Efecto de la inhibición de la clusterina sobre la sensibilidad a los inhibidores de proteínas quinasas en células tumorales de mama

TESIS PARA LA OBTENCIÓN DEL GRADO DE DOCTOR POR LA UNIVERSIDAD DE MÁLAGA: EFECTO DE LA INHIBICIÓN DE LA CLUSTERINA SOBRE LA SENSIBILIDAD A LOS INHIBIDORES DE PROTEINAS QUINASAS EN CÉLULAS TUMORALES DE MAMA. DIRECTORES: Dr. MAXIMINO REDONDO BAUTISTA - Dra. TERESA TÉLLEZ SANTANA AUTORA: MARILINA GARCÍA ARANDA FECHA: Octubre 2015 FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOQUÍMICA, BIOLOGÍA MOLECULAR E INMUNOLOGÍA AUTOR: Marilina García Aranda http://orcid.org/0000-0003-3759-4044 EDITA: Publicaciones y Divulgación Científica. Universidad de Málaga Esta obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercialSinObraDerivada 4.0 Internacional: http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/legalcode Cualquier parte de esta obra se puede reproducir sin autorización pero con el reconocimiento y atribución de los autores. No se puede hacer uso comercial de la obra y no se puede alterar, transformar o hacer obras derivadas. Esta Tesis Doctoral está depositada en el Repositorio Institucional de la Universidad de Málaga (RIUMA): riuma.uma.es AGRADECIMIENTOS Quiero dar mi más sincero agradecimiento a los directores de esta tesis doctoral, el Dr. Maximino Redondo Bautista y la Dra. Teresa Téllez Santana, ya que sin su orientación y ayuda esta tesis nunca habría llegado a buen fin. También quisiera agradecer a mi familia el apoyo incondicional que siempre me han demostrado. Os quiero. A mi padre Juan. A mi madre Lina 1 La presente Tesis Doctoral forma parte de los estudios realizados bajo el soporte económico del Fondo de Investigaciones Sanitarias y la Fundación Rey Fahd de España. Parte de estos estudios se encuentran recogidos en las siguientes publicaciones: Redondo M, Téllez T, Roldan MJ, Serrano A, García-Aranda M, Gleave ME, et al. Anticlusterin treatment of breast cancer cells increases the sensitivities of chemotherapy and tamoxifen and counteracts the inhibitory action of dexamethasone on chemotherapy-induced cytotoxicity. Breast Cancer Res 2007;9:R86. Maximino Redondo, Marilina García-Aranda, María J. Roldán, Gonzalo Callejón, Alfonso Serrano, Eugenio Jiménez and Teresa Téllez. Downregulation of clusterin mediates sensitivity to protein kinase inhibitors in breast cancer cells. Anti-Cancer Drugs Jan 2015 - vol.26 – Issue 1 – p 85 -89. Doi: 10.1097. 1. INTRODUCCIÓN 8 1. INTRODUCCIÓN 1.1. EL CÁNCER DE MAMA 1.1.1. EPIDEMIOLOGÍA DEL CÁNCER DEMAMA SEGÚN LA OMS, cada año se diagnostican más de diez millones de nuevos casos de cáncer, lo que unido su alto índice de mortalidad cercano al 25%, sitúa al cáncer como la segunda causa de muerte en el mundo. SEGÚN LA ASOCIACIÓN ESPAÑOLA CONTRA EL CÁNCER (AECC) el cáncer de mama es la neoplasia maligna sólida más frecuentemente diagnosticada en las mujeres occidentales, esto es Norteamérica y Europa, y la que tiene mayor prevalencia mundial a 5 años en ambos sexos. AUNQUE LA MORTALIDAD por cáncer de mama ha tenido una evolución llamativa, con un importante aumento desde los años 50 hasta la década de los 80 [Botha y cols, 2003], durante las dos últimas décadas en la mayor parte de los países desarrollados se ha observado una disminución de la misma, debido sobre todo al éxito de los nuevos tratamientos y a la implantación de los programas de cribado. AÚN ASÍ, EL CÁNCER DE MAMA, se coloca como la quinta causa de muerte entre los enfermos oncológicos, siendo la responsable de 522.000 muertes en el año 2012. De hecho, sólo en el año 2012 se diagnosticaron 1,67 millones de nuevos casos en todo el mundo, lo que supone el 25% de todos los casos diagnosticados en mujeres y menos del 1% en los hombres. DESPUÉS DEL CÁNCER DE PULMÓN, el cáncer de mama es en la actualidad la causa de muerte más frecuente entre las mujeres de zonas menos desarrolladas (324.000 muertes, 14,3% del total) y la segunda causa de muerte en zonas más desarrolladas (198.000 muertes, 15,4%), suponiendo la primera causa de muerte en mujeres entre 40 y 55 años. APROXIMADAMENTE EL 25% con diagnóstico de cáncer de mama en estadio precoz desarrollará la enfermedad metastásica que sigue siendo incurable, por lo que la investigación, el diagnóstico y el tratamiento del cáncer de mama deben ser aspectos prioritarios dentro de la política sanitaria. Es por tanto necesario continuar con los programas de diagnóstico precoz, evitar los retrasos en los diagnósticos y asegurar a los pacientes la mejor estrategia terapéutica. LA AGENCIA INTERNACIONAL PARA LA INVESTIGACIÓN DEL CANCER (IARC) es el organismo especializado para el cáncer de la Organización Mundial de la Salud (OMS) y la responsable de publicar periódicamente el informe GLOBOCAN, con los datos más actualizados a nivel mundial sobre la incidencia, prevalencia y mortalidad por cáncer de los 28 tipos más frecuentes de 184 países. Éste informe, disponible en la página http://globocan.iarc.fr, supone una valiosa visión de lo que representa la carga del cáncer