogieron de los 15 árboles centrales de cada repetición, con lo que se pretendió dejar la máxima separación posible entre tesis. En el momento de recogida de muestras se evitó coger hojas de la variedad Challenger, utilizada como polinizador, para evitar variaciones provocadas por el distinto tipo de hojas. Una vez recogidas las hojas se procesaban con lupa en la propia finca. Se contaron las hojas con presencia de fitoseidos, así como las hojas con presencia de adultos de araña, considerando en este caso varios rangos: hojas sin presencia de adultos de P.ulmi, hojas con 1 a 4 adultos de P.ulmi, hojas con 5 a 8 adultos de P.ulmi y hojas con más de 8 adultos de P.ulmi. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 49 3.6.4. MUESTREO CON EMBUDOS BERLESE Los muestreos de los embudos Berlese comenzaron el día 24 de julio y se realizaron de manera periódica cada 15 días, a excepción del último muestreo que se realizó a las 3 semanas del anterior. Para la recogida de muestras se procedió de la misma forma que en el caso del muestreo en campo, aunque en este caso se recogieron 50 hojas por repetición. Las hojas fueron introducidas en bolsas y transportadas al laboratorio en una nevera portátil. Figura 27: Fotos de la recogida de muestras y su introducción en bolsas para ser procesadas mediante los embudos Berlesse Una vez en el laboratorio las muestras fueron colocadas en los embudos Berlese, tal y como se observa en la figura 28, donde permanecían durante varios días, hasta que las hojas quedaban completamente secas. Al final del embudo se colocaron botes con una mezcla de alcohol al 70% y glicerina al 5%, esta última añadida para conseguir una mayor conservación de las arañas y los fitoseidos. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 50 Figura 28: Fotos de los embudos Berlese utilizados en el ensayo Una vez las hojas quedaban completamente secas, los botes con las arañas en alcohol y glicerina eran extraídos y procesados con la lupa binocular. Se contaron las formas móviles de P.ulmi así como las formas móviles de fitoseidos que han sido enviados al Departamento de Protección Vegetal Sostenible de la Estación Agrícola Más Badía, donde se procederá a la identificación de las especies. Debido a esto los resultados obtenidos hacen referencia a fitoseidos, sin especificar si se trata de Amblyseius andersoni, ya que los resultados de identificación de especies no serán conocidos antes de la finalización de este proyecto. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 51 4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN Resultados de las muestras procesadas mediante embudos Berlese Los resultados de la extracción de ácaros de las muestras por medio de embudos Berlese están reflejados en la Tabla 5: Tabla 5: Número medio de formas móviles de Panonychus ulmi encontradas en las muestras procesadas mediante embudos Berlese y análisis estadístico para las distintas fechas de toma de muestras (1 muestra =50 hojas) TESIS NÚMERO FORMAS MÓVILES DE PANONYCHUS ULMI (N=3) 03/07/12 24/07/12 07/08/12 21/08/12 04/09/12 26/09/12 T1 686,67 ± 301,28 2331,67 a ± 458,49 193,33 a ± 40,25 117,33 a ± 33,29 50 a ± 15,87 7,33 a ± 4,5 T2 686,67 ± 301,28 1316,33 ab ± 236,88 238,33 a ± 121 196 a ± 145,92 59,33 a ± 21,5 3,33 a ± 0,57 T3 686,67 ± 301,28 694,33 b ± 361,58 291,67 a ± 134,95 152,67 a ± 41,04 59,67 a ± 20,98 54,67 b ± 6,43 T4 686,67 ± 301,28 850,67 b ± 604,70 180 a ± 107,63 128 a ± 52,72 88,67 a ± 23,03 45 b ± 13 p-valor 0,007* 0,597* 0,665* 0,192* 0,000* (T1: Sobres Gemini 75.000 ind/ha, T2: Sobres Gemini 50.000 ind/ha, T3:Material suelto 50.000 ind/ha, T4: Testigo) MUESTREO PREVIO (03/07/2012): se tomaron muestras de cada uno de los bloques independientemente de las tesis, ya que al no haber hecho todavía la suelta se consideró que no debía haber diferencia entre ellas. Por ese motivo se consideran los mismos resultados para todas las tesis. *valores con la misma letra en la misma columna indica que no son significativamente diferentes. El ANEXO 2 contiene una tabla más extensa de los resultados expuestos anteriormente, en la que se incluyen los valores de formas móviles de P.ulmi para cada una de las repeticiones de las distintas tesis. La evolución del número de ejemplares extraídos es similar en todas las tesis estudiadas. Se obtuvo un máximo de ejemplares el 24 de julio (primer muestreo tras la suelta) y su máximo disminuyó bruscamente (entre un 59 % y un 91 %) en el siguiente muestreo (8 de agosto). A partir de esa fecha los valores fueron disminuyendo progresivamente. El día en que se realizó la suelta de fitoseidos, el 3 de julio de 2012, la población de P.ulmi era muy elevada, con valores medios de 686,67 formas móviles de Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 52 araña en 50 hojas muestreadas. Este resultado es muy superior al valor de formas móviles de P.ulmi obtenido el día de la suelta de A.andersoni en la prueba de campo realizada en 2011, que tuvo lugar el día 30 de junio y cuya presencia de araña roja fue de aproximadamente 50 formas móviles en 50 hojas muestreadas (Núñez y Lozano, 2011). Este dato podría indicar que en el ensayo de 2012 se han realizado las difusiones de A.andersoni demasiado tarde, con poblaciones de araña roja muy elevadas, dificultando así el posible control de la plaga por parte de los fitoseidos; coincidiendo en este punto con lo expuesto por Vilajeliu et al. (1992), donde concluyen que las sueltas de depredadores deben realizarse anteriormente o al menos en el mismo momento de inicio de actividad importante de la plaga. La mayor actividad de araña roja observada comenzó en junio y finalizó en agosto; de