en el mundo, con información de población adulta, mayor de 15 años, con datos globales de la población pero también por países y regiones del mundo, según su sexo, y con predicciones hasta dentro de 20 años. 1. INTRODUCCIÓN 9 EN EL INFORME GLOBOCAN 2012 para España, la estimación de la incidencia global de cáncer de mama en el año 2012 fue de 27.182, con un aumento gradual respecto al año 2006, que fue de 26.493. Este porcentaje supone casi el 30% de todos los tumores detectados en la población femenina española. Así mismo, fue el tumor con mayor prevalencia a 5 años (17.9%), el quinto en incidencia (11,7%) y el cuarto en mortalidad (5,9%) en ambos sexos. En las mujeres, la mayor incidencia, mortalidad y prevalencia a 5 años es para el cáncer de mama (29%, 15,5% y 40,5%, respectivamente), provocando la muerte de 6.000 mujeres cada año. FIG. 1.1 Incidencia en mujeres en los tumores más frecuentes. GLOBOCAN 2012 FIG. 1.2 Mortalidad en mujeres en los tumores más frecuentes. GLOBOCAN 2012 FIG. 1.3 Prevalencia a 5 años en mujeres en los tumores más frecuentes. GLOBOCAN 2012 FIG. 1.4 Leyenda figuras 1-3. GLOBOCAN 2012 EN LOS PAISES DE LA CUENCA EUROPEA (España, Centroeuropa, Portugal e Irlanda), la incidencia de este tumor es inferior a la de países como Estados Unidos, Canadá, Reino Unido, Países Bajos, Alemania, Francia y Suiza. La tasa de supervivencia en los países mediterráneos también es mayor, lo que se ha relacionado con el efecto protector de la dieta mediterránea. A PARTIR DE 1.992, la tasa de mortalidad de este cáncer en España empezó a descender a un ritmo del 2% anual, mientras que la tasa de supervivencia se incrementó por encima del 75% a los cinco años del diagnóstico. Estas tendencias, se deben principalmente a los programas de detección precoz y a los avances en el tratamiento sistémico, lo que explica las 1. INTRODUCCIÓN 10 tasas de supervivencia mayores en países desarrollados como Estados Unidos, Canadá, Japón y Europa Occidental. FIG. 1.5 Tendencia en la mortalidad del cáncer de mama por grupos de edad (tasa por 100.000). GLOBOCAN 2012 LAS ESTADISTICAS también nos muestran que la mayoría de los casos se diagnostican entre los 35 y los 80 años. De este modo, podemos ver como todos los estudios poblacionales coinciden en que la incidencia de una forma gráfica es de un 25% en las mujeres menores a 50 años, de un 50% entre las mujeres con edades comprendidas entre los 50 y los 69 años y de un 25% para las mayores de 70 años. FIG. 1.6 Estimación de la incidencia de cáncer de mama. GLOBOCAN 2012 1. INTRODUCCIÓN 11 1.1.2. FACTORES DE RIESGO DEL CÁNCER DE MAMA LA ORGANIZACIÓN MUNDIAL DE LA SALUD OMS ha establecido la existencia de múltiples y diversos factores de riesgo del cáncer de mama, siendo los de mayor importancia los que tienen una base hormonal. También aclara que en la mayoría de las mujeres afectadas no es posible identificar los factores de riesgo específicos. EL CDL (Center of Disease Control) y el NCI (National Cancer Institute) clasifican los factores de riesgo de cáncer de mama con base hormonal en dos grupos, reproductivos y no reproductivos: FACTORES DE RIESGO REPRODUCTIVOS EMBARAZO: Diversos estudios muestran que el riesgo que tiene una mujer para desarrollar cáncer de mama está relacionado con la exposición a sus hormonas ováricas (estrógenos endógenos y progesterona) ya que estimulan el crecimiento celular. Así, los factores reproductivos que aumentan la duración y/o el nivel de exposición a las hormonas ováricas, tales como aquéllos que aumentan el número de ciclos menstruales: menarquia temprana, menopausia tardía, embarazo después de cumplir 30 años, no haberse quedado embarazada, etc. se han asociado a un mayor riesgo de cáncer de mama. [1-3] LACTANCIA: Al igual que el embarazo, la lactancia prolongada reduce el número de ciclos menstruales en la mujer. Además, también produce cambios directos en las células mamarias, provocando su diferenciación y maduración para producir leche. Esta diferenciación parece estar relacionada con una mayor resistencia de éstas células a mutar en células cancerígenas. [4-7] CONTROL DE LA NATALIDAD: Otros estudios sugieren que el uso de píldoras contraceptivas basadas en el uso de estrógenos y progesterona, en especial entre mujeres jóvenes, incrementan ligeramente el riesgo de cáncer de mama mientras que disminuyen el riesgo de cáncer de útero y ovario. [8-9] TERAPIA HORMONAL DESPUÉS DE LA MENOPAUSIA/REEMPLAZO HORMONAL: La terapia hormonal con estrógeno (a menudo combinada con progesterona) ha sido usada durante muchos años para ayudar a paliar los síntomas de la menopausia y la osteoporosis. Este tipo de tratamiento se realiza bien con estrógenos únicamente (en mujeres que han sufrido una histerectomía) o combinando estrógenos con progesterona (en mujeres que conservan el útero) ya que se ha visto que la terapia basada únicamente en el uso de estrógenos incrementa el riesgo de cáncer de útero. La terapia hormonal combinada después de la menopausia incrementa el riesgo de padecer cáncer de