acuerdo con las fechas propuestas por Vilajeliu et al. (1996) como más propensas a elevadas poblaciones de P.ulmi. El análisis de varianza indica que sólo hubo diferencias significativas entre las tesis en el primer y último muestreo. Los resultados del test de Tukey para las muestras del 24 de julio indican que el número de P.ulmi fue significativamente mayor en las tesis 1 y 2; sin embargo, estas diferencias pueden ser debidas al proceso de extracción. Después de procesar dichas muestras fue necesario cambiar el montaje de los embudos. Los recipientes donde se colocaban las muestras pasaron de ser transparentes a negros. En previsión de que esto provocara un calor excesivo, la fuente de luz se situó a mayor distancia pero aún así las muestras se secaron con mayor rapidez y no se puede descartar que el exceso de calor afectara a la eficiencia de extracción. En la última fecha de muestreo el nº de P.ulmi fue muy bajo en todas las tesis aunque, significativamente mayor en la T3 (material suelto) y T4 (control). Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 53 Tabla 6: Número medio de formas móviles de fitoseidos encontrados en las muestras procesadas mediante embudos Berlese para las distintas fechas de toma de muestras (1 muestra = 50 hojas) TESIS NÚMERO DE FITOSEIDOS (N=3) 03/07/12 24/07/12 07/08/12 21/08/12 04/09/12 26/09/12 T1 27 ± 26,21 2,67 a ± 3,06 1,33 a ± 0,58 0,33 a ± 0,58 0,33 ± 0,58 0 ± 0 T2 27 ± 26,21 4,67 a ± 3,51 0,33 a ± 0,58 2 a ± 2 0 ± 0 0 ± 0 T3 27 ± 26,21 4,33 a ± 2,52 0,67 a ± 1,55 1,33 a ± 1,53 0 ± 0 1 ± 1 T4 27 ± 26,21 6,33 a ± 5,50 1 a ± 1,73 0,33 a ± 0,58 0,33 ± 0,58 0,33 ± 0,58 p-valor 0,715* 0,728* 0,389* (T1: Sobres Gemini 75.000 ind/ha, T2: Sobres Gemini 50.000 ind/ha, T3:Material suelto 50.000 ind/ha, T4: Testigo) MUESTREO PREVIO (03/07/12): se tomaron muestras de cada uno de los bloques independientemente de las tesis, ya que al no haber hecho todavía la suelta se consideró que no debía haber diferencia entre ellas. Por ese motivo se consideran los mismos resultados para todas las tesis. *valores con la misma letra en la misma columna indica que no son significativamente diferentes. El ANEXO 2 contiene una tabla más extensa de los resultados expuestos anteriormente, en la que se incluyen los valores de formas móviles de fitoseidos para cada una de las repeticiones de las distintas tesis. La población media de fitoseidos durante el muestreo realizado el día de la suelta de A.andersoni (Tabla 6), día 3 de julio de 2012, es de 27 individuos en 50 hojas procesadas; siendo incluso algo superior que la población obtenida el día de la suelta en la prueba de campo realizada en 2011 (Núñez y Lozano, 2011). Sin embargo, a partir del siguiente muestreo los valores de fitoseidos descendieron drásticamente para todas las tesis hasta el final del ensayo. Resultando inesperadamente el pico de población de fitoseidos en el muestreo previo a la suelta. Estadísticamente se siguió el mismo proceso que en el caso de las poblaciones medias de P.ulmi, aunque para algunas fechas no se realizó ninguna comprobación estadística debido al elevado porcentaje de valores nulos en los resultados. El análisis de varianza indica que no hubo diferencias significativas entre las tesis para las fechas analizadas. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 54 De acuerdo con Vilajeliu (1992) e Ioratti et al. (1983); el hecho de que no existan diferencias en las dinámicas poblacionales de las tesis y el control se puede deberse a la elevada capacidad natural de aparición e incremento poblacional de los fitoseidos durante el período de máxima actividad de la araña roja, hasta el punto de minimizar o incluso igualar las diferencias ocasionadas por la aportación de fitoseidos. Esto justificaría los resultados de este análisis estadístico de no ser por las escasas poblaciones de depredadores obtenidas. En la figura 29, se representan gráficamente la evolución del número de ejemplares extraídos de araña roja y fitoseidos obtenidos, con el fin de observar la dinámica de ambas poblaciones en el tiempo y para las distintas tesis así como la posible relación entre ellas: (T1: Sobres Gemini 75.000 ind/ha, T2: Sobres Gemini 50.000 ind/ha, T3:Material suelto 50.000 ind/ha, T4: Testigo) Figura 29: Número medio (N=3) de formas móviles de P.ulmi y número medio (N=3) de formas móviles de fitoseidos durante las semanas del ensayo para las distintas tesis planteadas en las muestras procesadas con embudos Berlese Como ya se ha comentado anteriormente la evolución de la población de P.ulmi es similar para las cuatro tesis, y tras alcanzar su pico el 24 de julio desciende sin apenas fluctuaciones. En general, los picos de población de P.ulmi son muy variables, teniendo lugar normalmente entre finales de junio y julio, aunque depende siempre de las condiciones ambientales de la zona y de cada año concreto, como en este caso, que se retrasa a finales de julio. 0 5 10 15 20 25 30 0 500 1000 1500 2000 2500 3 julio 24 julio 7 agosto 21 agosto 4 septiembre 26 septiembre Nº de Fitoseidos/50 hoajs Nº de P.ulmi/50 hojas P.ulmi T1 P.ulmi T2 P.ulmi T3 P.ulmi T4 Fitoseidos T1 Fitoseidos T2 Fitoseidos T3 Fitoseidos T4 Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 61 (T1: Sobres Gemini 75.000 ind/ha, T2: Sobres Gemini 50.000 ind/ha, T3:Material suelto 50.000 ind/ha, T4: Testigo) Figura 32: Porcentaje medio (N=3) de hojas con 5-8 adultos de P.ulmi y porcentaje medio (N=3) de hojas con fitoseidos durante las semana de ensayo en las muestras procesadas en campo. En la Figura 32, de la misma forma que en los casos anteriores a partir del 31 de julio se produce un acusado descenso de araña roja, siguiendo la misma dinámica las cuatro tesis planteadas, siendo en este caso los porcentajes de hojas con 5-8 adultos de P.ulmi nulos a partir de dicha fecha. La dinámica de población de P.ulmi no tiene relación con la población de fitoseidos. (T1: Sobres Gemini 75.000 ind/ha, T2: Sobres Gemini 50.000 ind/ha, T3:Material suelto 50.000 ind/ha, T4: Testigo) Figura 33: Porcentaje medio (N=3) de hojas con más de 8 adultos de P.ulmi y porcentaje medio (N=3) de hojas con fitoseidos durante las semana de ensayo en las muestras procesadas en campo. 