mama con tumores de mayor tamaño y con mayor riesgo de dispersión a los nódulos linfáticos. [10] La mortalidad en las mujeres que toman este tratamiento también es mayor (2,6/1000) comparada con el grupo de control (1,3/1000). [11] 1. INTRODUCCIÓN 12 FACTORES DE RIESGO NO REPRODUCTIVOS ENVEJECIMIENTO: Además de pertenecer al sexo femenino, el envejecimiento es el factor de mayor riesgo para el cáncer de mama [12]. El riesgo de padecer cáncer de mama se incrementa conforme la edad aumenta. Aproximadamente uno de ocho cánceres de mama (12,5%) se detecta en mujeres menores de 45 años de edad, mientras que aproximadamente dos de tres cánceres de tipo invasivos (66,66%), se encuentran en mujeres de 55 años o más. A partir de los 80 años esta tendencia se estabiliza. [22] EL CONSUMO FRECUENTE DE BEBIDAS ALCOHÓLICAS: Numerosos estudios epidemiológicos han evidenciado la relación entre el consumo de alcohol y el riesgo de cáncer de mama en mujeres. [13-15] SOBREPESO U OBESIDAD DESPUÉS DE LA MENOPAUSIA: Tras la menopausia, los estrógenos, en vez de producirse principalmente en los ovarios, se producen en el tejido adiposo. Un exceso de tejido adiposo después de la menopausia puede aumentar la probabilidad de padecer cáncer de mama al aumentar los niveles de estrógenos. Además, los niveles elevados de insulina asociados al sobrepeso también están asociados a algunos tipos de cáncer, incluyendo el cáncer de mama. No obstante, la relación entre el peso y el riesgo de cáncer de mama es compleja: Parece que el riesgo aumenta en mujeres que suben de peso en su vida adulta, pero es posible que no aumente en aquellas mujeres que han tenido exceso de peso desde la infancia. Un exceso de grasa en el área de la cintura también supone un mayor riesgo que la misma cantidad de grasa en las caderas y los muslos. [16-18] ACTIVIDAD FÍSICA: La evidencia indica que la actividad física reduce el riesgo de cáncer de mama. Caminar a paso ligero de 1,25 a 2,5 horas por semana reduce al 18% el riesgo de padecer cáncer de mama. Con diez horas de caminata a la semana el riesgo se reduce aún más. [19-20] INCIDENCIA SEGÚN EL SEXO: Ser mujer es el principal riesgo de padecer cáncer de mama. Aunque los hombres también pueden padecer esta enfermedad, es aproximadamente 100 veces más común en las mujeres que en los hombres, debido probablemente a que los hombres tienen menos hormonas femeninas, estrógenos y progesterona. Entre los factores de riesgo para el cáncer de mama masculino se encuentran la obesidad (con un exceso de tejido mamario y elevados niveles de estrógenos), el síndrome de Klinefelter y la ginecomastia. [21] FACTORES DE RIESGO GENÉTICOS: Se estima que entre el 5 y el 10% de los casos de cáncer de mama son hereditarios. Las mujeres con alteraciones en alguno de los dos principales genes de susceptibilidad (BRCA1 y BRCA2) tienen una mayor probabilidad de desarrollar cáncer de mama a lo largo de la vida. En las células normales, estos genes ayudan a prevenir el cáncer al producir proteínas que evitan el crecimiento anormal de las células. Aunque en algunas familias con mutaciones BRCA1 el riesgo de padecer cáncer de mama durante la vida es tan alto como 80%, en promedio este riesgo parece estar entre 55 y el 65%. Para las mutaciones BRCA2, el riesgo es menor, alrededor del 45%. Otros genes cuyas mutaciones están relacionadas con el cáncer de mama son el p53 (Síndrome de Lifraumeni), presente en el 17% de los 1. INTRODUCCIÓN 13 casos, PTEN (Síndrome de Cowden) y ATM (Síndrome ataxia-teleangiectasia). En el caso de los hombres, mutaciones en el gen RAD51B es un factor de riesgo para esta enfermedad. [23-24] ANTECEDENTES FAMILIARES DE CÁNCER DE MAMA: El riesgo de cáncer de mama es casi el doble en las mujeres cuyos familiares directos o consanguíneos tienen esta enfermedad, pudiendo triplicarse si tienen dos familiares de primer grado con cáncer de mama. Se desconoce el riesgo exacto, aunque se sabe que las mujeres con antecedentes familiares de cáncer de seno en el padre o un hermano también tienen un riesgo aumentado de padecer esta enfermedad. En total, alrededor del 15 por ciento de las mujeres con cáncer de mama tiene un familiar con esta enfermedad. Esto significa que la mayoría (más de 85 por ciento) de las mujeres que padecen cáncer de mama no tienen antecedentes familiares de esta enfermedad. [25] ANTECEDENTES PERSONALES DE CÁNCER DE MAMA. Una mujer con cáncer en una mama tiene un riesgo de tres a cuatro veces mayor de padecer un nuevo cáncer en la otra mama o en otra parte de la misma mama (segundo cáncer de mama primario). Esto es diferente a la recurrencia o regreso del primer cáncer, puesto que se trata de un nuevo cáncer primario sin relación alguna con el anterior. Este riesgo es de hasta el 2% en mujeres pre-menopáusicas y del 0,5% en mujeres postmenopáusicas. En caso del carcinoma in situ, el riesgo a 10 años de padecer cáncer contralateral es del 5%. [26] RAZA Y ORIGEN ÉTNICO: En general, las mujeres de raza blanca tienen una probabilidad ligeramente mayor de padecer cáncer de mama que las mujeres de raza negra, aunque éstas últimas tienen una mayor probabilidad de morir de este cáncer. Sin embargo, en las mujeres menores de 45 años de edad, el cáncer de mama es más común en las mujeres de raza negra. Las mujeres asiáticas, hispanas e indias americanas tienen un menor riesgo de padecer y morir de cáncer de mama. [2728] TEJIDO MAMARIO DENSO: Las mamas están formadas por tejido adiposo, tejido fibroso y tejido glandular. Se dice que una mujer tiene el tejido mamario denso cuando tiene más tejido glandular y fibroso y menos tejido adiposo. Las mujeres con senos densos, además de presentar unas mamografías menos precisas, tienen un mayor riesgo de cáncer de mama que las mujeres con senos menos densos. La densidad de las mamas puede verse afectada por factores como la edad, la condición menopáusica, el uso de medicamentos (como terapia hormonal en la menopausia), embarazo y genética. [29] FIG. 1.7 Tipos de tejido mamario en mamografía. De izquierda a derecha: Denso, Normal y Graso 1. INTRODUCCIÓN 14 1.1.3. DIAGNÓSTICO DIAGNÓSTICO ANATOMOPATOLÓGICO LA DETECCIÓN CLÍNICA Se basa en la inspección y palpación de la mama con el objeto de localizar cambios cutáneos (edema, eritema, piel de naranja, inflamación), cambios en la morfología de la mama y en su convexidad normal, cambios en el pezón (retracción, aplanamiento o inversión, desviación de su orientación normal, eritema, pérdida de elasticidad, persistencia de lesión eccematosa) o lesiones malignas (nódulos únicos, irregulares o estrellados, consistencia dura, fijos a piel o tejidos adyacentes, generalmente no dolorosos). PARA EL DIAGNÓSTICO ANATOMOPATOLÓGICO de las lesiones sospechosas tumorales de mama se llevan a cabo procedimientos de Punción Aspiración con Aguja Fina (PAAF) o Biopsias con Aguja Gruesa (BAG) con el fin de obtener cilindros de tejido tumoral sobre los que realizar las diferentes técnicas de inmunohistoquímica y evaluar así el estado de los receptores de estradiol/progesterona o la valoración de proteínas tumor-supresoras. EN ALGUNAS OCASIONES es necesario realizar una biopsia escisional. EL GÁNGLIO CENTINELA es el primer ganglio que recibe el drenaje linfático de un tumor primario y cuya localización se suele realizar mediante la inyección de isótopos radiactivos y posterior gammagrafía de control. LA BIOPSIA SELECTIVA DEL GÁNGLIO CENTINELA (BSGC) es una técnica poco invasiva que se realiza mediante una pequeña escisión a nivel axilar y permite el estudio de la adenopatía con el fin de estudiar si existe metástasis y, si es el caso, determinar el estadio en el que se encuentra el tumor con el fin de obtener un valor pronóstico de cáncer de mama. DIAGNÓSTICO RADIOLÓGICO MAMOGRAFÍAS LA MAMOGRAFÍA es el método más importante en el diagnóstico precoz del cáncer de mama. Al permitir la visualización del 90% de los tumores, su uso en los procesos de cribado está ampliamente extendido y ha conseguido reducir la mortalidad por cáncer de mama entre un 15-20% en mujeres de 40 a 75 años. [30] LA AMERICAN COLLEGE OF RADIOLOGY (ACR, 2003), propone la Breast Imaging and Reporting and Data Base System-BI-RADS, categorización diagnóstica en la que los hallazgos mamográficos se clasifican en 7 grupos (0 al 6), con inclusión de las recomendaciones de manejo. LAS MAMOGRAFIAS ESTÁN INDICADAS en todas las mujeres sintomáticas, aun estando embarazadas, con sospecha clínica de cáncer de mama así como en las mujeres asintomáticas incluidas en los programas de cribado para cáncer de mama. También están indicadas en las mujeres con lesiones clasificadas como probablemente benignas y en aquéllas con riesgo aumentado de cáncer. 1. INTRODUCCIÓN 15 LA PERIODICIDAD DE LAS MAMOGRAFÍAS se recomienda anual o bianual para las mujeres de entre 40-50 años y bianual para las que tengan una edad de entre 50-70 años. Las mamografías realizadas a partir de los 70 años de edad no muestran ningún beneficio probado. A B C FIG. 1.8 Imagen comparativa de una mamografía normal (A), con evidencia de un quiste benigno (B) y con masa tumoral (C). ECOGRAFÍAS MAMARIAS LAS ECOGRAFÍAS MAMARIAS no se recomiendan como técnica de screening y su uso se limita a la identificación de lesiones quísticas, visualización de nódulos axilares, biopsia y marcaje previo al tratamiento y a la evaluación de mamas densas en mujeres jóvenes. FIG. 1.9 Imagen comparativa una mamografía (Imagen superior) y una ecografía mamaria (imagen inferior). LA RESONANCIA NUCLEAR MAGNÉTICA LA RMN es una técnica de imagen con mayor sensibilidad aunque con menor especificidad que las mamografías. Su uso está indicado en los programas de cribado en aquéllas mujeres con riesgo acumulativo de cáncer de mama mayor del 20%, como es el caso de las que presentan mutaciones en el gen BRCA. FIG. 1.10 Imagen de una RMN de mama con evidencia de masa tumoral. LA GALACTOGRAFÍA O DUCTOGRAFÍA es una técnica que utiliza una baja dosis de rayos X para examinar las mamas, y un medio de contraste para obtener imágenes o galactogramas del interior de los conductos lácteos de las mamas. Esta técnica está indicada en los casos que la mujer presenta un derrame claro o con sangre del pezón de la mama acompañada de una mamografía normal. FIG. 1.11 Imagen de galactografía normal. 