0 2 4 6 8 10 0 5 10 15 20 25 30 3 julio 10 julio 17 julio 24 julio 31 julio 7 agosto 14 agosto 28 agosto 11 agosto % de hojas con fitoseidos % de hojas con 5-8 adultos de P.ulmi P.ulmi T1 P.ulmi T2 P.ulmi T3 P.ulmi T4 Fitoseidos T1 Fitoseidos T2 Fitoseidos T3 Fitoseidos T4 0 2 4 6 8 10 0 20 40 60 80 100 120 3 julio 10 julio 17 julio 24 julio 31 julio 7 agosto 14 agosto 28 agosto 11 agosto % de hojas con fitoseidos % de hojas con >8 adultos de P.ulmi P.ulmi T1 P.ulmi T2 P.ulmi T3 P.ulmi T4 Fitoseidos T1 Fitoseidos T2 Fitoseidos T3 Fitoseidos T4 Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 62 Los porcentajes de hojas con presencia de más de 8 arañas (Figura 33) no presentan diferencias entre las tesis alcanzando valores muy altos el 17 de julio, y descendiendo durante las siguientes semanas hasta alcanzar valores de porcentaje nulos el 31 de julio que se mantendrán hasta el final del ensayo. El pico de ocupación de hojas con más de 8 adultos de P.ulmi coincide con el pico de ocupación de hojas con fitoseidos; aunque dicha coincidencia es circunstancial ya que los valores de porcentaje de hojas con fitoseidos son demasiado bajos para influir en las poblaciones de presa. De manera general, la evolución de los porcentajes de hojas ocupadas por araña roja es muy similar a la evolución registrada en la prueba de campo de 2011, aunque no coincidente en fechas, siendo en 2011 la desaparición de plaga más tardía que en 2012, contrariamente a lo ocurrido en este caso, relacionada con los niveles de depredadores. Estos resultados evidencian las dificultades de los fitoseidos difundidos en la parcela para instalarse así como las dificultades de los fitoseidos encontrados de forma natural para sobrevivir. Se plantean varias hipótesis para dar respuesta a estos hechos: - Condiciones del material de suelta: Al tratarse de poblaciones de fitoseidos tan bajas desde las primeras semanas y no producirse ningún aumento tras la difusión, se puede plantear la duda de que el material de suelta colocado no estuviese en buenas condiciones. Esta hipótesis quedó descartada ya que el material pasa estrictos controles de calidad tanto en origen, en Inglaterra, donde se producen; como en Almería, a su llegada a España. Además de esto, antes de realizar la suelta para este ensayo, se revisó el material comprobando que se encontraba en perfecto estado. Esta hipótesis tampoco justificaría la desaparición de los fitoseidos que se encontraban en la parcela de forma natural. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 63 - Tratamientos químicos incompatibles: En el ANEXO 1 se incluye la lista de todos los tratamientos realizados en la parcela de ensayo durante todo el período vegetativo y se ha comprobado que todos ellos son compatibles con los fitoseidos, por tanto tampoco ésta sería la causa de sus bajas poblaciones. Solamente se debería tener en cuenta que el día 13 de septiembre se realizó un tratamiento para Ceratitis con Lambda cihalotrin, incompatible con los fitoseidos. Este tratamiento únicamente influiría en el conteo de laboratorio realizado a las muestreas tomadas el 26 de septiembre; sin embargo, debido a la escasa población existente antes incluso del tratamiento, no se aprecian diferencias en este conteo respecto a los anteriores. - Posible dificultad de instalación al tratarse de A.andersoni producidos en laboratorio: Los A. andersoni que se sueltan artificialmente son producidos en laboratorio; aunque las condiciones ambientales de producción y factores que podrían influir en su desarrollo están totalmente estudiados y son producidos con gran rigurosidad, se podría pensar que quizá estos fitoseidos difundidos artificialmente en una zona con unas condiciones ambientales muy determinadas no sean capaces de instalarse de la misma forma que lo harían aquellos fitoseidos que se encuentran de manera natural. El estudio realizado por Vilajeliu et al. (2009) en el que se utiliza producto de la misma casa comercial que en este ensayo los resultados han sido positivos, conseguido controlar biológicamente las poblaciones de araña, por lo que aunque esto no serviría para descartar la posibilidad de que en algunas ocasiones sí pueda influir la procedencia de estos depredadores; se puede decir que este tipo de procedimiento ha dado resultados positivos en otras ocasiones Esta hipótesis no justificaría la desaparición de los fitoseidos que se encontraban en la parcela de forma natural. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 64 - Influencia de las condiciones meteorológicas en Amblyseius andersoni: Esta especie de fitoseido soporta temperaturas superiores a los 40 ºC (García Jiménez, 2003), sin embargo, es más sensible a condiciones de bajas humedades relativas; aunque no se conocen valores concretos para condiciones de campo, distintos autores como García Jiménez, 2003; Nguyen Van Dinh et al., 1987; Ferragut et al., 1987 y 1988, y Croft et al., 1993; hacen referencia a este hecho. En el ANEXO 3 se incluyen las condiciones meteorológicas diarias durante el ensayo. La temperatura de 40ºC se superó únicamente en días puntuales por lo que en principio no debería haber afectado a los fitoseidos. Sin embargo, debe tenerse en cuenta el hecho de que ha sido un verano con temperaturas inusualmente elevadas y con poca variación térmica ente el día y la noche, hechos que han podido afectar a la instalación del depredador. Las humedades relativas durante los días del ensayo han sido bajas respecto a años anteriores por lo que podrían haber afectado a la instalación de los fitoseidos. La información referente a temperaturas y humedades relativas de tolerancia de Amblyseius andersoni son escasas, así que tomando como referencia las condiciones meteorológicas durante la prueba de campo realizada en 2011 donde los fitoseidos sí lograron su instalación, se ha realizado una comparativa de las condiciones meteorológicas a las que estuvieron sometidos los depredadores durante ambos años para observar si realmente estas condiciones han sido diferentes entre estos períodos. Para realizar esta comparativa se consideran los 21 primeros días de ensayo durante los cuales la población de fitoseidos descendió notoriamente, dejando patente dificultades en su instalación así como la desaparición de los fitoseidos ya presentes de forma natural. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 65 Tabla 13: Comparativa de temperaturas y humedades relativas de los años 2011 y 2012 durante las tres primeras semanas de la prueba de campo y del ensayo realizados en ambos años respectivamente COMPRACIÓN DE TEMPERATURAS AÑO 2011 AÑO 2012 TEMPERATURA MEDIA 22,5 ºC 23,02 ºC TEMPERATURA MÁXIMA 36,3 ºC 37,5 ºC TEMPERATURA MÍNIMA 8,3 ºC 9,6 ºC COMPRACIÓN DE HUMEDADES RELATIVAS AÑO 2011 AÑO 2012 HUMEDAD RELATIVA MEDIA 47,04% 45,3% HUMEDAD RELATIVA MÁXIMA 79,12% 77,5% HUMEDAD RELATIVA MÍNIMA 23,14% 23,6% En la Tabla 13 se observa que las temperaturas del año 2012 fueron ligeramente superiores y las humedades relativas inferiores a las registradas en 2011 durante el período de tiempo comparado, lo que podría haber influido negativamente en la instalación de los fitoseidos durante este último año. Las condiciones meteorológicas del día en el que se realiza la suelta de los depredadores también son importantes para su posterior instalación y desarrollo. Se comparan las temperaturas y humedades de los días de suelta de los fitoseiodos en 2011 y 2012. Gráfico 34: Temperaturas con frecuencia horaria de los respectivos días de suelta de fitoseidos en el año 2011 y 2012 (30/06/2011 y 03/07/2012) 0 5 10 15 20 25 30 35 40 0:00 3:00 6:00 9:00 12:00 15:00 18:00 21:00 0:00 Temperatura ºC Hora del día TEMPERATURA 2011 TEMPERATURA 2012 Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 66 Las temperaturas del día que se realizó la suelta de A.andersoni para este ensayo fueron considerablemente más altas que las temperaturas del día de suelta para la prueba de campo de 2011; pudiendo influir negativamente en los fitoseidos y dificultando su instalación en el campo. Gráfico 35: Humedad relativa con frecuencia horaria de los respectivos días de suelta de fitoseidos en el año 2011 y 2012 (30/06/2011 y 03/07/2012) Las humedades relativas durante el día 3 de julio de 2012 fueron en todo momento inferiores a las del día 30 de junio de 2011. Esto pudo causar dificultades a los depredadores para instalarse correctamente. El descenso poblacional de P.ulmi no puede asociarse a la acción depredadora de A. andersoni, por lo que se consideran otros posibles motivos que hayan provocado el descenso de la plaga hasta prácticamente su desaparición: - Tratamientos fitosanitarios contra araña: Como se puede consultar en el ANEXO 1 durante el período de tiempo que duró el ensayo no se realizaron tratamientos fitosanitarios que afectasen a Panonychus ulmi; por tanto, la drástica disminución en su población no pudo estar debida a este factor. 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 0:00 3:00 6:00 9:00 12:00 15:00 18:00 21:00 0:00 % Humedad relativa Hora del día HUMEDAD RELATIVA 2011 HUMEDAD RELATIVA 2012 Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 67 - Acción depredadora de Stethorus spp.: En las primeras semanas del ensayo durante la realización de los muestreos de campo se encontraron numeroso ejemplares de Stethorus spp. en las hojas, principalmente en estado de larva. Stethorus spp. pertenece a la familia de los Coccinelidos y se trata de un depredador muy voraz de ácaros de la familia Tetranychidae. Es una especie que puede encontrarse en huertos, plantaciones de árboles, jardines y campos de cultivo donde haya ácaros de esta familia. A lo largo de su desarrollo presenta diferentes estadios: Figura 36: Ciclo de vida de Stethorus spp. Los huevos de Stethorus spp. son de forma ovalada y de color amarillo; y en contraste con otros Coccinelidos que depositan sus huevos en racimos, Stethorus spp. deposita sus huevos individualmente en el envés de las hojas de las plantas infestadas con ácaros de araña. Este estadio de huevo dura de 3 a 5 días dependiendo de la temperatura. Las larvas se alimentan y se desarrollan a través de cuatro estadios en un plazo de 8-9 días; y las pupas necesitan de 6-8 días para emerger como adultos. El ciclo de vida completo dura unas dos semanas a 26ºC. Las hembras adultas requieren de un período aproximado de una semana para empezar a poner huevos, y sólo lo harán si hay una densidad adecuada de ácaros disponibles para ser ingeridos. Las hembras emergen sin huevos o sólo con unos pocos Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 68 huevos maduros en los ovarios, por lo que la alimentación continua de presa es necesaria para la maduración de los mismos. Stethorus