1. INTRODUCCIÓN 16 OTROS PROCEDIMIENTOS DE DIAGNÓSTICO SE SUELEN REALIZAR una vez se diagnostica la presencia o sospecha de una masa tumoral. ANÁLISIS BIOQUÍMICO DE SANGRE con estudio de hemograma, función hepática y renal, nivel de calcio, glucemia para comprobar el correcto funcionamiento de otros órganos, así como marcadores tumorales CEA, CA RADIOGRAFÍA DE TÓRAX, para comprobar si existe diseminación del tumor por la mama o hacia los pulmones. GAMMAGRAFÍA ÓSEA para investigar la +diseminación del tumor hacia los huesos. TOMOGRAFÍA COMPUTERIZADA O TAC cuando existe sintomatología respiratoria y en los estadios más avanzados, con el fin de detectar si existe diseminación del tumor hacia otros órganos como pulmón, hígado, huesos, ganglios linfáticos, etc. ECOGRAFÍA HEPÁTICA O TAC ABDOMINAL cuando existe alteración de la función hepática, sintomatología abdominal y en los casos más avanzados. LA TOMOGRAFÍA POR EMISIÓN DE POSITRONES O PET/TAC no es una técnica indicada para el diagnóstico del cáncer de mama aunque puede utilizarse para comprobar si el tumor se ha diseminado hacia otros órganos. 1.1.4. CLASIFICACIÓN HISTOPATOLÓGICA EL CÁNCER es un conjunto de enfermedades que se caracteriza por una proliferación anormal de células con capacidad para diseminarse e invadir diversos órganos y tejidos, siendo el cáncer de mama aquél que se desarrolla en el tejido mamario. DESDE EL TUMOR PRIMARIO las células cancerígenas se pueden desprender y diseminar a través de los tejidos, sistema linfático o la sangre, originando un tumor de mama metastásico. LA MAYORÍA DE LOS CÁNCERES DE MAMA son carcinomas de las células epiteliales procedentes de los ductos mamarios y de los lobulillos, siendo menos frecuentes los carcinomas procedentes del estroma que rodea a las glándulas mamarias, como el Tumor Filodes Benigno, el Cistosarcoma Filodes y los Angiosarcomas. 1. INTRODUCCIÓN 17 CLASIFICACIÓN DE LOS TUMORES MAMARIOS SEGÚN LA AFECTACIÓN HISTOPATOLÓGICA OMS 1. CARCINOMA DUCTAL IN SITU Se trata de un tumor no invasivo que comienza en el revestimiento de los conductos lactíferos. En este caso, las células malignas quedan confinadas en la membrana basal del ducto sin atravesarla. En la mayoría de los casos, estas lesiones no se convertirán en cáncer invasivo. 2. CARCINOMA LOBULILLAR IN SITU En este tipo de tumor, las células acinares, que son las que se encuentran en la unidad terminal lobulillar, presentan una proliferación homogénea, caracterizada por un núcleo redondeado y citoplasma escaso con membrana basal íntegra. Suele presentarse con mayor frecuencia en mujeres de entre 40 y 50 años y suele ser bilateral. 3. CARCINOMA DUCTAL INFILTRANTE Se trata del tumor invasivo más frecuente, suponiendo entre el 70-80% de los casos. La masa tumoral presenta un patrón de crecimiento no específico, con células malignas que infiltran el estroma en forma de cordones celulares. Hasta en un 80% de los casos, puede encontrarse un componente de carcinoma in situ, habitualmente de alto grado. 4. CARCINOMA LOBULILLAR INFILTRANTE Representa entre el 5-15% de los carcinomas invasivos, caracterizándose por un crecimiento circunferencial que suele ser multicéntrico y bilateral. Entre sus variantes, se incluyen los de tipo alveolar y tipo sólido, así como los de rasgo pleomórfico. Dentro de los subgrupos mixtos, el más importante es el carcinoma túbulo-lobulillar. 5. CARCINOMA TUBULAR Los cribados mamográficos han permitido un aumento de su diagnóstico de un 20% frente a un 2%. Este tumor se caracteriza por presentar un patrón de crecimiento en estructuras tubulares bien diferenciadas, soliendo asociarse a un buen pronóstico. 6. CARNINOMA CRIBIFORME Su incidencia es baja, en torno al 0,8-3,5%. Se caracteriza porque aunque su grado de diferenciación histológica es bajo, en todos los casos se expresan receptores hormonales. 7. CARCINOMA MEDULAR Representa entre el 1-10% de los tumores invasivos. Se considera como de buen pronóstico, a pesar de ser un tumor de alto grado de diferenciación histológica. 8. CARCINOMA MUCINOSO El carcinoma mucinoso o coloide supone el 1-2% de los casos y se suele dar en mujeres de mayor edad. 9. CARCINOMA METAPLÁSICO Suele ser un tumor agresivo, con alto índice de recaída y mortalidad, que se suele asociar con carcinomas ductales. 10. CARCINOMA PAPILAR Suponen un 1% de los casos, y suponen un elevado riesgo de afectación linfática y axilar. 11. CARCINOMA ADENOIDE QUÍSTICO Es un tumor idéntico al que se desarrolla en las glándulas salivares asociado a un buen pronóstico. 12. CARCINOMA INFLAMATORIO Es un subtipo especial de tumor dentro de los tumores invasivos, pero con un comportamiento clínico diferente, más agresivo y caracterizado por una frecuente afectación precoz de los ganglios linfáticos, edema, eritema dérmico y piel de naranja. 