spp. tiene una elevada capacidad depredadora ya que las hembras deben consumir al menos 20 huevos de araña/día para iniciar y mantener la producción de sus huevos; siendo ésta de 3 a 13 huevos/día y una larva puede consumir 240 ácaros durante su desarrollo hasta la fase de pupa. Indiscutiblemente este depredador ha realizado una importante labor en la disminución de la población de P.ulmi, ya que sus poblaciones fueron muy elevadas durante las primeras semanas del ensayo, descendiendo hasta prácticamente su desaparición al disminuir la población de presa. - Influencia de las condiciones meteorológicas en Panonychus ulmi: Tanto temperatura como humedad son condiciones que influyen de manera determinante en las poblaciones de araña roja. La temperatura es un factor que ejerce un papel muy importante en varios momentos de la vida de una araña roja. Las bajas temperaturas invernantes son causa de mortalidad en los estadíos hibernantes; además de ser concluyentes en el inicio o terminación de la diapausa. En primavera el tiempo frío aparentemente causa mortalidad de las larvas recién nacidas (Oatman, 1965). Por su parte, Mori (1961) reportó las preferencias en temperatura para este ácaro, siendo éstas de 25ºC a 28ºC. Relativamente poco se conoce sobre los límites superiores de tolerancia de temperatura de tetraníquidos, Mori (1961) los sitúa entre 44ºC y 47ºC; aunque Roesler (1953) observó que las densidades de P.ulmi en árboles frutales descendían drásticamente después de que las temperaturas alcanzasen valores de 40ºC por varios días. En el ANEXO 3 se incluyen las temperaturas medias, máximas y mínimas durante el ensayo; éstas han sido atípicamente elevadas aunque no han superado en Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 69 ningún momento las temperaturas de 44-47ºC marcadas como límite de supervivencia de P.ulmi; y solo se han superado los 40ºC durante los días 9 y 10 de agosto. En cuanto a la humedad, como se aprecia en el ANEXO 3, no se citan en bibliografía humedades concretas limitantes para estos tetraníquidos en campo, por lo que no se puede determinar que las bajas humedades de este año hayan sido las causantes del drástico descenso de Panonychus ulmi. Análisis económico Una vez evaluadas las cuestiones técnicas del control biológico de P.ulmi mediante el depredador A.andersoni se consideran las cuestiones económicas. Se realiza una comparativa de los costes de las distintas prácticas efectuadas en el año 2012 para controlar la araña roja en la finca donde se encuentra la parcela de ensayo. Dicha finca está dividida en cinco parcelas diferentes con similares características y todas ellas con amplio historial de fuertes ataques de araña roja. En cada parcela se llevó a cabo una serie de tratamientos, biológicos y químicos con el fin de controlar esta plaga. En las parcelas 1 y 2 se aplicó un control químico convencional, en la parcela 3 se realizó un control integrado, utilizando productos químicos en primavera y suelta biológica de A.andersoni en verano, en la parcela 4 se llevó a cabo un control químico, siendo necesario tratar únicamente en primavera, ya que en verano la afección de plaga fue mínima, posiblemente debido a la suelta biológica utilizada durante el año 2011 para la prueba de campo en esta parcela, y por último en la parcela 5 donde se ha realizado este ensayo en 2012 y donde se efectuó un tratamiento integrado, químico en primavera y suelta biológica en verano. Los precios de los productos fitosanitarios utilizados en los tratamientos químicos fueron consultados a los técnicos de los distribuidores de las casas comerciales de la zona. Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 70 Los costes estimados por hora aplicados para la mano de obra fueron de 7 €/h; y los costes aplicados a maquinaria (tractor + atomizador + operario) de 55 €/h; los cuales incluyen cotización a la seguridad social y retenciones aplicables a la mano de obra así como todos los costes fijos y variables aplicables al tractor y al apero (costes de amortización, reparaciones, mantenimiento, seguros, interés, desgaste, combustibles, lubricantes…) PARCELA 1 y PARCELA 2: Lucha química convencional En estas dos parcelas se utilizó un control químico convencional, con tratamientos en primavera y verano. En la Tabla 14 se incluyen los costes de los tratamientos realizados contra P.ulmi durante el año 2012. Tabla 14: Costes de los tratamientos realizados en las parcelas 1 y 2 contra la plaga de P.ulmi durante el año 2012 PRODUCTO MANO DE OBRA Y MAQUINARIA TOTAL NOMBRE Y COMPOSICIÓN DOSIS CALDO/ha PRECIO COSTE/ha HORAS/ha €/h COSTE/ha €/ha APOLO (Clofentezin, 50) 0,06% 700 l 82 €/l 34,44 € 0,5 55 27,50 € 61,94 ABAMECTINA (Abamectina, 1,8) 0,08% 700 l 19 €/l 10,64 € 0,5 55 27,50 € 38,14 MILBEKNOCK (Milbemectina 0,93) 0,15% 700 l 129 €/kg 135,45 € 0,5 55 27,50 € 162,95 PIRISAR (Piridaben, 20) 0,1% 700 l 21 €/kg 14,7 € 0,5 55 27,50 € 42,2 COSTE TOTAL DEL TRATAMIENTO 305,23 €/ha PARCELA 3: Suelta comercial Tras los positivos resultados y el éxito de la prueba de campo de 2011 el técnico de la finca Javier Lozano decidió realizar la suelta en esta parcela de A.andersoni a una dosis de 75.000 individuos/ha en formato de sobres. Los resultados fueron similares a la experiencia del ensayo de 2012, la araña roja desapareció de la misma forma que Control biológico de la araña roja del manzano Panonychus ulmi (Koch) mediante el ácaro fitoseido Amblyseius andersoni (Chant) 77 6. BIBLIOGRAFÍA AMANO, H. y CHANT, D., 1977. Vida y Reproducción de Amblyseius andersoni. Diario Canadiense de Zoología, 55 1978-1983. AGUSTÍ FONFRÍA, M., 2004. Fruticultura. Ed. Mundi-Prensa, Madrid, 493 pp. ALVAREZ REQUEJO, S., 1988. Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación. Servicio de Extensión Agraria. Ed. AEDOS, S.A. BADII, M. y McMURTRY, H., 1984b. Life history of and life table parameters for Phytoseiulus longipes with comparative studies on P. persimilis and Typhlodromus occidentalis (Acari: Phytoseiidae). Acarología 25: 111-123. BORÉ J.M., FLECKINGER J., 1997. Pommiers à cidre, variétés de France. INRA, pp. 771. BOVEY, R., 1971. La defensa de las plantas cultivadas: tratado práctico de fitopatología y zoología agrícola. Ed. 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Tabla 1: Tratamientos fitosanitarios realizados durante el período vegetativo de 2012 en la parcela de ensayo FECHA MOTIVO Ó PARÁSITO TRATADO Producto utilizado Nombre comercial Número registro Composición % m.a. Plazo seguridad Aplicaciones anteriores a la suelta de Amblyseius andersoni 24-28 noviembre Hongos y bacterias BORDEAUX caffaro 21.649 Sulfato cuprocálcico NP 22-23 diciembre Hongos y bacterias BORDEAUX caffaro 21.649 Sulfato cuprocálcico NP 27-28-29 febrero Hongos y bacterias CUPROFLOW 21.670 Oxicloruro cobre, 38 NP 1-2 marzo Mojante FITOLUC Mojante 0 12 marzo Muertes de árboles BORDEAUX caffaro 21.649 Sulfato cuprocálcico NP 15-16-17 marzo Moteado POLYRAM DF 18.352 Metiram, 80 28 29-30-31 marzo Oídio y moteado POLTIX 24.123 Miclobutanil, 12,5 28 Moteado CHORUS 24.443 Ciprodinil, 50 14 Mojante FITOLUC Mojante 0 2 abril Araña roja APOLO 23.630 Clofentezín, 50 30 Pulgas y orugas RELDAN 12.211 Metil Clorpirifos, 22 15 Mojante QUASSAR Zinc+Mn 0 3-4 abril Abono foliar GOE MAR Algas marinas 0 Abono foliar NUTRICHEM 12-48-8 0 Carencial SOLUBOR Boro, 17 0 Abono foliar SIPFOL max Aminoácidos, 12 0 9-10 abril Carencial SOLUBOR Boro, 17 0 Mojante MOJANTE ORO 17.046 Mojante 0 17 abril Moteado ORTHOCIDE 11.780 Captan, 50 10 Carencial SOLUBOR Boro, 17 0 Mojante MOJANTE ORO 17.046 Mojante 0 9 al 20 abril Carpocapsa ISOMATE C Plus Feromona confusión sexual 17-18 abril Abono foliar SOILRAY 10-20-10 0 Abono foliar SIPFOL max Aminoácidos, 12 0 20-21 abril Phytoptora ALIETTE 15.907 Fosetil-Al, 80 0 29 abril Carencial SOLUBOR Boro, 17 0 27-29 abril Oídio y moteado ATEMI 24.900 Ciproconazol, 10 14 Pulgón TEPPEKI 24.526 Flonicamida, 50 14 Araña roja ABAMECTINA, 1.8 24.343 Abamectina, 1.8 28 Mojante QUASSAR Zinc+Mn 0 FECHA MOTIVO Ó PARÁSITO TRATADO Producto utilizado Nombre comercial Número registro Composición % m.a. Plazo seguridad 5 mayo Carencial SOLUBOR Boro, 17 0 Mojante MOJANTE ORO 17.046 Mojante 0 7 mayo Antirusseting REGULEX 10 24.825 GA4+GA7,10 0 11 mayo Oídio THIOVIT JET 12.901 Azufre, 80 5 Carencial SOLUBOR Boro, 17 0 Mojante MOJANTE ORO 17.046 Mojante 0 8-9 mayo Oídio y moteado STROBY 21.603 Kresoxim metil 35 Moteado DELAN 19.741 Ditianona, 75 21 Carencial STOPITT Calcio 0 12-14-23 mayo Zeuzera ISONET-Z Feromona confusión sexual 16 mayo Antirusseting REGULEX 10 24.825 GA4+GA7,10 0 19 mayo Oídio THIOVIT JET 12.901 Azufre, 80 5 Carencial SOLUBOR Boro, 17 0 Mojante MOJANTE ORO 17.046 Mojante 0 17 mayo Aclareo químico RHODOFIX 15.959 ANA, 1 0 Mojante MOJANTE ORO 17.046 Mojante 0 19 mayo Aclareo químico RHODOFIX 15.959 ANA, 1 0 Mojante MOJANTE ORO 17.046 Mojante 0 18-19 mayo Oídio y Moteado DOMARCK evo 18.670 Tetraconazol, 12´5 14 Moteado ORTHOCIDE 11.780 Captan, 50 10 Carpocapsa CORAGEN 25.334 Clorantraniliprol 14 23 mayo Antirusseting REGULEX 10 24.825 GA4+GA7, 10 0 24 mayo Oídio THIOVIT JET 12.901 Azufre, 80 5 Mojante MOJANTE ORO 17.046 Mojante 0 25 mayo Control vigor REGALIS 23.398 Prohexadiona calcio 55 25-26 mayo Oídio y moteado FLINT 22.338 Trifloxistrobin 14 Moteado CEREMONIA 24.410 Difenoconazol, 25 14 Carpocapsa CORAGEN 25.334 Clorantraniliprol 21 5-6-7 junio Oídio y moteado FOLICUR 25 WG 21.450 Tebuconazol, 25 14 Moteado ORTHOCIDE 11.780 Captan, 50 10 Carpocapsa MADEX 20.038 Virus de la granulosis 0 Bitter Pitt STOPITT Calcio 0 14-15-16 junio Oídio y moteado ATEMI 24.900 Ciproconazol, 10 14 Phytoptora ALIETTE 15.907 Fosetil-Al, 80 15 Carpocapsa MADEX 20.038 Virus de la granulosis 0 21-22 junio Oídio y moteado STROBY 21.603 Kresoxim-metil, 50 35 Moteado CEREMONIA 24.410 Difenoconazol, 25 14 Carpocapsa MADEX 20.038 Virus granulosis 0 Tabla 7: Porcentaje de hojas con presencia de más de 8 adultos de P.ulmi en las muestras procesadas en campo en las fechas de toma de muestras (1 muestra =25 hojas) T % DE HOJAS CON PRESENCIA DE MÁS DE 8 ADULTOS DE P.ULMI (N=3) 03/07/ 12 10/07/ 12 17/07/ 12 24/07/ 12 31/07/ 12 07/08/ 12 14/08/ 12 28/08/ 12 11/09/ 12 T 1 A 5 88 100 96 0 0 0 0 0 B 16 64 100 0 0 0 0 0 0 C 47 92 92 0 0 0 0 0 0 M 22,67 ± 21,8 81,33 ± 15,1 97,33 ± 4,6 32 ± 55,4 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 T 2 A 5 64 92 12 0 0 0 0 0 B 16 96 96 24 0 0 0 0 0 C 47 88 72 20 0 0 0 0 0 M 22,67 ± 21,8 82,67 ± 16,6 86,67 ± 12,85 18,67 ± 6,1 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 T 3 A 5 64 92 0 0 0 0 0 0 B 16 72 64 88 0 0 0 0 0 C 47 72 80 0 0 0 0 0 0 M 22,67 ± 21,8 69,33 ± 4,6 78,67 ± 14,0 29,33 ± 50,8 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 T 4 A 5 4 76 24 0 0 0 0 0 B 16 44 88 76 0 0 0 0 0 C 47 64 96 60 0 0 0 0 0 M 22,67 ± 21,8 37,33 ± 30,5 86,67 ± 10,1 53,33 ± 24,4 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 (T1: Sobres Gemini 75.000 ind/ha, T2: Sobres Gemini 50.000 ind/ha, T3:Material suelto 50.000 ind/ha, T4: Testigo) MUESTREO PREVIO (03/07/12): se tomaron muestras de cada uno de los bloques independientemente de las tesis, ya que al no haber hecho todavía la suelta se consideró que no debía haber diferencia entre ellas. Por ese motivo se consideran los mismos resultados para todas las tesis. Tabla 