13. ENFERMEDAD DE PAGET Son cambios en el pezón en forma de lesión eccematosa persistente. Suele asociarse a un carcinoma introductor difuso debajo de la areola y un posible componente invasivo. 1. INTRODUCCIÓN 24 estrógenos, lo que explica una mayor *expresión del RP en mujeres pre menopáusicas. LA EXPRESIÓN DE LOS RP está regulada por los RE y se expresa en la gran mayoría de los carcinomas RE+. En función de la relación del estado de estos dos receptores hormonales, los factores predictivos son los siguientes:  RE+/RP+: Este perfil se da en el 65% de los casos y normalmente se corresponde con carcinomas bien o moderadamente diferenciados.  RE+/RP-: Se presenta en el 15% de los casos, y se corresponde con carcinomas moderados o pobremente diferenciados.  RE-/RP+: Se presenta el 5% de los casos, sobre todo en mujeres jóvenes en estadios avanzados. Su base biológica no está bien explicada.  RE-/RP-: Afecta al 15% de los casos, correspondiéndose con carcinomas pobremente diferenciados. Es más frecuente en mujeres jóvenes, afroamericanas y latinas. PRUEBA DEL ESTADO DEL RECEPTOR HER2/neu EXISTEN 4 MIEMBROS DE RECEPTORES del factor de crecimiento epidérmico: EGFRHER1, HER2, HER3 y HER4, que participan en los procesos de la célula que regulan la diferenciación, proliferación y supervivencia de la célula. HER2 ES LA QUE MAYOR IMPORTANCIA TIENE en cáncer de mama, codificada por el gen HER2/neu ya que se ha visto que se sobreexpresa en aproximadamente el 25% de las pacientes con éste tipo de cáncer, facilitando la tumorogénesis y metástasis mediante la activación de diversas vías de señalización intracelular. ACTUALMENTE EXISTE UNA TERAPIA específica para las pacientes con cáncer de mama HER2 positivo (HER2+): El Trastuzumab (Herceptin), que inhibe la formación de la forma activada de HER2 en la membrana celular, y el Lapatinib (Tyker), que actúa a nivel del dominio tirosina quinasa del receptor HER2. Ambos tratamientos han venido a mejorar el pronóstico y la recuperación de las pacientes con cáncer de mama HER+. LOS RP SE INHIBEN POR HER2. De hecho, aproximadamente el 25% de los tumores RPmuestran una expresión amplificada de HER2. EN BASE A LOS RESULTADOS de las pruebas del estado de los receptores hormonales (RE y RP) y del receptor HER2/neu, los tumores mamarios se clasifican en tres grupos: RE/RP+, HER+ y TRIPLE NEGATIVO. 1. INTRODUCCIÓN 25 CLASIFICACIÓN TUMORAL EN FUNCÍÓN DEL ESTADO DE LOS RECEPTORES RECEPTOR HORMONAL POSITIVO: RE+/RP+: Responden bien a la hormonoterapia o a los tratamientos antiestrógenos, que reducen la concentración de estrógeno en el cuerpo o impiden que el estrógeno se una a las células del cáncer de mama. HER2 POSITIVO: Responden bien a las terapias dirigidas al HER2, basadas en el uso de medicamentos que se unen a los receptores HER2 de las células tumorales, impidiendo que reciban las señales de crecimiento y, por tanto, desacelerando o interrumpiendo el crecimiento de las células. Así mismo, estos medicamentos pueden contribuir a la destrucción de las células tumorales marcadas por parte del sistema inmunitario. Hay que tener en cuenta que, con el tiempo, un tumor HER2+ puede volverse HER2-. TRIPLE NEGATIVO (RE, RP y HER2/neu NEGATIVOS): Alrededor del 10-20% de los casos de cáncer de mama arrojan resultados negativos para ambos receptores de hormonas y HER2 en el laboratorio. Este tipo de tumor es poco probable que responda a las hormonoterapias ni a los medicamentos que atacan a HER2. Este tipo de tumor debe tratarse con quimioterapia, radioterapia así como con otros nuevos tratamientos como los inhibidores de proteínas quinasas. En la actualidad, las investigaciones se están centrando en los tumores triple negativo con el fin de descubrir nuevas y mejores formas de tratamiento. Además, los tumores triple negativos suelen ser más agresivos que otros tipos de cáncer de mama y tienen mayor probabilidad de recurrencia y propagación fuera de la mama. 1. INTRODUCCIÓN 26 1.2. LAS PROTEÍNAS QUINASAS Y SU PAPEL EN LAS CÉLULAS TUMORALES EN LAS CÉLULAS NORMALES, determinadas señales externas pueden ser transmitidas y amplificadas a través del citoplasma hacia el núcleo de la célula, donde se regulan procesos vitales tales como el crecimiento celular, la diferenciación, supervivencia y la muerte programada o apoptosis. EN LAS CÉLULAS TUMORALES, muchos de los componentes de las vías de transducción de las señales se encuentran desregulados, lo que descontrola el crecimiento celular y contribuye a la aparición de una neoplasia. DISTINTOS TIPOS DE NEOPLASIA presentan alteraciones similares en estas vías de transducción de la señal, lo que convierte su estudio en un blanco muy prometedor para la intervención terapéutica. ENTRE LOS TRANSDUCTORES DE SEÑAL CONOCIDOS, el grupo de las proteínas quinasas (PK’s) es de los más estudiados y para el que durante los últimos años se han desarrollado una gran cantidad de fármacos específicos. ESTAS ENZIMAS¸ a partir de una molécula de ATP fosforilan de forma reversible a otras proteínas, llamadas diana en residuos de serina, treonina y/o tirosina, para lo cual, disponen en su estructura de tres sitios específicos; un sitio de unión al ATP, otro de catálisis de la unión del grupo fosfato y un sitio de unión del sustrato. ESTA FOSFORILACIÓN, reversible por acción de las proteínas fosfatasas, conlleva la adquisición de dos nuevas cargas negativas que alteran la conformación espacial de la proteína diana, lo que implica un cambio en su actividad (generalmente, una activación-desactivación). FIG. 1.12 Proceso de fosforilación. The Science Creative Quaterly. 