8: Porcentaje de hojas con presencia de fitoseidos en las muestras procesadas en campo en las fechas de toma de muestras (1 muestra =25 hojas) T % DE HOJAS CON PRESENCIA DE FITOSEIDOS (N=3) 03/07/ 12 10/07/ 12 17/07/ 12 24/07/ 12 31/07/ 12 07/08/ 12 14/08/ 12 28/08/ 12 11/09/ 12 T 1 A 0 0 8 4 8 4 0 0 0 B 0 0 0 0 0 0 0 0 0 C 0 0 0 0 0 0 0 0 0 M 0 ± 0 0 ± 0 2,67 ± 4,62 1,33 ± 2,31 2,67 ± 4,62 1,33 ± 2,31 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 T 2 A 0 0 12 0 4 8 0 0 0 B 0 0 0 12 4 0 0 4 0 C 0 0 8 0 0 0 0 0 0 M 0 ± 0 0 ± 0 6,67 ± 6,11 4 ± 6,93 2,67 ± 2,31 2,67 ± 4,62 0 ± 0 1,33 ± 0 0 ± 0 T 3 A 0 0 0 8 0 0 0 0 0 B 0 0 0 0 0 0 0 0 0 C 0 0 8 0 4 0 0 0 0 M 0 ± 0 0 ± 0 2,67 ± 4,62 2,67 ± 4,62 1,33 ± 2,31 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 T 4 A 0 0 20 4 4 4 0 0 0 B 0 0 0 0 0 0 0 0 0 C 0 0 4 0 4 0 0 0 0 M 0 ± 0 0 ± 0 8 ± 10,1 1,33 ± 2,31 2,67 ± 2,31 2,67 ± 2,31 0 ± 0 0 ± 0 0 ± 0 (T1: Sobres Gemini 75.000 ind/ha, T2: Sobres Gemini 50.000 ind/ha, T3:Material suelto 50.000 ind/ha, T4: Testigo) MUESTREO PREVIO (03/07/12): se tomaron muestras de cada uno de los bloques independientemente de las tesis, ya que al no haber hecho todavía la suelta se consideró que no debía haber diferencia entre ellas. Por ese motivo se consideran los mismos resultados para todas las tesis. ANEXO 3: TEMPERATURAS Y HUMEDADES RELATIVAS En el ANEXO 3 se incluyen temperaturas y humedades relativas diarias del período de ensayo de 2012 así como del período de la prueba de campo del 2011; también se incluyen las temperaturas y humedades relativas con frecuencia horaria del día de la suelta de los depredadores de ambos años: Tabla 9: Datos diarios de temperatura media, máxima y mínima en ºC recogidos en la estación meteorológica de Calatayud durante el período del ensayo de 2012 FECHA TEMP. MEDIA TEMP. MÁXIMA TEMP. MÍNIMA 03/07/2012 24 35,2 12,4 04/07/2012 24,7 31,8 17,4 05/07/2012 21,5 28,1 15,8 06/07/2012 21 30,3 10,4 07/07/2012 25,7 35,2 13,1 08/07/2012 22,8 28,9 14,6 09/07/2012 24,8 34,6 13,8 10/07/2012 23,1 31,4 14 11/07/2012 20,7 27,8 12,6 12/07/2012 22,4 34,9 10,6 13/07/2012 25,6 36,3 11,7 14/07/2012 21,3 27 15,4 15/07/2012 19,5 26,1 12,2 16/07/2012 21,6 30,2 9,6 17/07/2012 23,7 34,5 10,8 18/07/2012 26,5 37,5 11,8 19/07/2012 24,8 32,3 13,9 20/07/2012 22 29,6 12,8 21/07/2012 21,8 29,7 12,7 22/07/2012 21,2 30,4 10,3 23/07/2012 22,5 31 11 24/07/2012 25,3 32,7 16,4 25/07/2012 25,6 34,9 17,5 26/07/2012 25,5 34,6 18,1 27/07/2012 21,5 30,8 16 28/07/2012 21,2 28,6 14,2 29/07/2012 23 33 13,7 30/07/2012 25,7 34,3 14,9 31/07/2012 27,7 38,7 17,2 01/08/2012 25,8 37 11,4 02/08/2012 23,8 33,8 12,4 03/08/2012 24,1 31,2 15,7 04/08/2012 25,1 33,6 15,4 05/08/2012 21,4 30,6 15,2 06/08/2012 21 28,4 14 07/08/2012 23,8 31,8 13,3 08/08/2012 25,9 34,6 15 09/08/2012 27,7 40,3 15,6 FECHA TEMP. MEDIA TEMP. MÁXIMA TEMP. MÍNIMA 10/08/2012 29 41,2 16,2 11/08/2012 29 39,7 16,8 12/08/2012 23,6 31,3 14,4 13/08/2012 24,3 34,2 13,9 14/08/2012 24,9 36 12,6 15/08/2012 21,5 29,9 13,6 16/08/2012 24,5 35,8 12,4 17/08/2012 27,6 39,2 15,6 18/08/2012 28,3 39,6 17,5 19/08/2012 25,6 36,4 18,3 20/08/2012 27,1 39,3 16,2 21/08/2012 28,7 39,6 16,2 22/08/2012 27,9 36 17,9 23/08/2012 28,5 38,8 18,7 24/08/2012 25,4 35,4 14,2 25/08/2012 22,6 30,3 16,5 26/08/2012 21,4 29,4 12,2 27/08/2012 24,9 36,2 12,8 28/08/2012 25,6 36,9 12,4 29/08/2012 25,6 35,2 17,1 30/08/2012 20,8 26,1 16,2 31/08/2012 16,7 23,9 7,6 01/09/2012 16,2 23,6 7 02/09/2012 16,3 24,2 5,6 03/09/2012 17 25 7,7 04/09/2012 17,8 26 7,9 05/09/2012 19,5 28,1 8,8 06/09/2012 20,9 30,4 10,7 07/09/2012 22,3 33,4 11,2 08/09/2012 21,3 33,6 12,8 09/09/2012 20,2 32,7 11,7 10/09/2012 19 28,8 11,9 11/09/2012 20,8 31,3 11,2 12/09/2012 19,5 27,3 12,4 13/09/2012 17,5 24,3 10,7 14/09/2012 17,4 28,7 5,7 15/09/2012 19,8 34,2 6,3 16/09/2012 20,2 35,1 7,1 17/09/2012 19,8 32 11,3 18/09/2012 19,1 28,3 11,4 19/09/2012 19,2 25,5 12,6 20/09/2012 19,6 29,2 9,4 21/09/2012 21,8 30,6 12,3 22/09/2012 21,8 33,2 11,8 23/09/2012 20,3 31,7 10,5 24/09/2012 19,7 25,6 13,8 25/09/2012 17,4 22,9 10,9 26/09/2012 14,4 19,5 6,8 Tabla 10: Datos diarios de humedad relativa media, máxima y mínima en porcentaje recogidos en la estación meteorológica de Calatayud durante el período del ensayo de 2012 FECHA %HR MEDIA %HR MÁXIMA %HR MÍNIMA 03/07/2012 35 56,2 14,9 04/07/2012 49,3 75 30,3 05/07/2012 53,6 81,1 38,7 06/07/2012 47,5 81,8 23 07/07/2012 39,6 78,3 12,9 08/07/2012 48,2 80,3 31,9 09/07/2012 43,4 72,6 11,7 10/07/2012 52,4 86 25,7 11/07/2012 56,2 86 35,1 12/07/2012 48,9 94,2 14 13/07/2012 35,8 73,2 10,9 14/07/2012 53,4 83,3 34,5 15/07/2012 49,5 74,9 32,1 16/07/2012 42,1 79,6 17,7 17/07/2012 35,8 68,9 14,7 18/07/2012 31,7 68,2 14 19/07/2012 39,3 64,8 25,3 20/07/2012 50 84,6 31,9 21/07/2012 46,2 77,6 25,1 22/07/2012 46,2 86,4 19,5 23/07/2012 43,2 77,3 22,9 24/07/2012 49,2 75 32 25/07/2012 46,5 69,4 27,4 26/07/2012 56,3 98 30,6 27/07/2012 70,8 94,9 41,6 28/07/2012 70,7 99,2 41,7 29/07/2012 61,8 96,9 29,3 30/07/2012 51 92,4 25,5 31/07/2012 33,5 72,6 7 01/08/2012 29,2 65 6,3 02/08/2012 46 79,8 21 03/08/2012 49,9 80,6 28,3 04/08/2012 47,1 79 24,9 05/08/2012 59,9 86 29 06/08/2012 53 88,5 26,5 07/08/2012 46,8 81,1 27,2 08/08/2012 40,7 77,8 19,9 09/08/2012 36 74,1 8,3 10/08/2012 30,8 61,9 8,9 11/08/2012 29 61,9 7,7 12/08/2012 46,9 76,4 22,8 13/08/2012 42,3 74,1 16,8 14/08/2012 37,3 72,4 13,3 15/08/2012 49,8 74 25,6 16/08/2012 48,8 84,2 21 17/08/2012 45,6 81,4 17,8 FECHA %HR MEDIA %HR MÁXIMA %HR MÍNIMA 18/08/2012 38,8 76,9 16,4 19/08/2012 54,7 87,4 19,8 20/08/2012 50 92,4 14,4 21/08/2012 36,5 73,2 12,4 22/08/2012 47 81,4 22,6 23/08/2012 36,7 78,3 8,1 24/08/2012 31,8 74,6 8,1 25/08/2012 49 73,6 26,4 