2003 LA IMPORTANCIA DE LAS PROTEÍNAS QUINASAS a nivel metabólico se pone en evidencia si tenemos en cuenta que se estima que hasta el 30% del proteoma celular es susceptible de variar su actividad por acción de una proteína quinasa y que aproximadamente el 2% del genoma humano codifica proteínas quinasas. HASTA EL MOMENTO, y gracias al proyecto genoma humano, se han identificado al menos 520 proteína quinasas, en cuyo conjunto constituyen el denominado kinoma humano. FIG. 1.13 El kinoma humano. Science 298:1912. 1. INTRODUCCIÓN 27 1.2.1. CLASIFICACIÓN DE LAS PROTEÍNAS QUINASAS LAS TIROSINAS-QUINASAS Constituyen el grupo más numeroso de la familia de las proteínas quinasas y se suelen clasificar a su vez en dos grupos: TIROSINAS-QUINASAS QUE FUNCIONAN COMO RECEPTORES (RTKs): Son proteínas transmembrana con un dominio extracelular que puede interactuar con diferentes ligandos o señales, y un dominio intracelular con actividad tirosina quinasa. Tras la unión con el ligando, el dominio intracelular se autofosforila en residuos de tirosina, formando sitios de unión para proteínas con dominio SH2. TIROSINAS-QUINASAS NO-RECEPTORES (no-RTKs): Son proteínas intracelulares que funcionan por debajo de las RTK y forman parte activa de las rutas de transducción de la señal, resultando ésta en la amplificación y transmisión de la señal en el interior de la célula.PRINCIPALES PROTEÍNAS QUINASAS LA PROTEÍNA QUINASA A (PKA, del inglés proteína kinase A) es el miembro de la superfamilia de las serin-treonina-quinasas que mejor se conoce. Su actividad, dependiente del cAMP, se basa en la transferencia del fosfato terminal del ATP a residuos de serina o treonina de determinadas proteínas diana. La PKA interviene en diversas funciones celulares, entre las que se encuentran la regulación del metabolismo del glucógeno, glucosa y lípidos así como en la regulación del ciclo celular. Tras su activación, la PKA puede viajar al núcleo y fosforilar al CREB (del inglés cAMP Response Element-Binding). El CREB es un factor de transcripción que, tras unirse al CRE (cAMP Response Element) regula la transcripción de genes relacionados con el metabolismo y ciclo celular. Desde que se la relacionó con el inicio y progresión de muchos tumores, son consideradas como un buen objetivo molecular en la terapia contra el cáncer. LAS PROTEÍNA QUINASAS B (PKB) constituyen una familia de serina/treonina quinasas que en humanos están codificadas por los genes AKT1, AKT2 y AKT3. Estas proteínas juegan un importante papel en la inducción de la ruta de síntesis de proteínas, supervivencia celular e inhibición de procesos apoptóticos (AKT1) así como en la señalización celular de insulina y transporte de glucosa en mamíferos (AKT2). LA PROTEÍNA QUINASA C (PKC) son un grupo de proteínas que generalmente se activan a través de la ruta de transcripción de la fosfolipasa C, a partir del diacilglicerol (DAG) y/o Ca+2. Este grupo de proteínas, además de controlar diversas proteínas diana que regulan el crecimiento y la diferenciación celular, son las responsables SEGÚN SU LOCALIZACIÓN EN LA CÉLULA SEGÚN EL AMINOÁCIDO QUE FOSFORILAN EN LA PROTEÍNA DIANA TIROSINAS-QUINASAS (TKs) SERINA/TREONINA-QUINASAS (TKs) PKs DE MEMBRANA PKs CITOPLASMÁTICAS PKs NUCLEARES CLASIFICACIÓN DE LAS PROTEÍNAS QUINASAS 1. INTRODUCCIÓN 28 de transmitir las señales celulares que promueven la lipolisis. FIG. 1.14 Cascadas de proteínas quinasas. Nature Publishing Group – Nature Reviews LA PROTEÍNA QUINASA M (PKM) cataliza la transferencia de un grupo fosforilo desde el fosfoenol-piruvato (PEP) al ADP, generando ATP. Esta proteína también estimula la activación transcripcional mediada por POU5F-1 y el control de la glicolisis, jugando un papel de gran importancia en la proliferación y supervivencia de las células tumorales. LA PROTEÍNA QUINASA R (PKR) está codificada en humanos por el gen EIF2AK2 y está relacionada con la protección de la célula frente a infecciones virales. La unión con moléculas dsRNA (double-stranded RNA) con origen viral inducen su activación mediante autofosforilación. Una vez activa, fosforila al factor de iniciación de la traslación eucariótica, lo que conlleva la inhibición de los procesos de traducción del PLK-Lsis de proteínas virales. Mediante otros complejos mecanismos celulares, la PKR activa también es capaz de inducir la apoptosis celular y, por tanto, prevenir la dispersión viral. 