26/08/2012 46 83,7 24,3 27/08/2012 38,2 75,4 14,4 28/08/2012 25,2 52,7 8,7 29/08/2012 42,4 69,7 14,6 30/08/2012 49,8 68,2 31,8 31/08/2012 47 82,9 26,9 01/09/2012 38,4 77,9 15,6 02/09/2012 41 72,6 22,8 03/09/2012 53,2 78 31,4 04/09/2012 57 89,1 34,7 05/09/2012 56,4 87,7 31,7 06/09/2012 53 88 25,7 07/09/2012 45,2 77,5 19,3 08/09/2012 52,5 75,6 18,9 09/09/2012 65,3 92,4 21,3 10/09/2012 74,2 96,4 34,5 11/09/2012 61,8 97,2 23,9 12/09/2012 65 94 39,9 13/09/2012 52,7 81,4 31,8 14/09/2012 48 88,4 14 15/09/2012 41,8 82,7 12,5 16/09/2012 42,1 81 10,3 17/09/2012 51,8 80,5 17,1 18/09/2012 60,5 84,6 25,3 19/09/2012 56,6 87,5 34 20/09/2012 55,5 80,6 31,8 21/09/2012 59,8 90,6 33,8 22/09/2012 54,2 91,6 20,9 23/09/2012 54,6 93,3 16,9 24/09/2012 50,4 73,1 30,1 25/09/2012 51,4 76,8 34,1 26/09/2012 59,2 89,5 29,9 Tabla 11: Datos diarios de temperatura media, máxima y mínima en ºC recogidos en la estación meteorológica de Calatayud durante el período de la prueba de campo de 2011 FECHA TEMP. MEDIA TEMP. MÁXIMA TEMP. MÍNIMA 30/06/2011 19 26,8 9,8 01/07/2011 22,5 30,4 11,8 02/07/2011 24,9 34,3 16,2 03/07/2011 25,3 34,6 16,8 04/07/2011 23,3 30 16,6 05/07/2011 25 35,6 12,6 06/07/2011 23,9 31,1 15,5 07/07/2011 21,7 31,8 12,4 08/07/2011 22,5 32,5 11 09/07/2011 24,3 34,5 12,6 10/07/2011 25,2 31,4 16,3 11/07/2011 25,8 35,4 15,6 12/07/2011 24,3 36,3 14,2 13/07/2011 18,6 25,2 12 14/07/2011 18,5 26,8 8,3 15/07/2011 21,8 31,1 10,6 16/07/2011 25,3 35,6 12,7 17/07/2011 20 24 14,1 18/07/2011 20,2 30,9 9,2 19/07/2011 20 25 14,3 20/07/2011 20,1 30,1 9 21/07/2011 20,4 26,5 13,7 22/07/2011 18,8 24,6 14,8 23/07/2011 18,7 26,8 11 24/07/2011 18,2 26,4 8,2 25/07/2011 21,4 29,3 12,9 26/07/2011 21,1 29,3 13,8 27/07/2011 20,7 27,8 11,5 28/07/2011 21,6 28,8 12,5 29/07/2011 23,2 30,4 13,6 30/07/2011 23,7 30,5 16,9 31/07/2011 23,1 31,8 12,9 01/08/2011 25,4 34,8 14,8 02/08/2011 25,2 32,4 17,8 03/08/2011 25,1 33,2 16,8 04/08/2011 25,8 35,7 15,2 05/08/2011 25,2 34,1 17,7 06/08/2011 25,8 35 15,2 07/08/2011 25,2 34,4 16,8 08/08/2011 20,4 26,5 14,3 09/08/2011 18,9 27,9 8,4 10/08/2011 20,4 29,7 8,4 11/08/2011 29,4 32,7 14,2 12/08/2011 24,2 34,8 16,1 13/08/2011 38,7 31,7 17,5 14/08/2011 36,4 33,7 22,4 FECHA TEMP. MEDIA TEMP. MÁXIMA TEMP. MÍNIMA 15/08/2011 26 34,5 16,3 16/08/2011 29,2 34,8 0 17/08/2011 27,7 38,8 17,5 18/08/2011 26,1 32,2 20,8 19/08/2011 26,5 36,6 15,8 20/08/2011 28,7 38,7 17 21/08/2011 29,4 37,2 19,1 22/08/2011 25,6 34,9 17,5 23/08/2011 24,4 35,5 14 24/08/2011 24,2 32,9 15,9 25/08/2011 24,2 34,8 14,3 26/08/2011 19,7 25,7 13,8 27/08/2011 18,2 26,1 9,4 28/08/2011 21,6 34 9,6 29/08/2011 23,9 34,4 12,3 30/08/2011 23,2 34,2 13 31/08/2011 21 31,7 12,4 01/09/2011 22,9 33 13,4 02/09/2011 20,2 27,9 14,4 03/09/2011 19,4 26,5 13,1 04/09/2011 21,7 28,5 15,1 05/09/2011 19,9 25,5 15,2 06/09/2011 19,8 31,6 9,1 07/09/2011 21,4 33 9,8 08/09/2011 22,2 34,6 10,5 09/09/2011 22,7 36,4 10,4 10/09/2011 23,4 36,3 11,6 11/09/2011 19,6 27,8 11 12/09/2011 20,6 33,2 9,1 13/09/2011 22,7 34,2 10,7 14/09/2011 23 30,4 14,5 15/09/2011 23,9 34,9 13,4 16/09/2011 23,8 34,1 13,1 17/09/2011 21,5 29,7 13,5 18/09/2011 16,2 20,4 9 19/09/2011 13,9 22,5 4,2 20/09/2011 16,3 29,1 5,2 21/09/2011 19,2 30 7 22/09/2011 20,2 27,8 11 23/09/2011 18,4 28,1 11,7 Tabla 12: Datos diarios de humedad relativa media, máxima y mínima en porcentaje recogidos en la estación meteorológica de Calatayud durante el período de la prueba de campo de 2011 FECHA %HR MEDIA %HR MÁXIMA %HR MÍNIMA 30/06/2011 51,3 82,5 29,2 01/07/2011 44,3 81,1 25,8 02/07/2011 43 73,2 19,5 03/07/2011 46,2 77,5 12,5 04/07/2011 48,9 82,7 25,3 05/07/2011 41,9 78,3 14,5 06/07/2011 46,2 71,6 31,7 07/07/2011 50,1 87,5 18,7 08/07/2011 39,7 76,9 15,5 09/07/2011 42,2 73,1 18 10/07/2011 48,3 73,8 31,3 11/07/2011 50,4 81,9 22,9 12/07/2011 50,4 88,4 11,1 13/07/2011 56,4 83,3 36,8 14/07/2011 52 84,5 29,2 15/07/2011 44,8 80,2 20,3 16/07/2011 40,3 77,4 16,7 17/07/2011 51,4 68,1 40 18/07/2011 45,2 81,5 16,8 19/07/2011 47,3 74,8 25,1 20/07/2011 47,5 83,2 25 21/07/2011 53,9 76,1 37,1 22/07/2011 48 63,6 31 23/07/2011 44,6 71,5 26,3 24/07/2011 53,6 81,4 31,6 25/07/2011 55,9 83,7 32,1 26/07/2011 58,1 86,1 37,3 27/07/2011 52 85,4 31,1 28/07/2011 50,7 80,7 30,1 29/07/2011 46,1 81,2 21,9 30/07/2011 45 71 25,1 31/07/2011 44 79 26 01/08/2011 47,8 84,4 29,6 02/08/2011 50 93,8 23,5 03/08/2011 46,7 70,7 24,3 04/08/2011 44,9 79,7 18,4 05/08/2011 52 78,1 23 06/08/2011 48,4 89,9 20,8 07/08/2011 50,3 81 22,3 08/08/2011 47,2 75,2 26,2 09/08/2011 47,7 81,6 21,3 10/08/2011 45,2 83,3 21,6 11/08/2011 32,8 43,9 24,7 12/08/2011 53,4 97,9 30,7 13/08/2011 76,6 92,4 27,2 14/08/2011 92,5 94,4 75,7 FECHA %HR MEDIA %HR MÁXIMA %HR MÍNIMA 15/08/2011 97,1 90,6 69,5 16/08/2011 48,3 68,4 32,2 17/08/2011 50,9 93,2 16,2 18/08/2011 56,9 85,3 35,5 19/08/2011 52,9 93,7 23,4 20/08/2011 45 87,3 17,8 21/08/2011 37,8 71,7 18,3 22/08/2011 51,6 89,8 25,4 23/08/2011 47,3 85,2 20,1 24/08/2011 54,3 78,7 28,7 25/08/2011 50,6 89,9 17,9 26/08/2011 51,3 84,6 18,3 27/08/2011 50,6 84,6 20,9 28/08/2011 51 80,8 21,1 29/08/2011 47,6 84,4 16,2 30/08/2011 46,4 88,6 14,1 31/08/2011 45,1 67,9 21,5 01/09/2011 47,3 71,5 24,8 02/09/2011 65,8 93,6 37,4 03/09/2011 71,1 94,8 38,9 04/09/2011 58,6 90,6 31 05/09/2011 56,8 84,3 37,5 06/09/2011 55,4 87,1 23,5 07/09/2011 50,7 87,3 17,9 08/09/2011 48,2 88,1 14 09/09/2011 44,3 81,6 14,1 10/09/2011 39,4 82 13,3 11/09/2011 50,8 75,8 28 12/09/2011 50,8 86,3 14,3 13/09/2011 50,8 86,4 19,4 14/09/2011 57,3 84,9 39 15/09/2011 50,5 86,6 18,8 16/09/2011 49,4 81,9 22,6 17/09/2011 63,7 89,5 39,2 18/09/2011 63,7 95 40,7 19/09/2011 60,8 92,7 34,5 20/09/2011 57,9 92,8 19,8 21/09/2011 52,8 87,5 25,7 22/09/2011 59,2 89 37,7 23/09/2011 75,3 93 42,3