1.2.2. LAS MAPK LAS MAPK (del inglés Mitogen-Activated Protein Kinases o Proteínas quinasas Activadas por Mitógenos) constituyen una familia de serina/treonina quinasas que pueden activarse por factores de crecimiento y estrés y controlan procesos implicados en el correcto desarrollo del organismo y su homeostasis, lo que las relaciona directamente con el cáncer y su terapia. LAS MAPK regulan procesos como la mitosis, cambios en los patrones de expresión génica, movimiento, metabolismo o muerte celular programada, permitiéndole a las células sobrevivir, proliferar, inducir apoptosis, etc. [51] LA FIDELIDAD de la transmisión de la señal viene determinada por la activación secuencial de distintas proteínas MAPK que, junto con la participación de proteínas adaptadoras específicas, organizan a las proteínas de la ruta permitiendo una activación coordinada en forma de cascada. LA DURACIÓN y la intensidad con la que se activa la ruta dependen de la compartimentalización subcelular de las moléculas implicadas en la ruta así como de la activación de fosfatasas que silencian la ruta cuando es necesario. LAS CASCADAS DE MAPK, que incluyen a tres subfamilias de proteínas MAPK (ERK, 1. INTRODUCCIÓN 29 SAPK/JNK y P38 MAPK), son un componente de gran importancia en la transducción de señales de células eucariotas, siendo responsables de la dar respuesta a distintos estímulos extracelulares, desde los receptores de membrana hacia un gran número de moléculas diana que, en relevo, integran respuestas intracelulares altamente específicas al estímulo inicial. [51] CADA SUB-FAMILIA DE MAPK está compuesta por un módulo de señalización de tres quinasas, evolutivamente muy conservadas, que se activan por fosforilación de forma secuencial: La MAPKKK (quinasa de la quinasa de la MAP quinasa) activa a la MAPKK (quinasa de la MAP quinasa), que a su vez activa a la MAPK (MAP quinasa). [53] FIG. 1.15. Cascada MAPK. Proc. Natl. Acad. Sci., 93, 1007810083. 1996 LAS MAPKKK no están asociadas directamente con el receptor de membrana, y necesitan activarse por otros elementos intermediarios que sí lo estén. Suelen activarse por fosforilación directa mediada por proteína quinasas C (PKC) o por interacción directa con proteínas de unión a GTP (como la familia Ras/Rho) en respuesta a estímulos extracelulares. Estos intermediarios fosforilan residuos localizados en los sitios catalíticos de la MAP diana y que pueden corresponder a dominios homólogos de pleckstrina (secuencias con estructuras típicas que facilitan la interacción proteína-proteína o proteína-lípido), secuencias ricas en prolina relacionadas con la unión a SH3, motivos de dedos de Zinc, cierres de leucina, secuencias de unión a proteínas G o los residuos de fosforilación Serina/Treonina. Una vez activadas, las MAPKKK pueden fosforilar los residuos catalíticos, también muy conservados, de Serina/Treonina de las MAPKK. LAS MAPKK activan al último miembro de la cascada, mediante fosforilación dual en residuos de Tirosina y Treonina localizados en la secuencia característica TxR (donde x representa cualquier residuo), localizados en el loop de activación del subdominio quinasa VIII. [53] LA MAPK, una vez activa puede fosforilar a sus dianas directamente en el motivo fosforeceptor que contiene residuos de serina o treonina adyacentes a prolina (Ser/Thr-Pro). La fosforilación del sustrato puede efectuarse tanto en el citoplasma como en el núcleo. [55] FIG. 1.16. Cascada MAPK. REB24(1):4-11, 2005. 1. INTRODUCCIÓN 30 1.2.3. IMPORTANCIA DE LAS PROTEÍNAS QUINASAS EN EL DESARROLLO TUMORAL LOS PROCESOS DE FOSFORILACIÓNDEFOSFORILACIÓN permiten el control regulatorio de la actividad de las proteínas mediante su “encendido” o “apagado” en respuesta a señales extracelulares que inducen procesos tales como el crecimiento y la diferenciación celular. UNA VEZ INICIADA LA SEÑAL en la membrana celular, las proteína-quinasas citoplasmáticas conducen la señal hasta el núcleo, pudiendo modular la transcripción génica y la actividad de otras proteínas que, como las ciclinas, controlan el ciclo celular. Las ciclinas forman complejos con otras proteínas quinasas dependientes de ciclinas (Cdks), dando lugar a su activación. DENTRO DE LAS SEÑALES EXTRACELULARES encontramos ejemplos como el receptor de crecimiento de fibroblastos (FGF), el receptor de crecimiento del endotelio vascular (VEGF), el receptor de crecimiento derivado de plaquetas (PDGF), el receptor de crecimiento de células epidérmicas (EGF) o el receptor de células madre (c-kit) entre otros. LOS RECEPTORES VEGF y PDGF (regulados por las PK´s) al favorecer la angiogénesis, son sumamente importantes durante el desarrollo del cáncer, ya que el aporte de nutrientes a partir de estos nuevos vasos sanguíneos le permiten crecer más allá de los 2mm. LAS PROTEÍNAS QUINASAS son reguladores clave de todos los aspectos relacionados con la aparición y desarrollo de los tumores, al controlar procesos tales como la angiogénesis, migración celular, apoptosis, etc. AL IGUAL QUE LAS MUTACIONES EN LOS FACTORES DE TRANSCRIPCIÓN, las mutaciones en los genes que codifican a las proteínas quinasas están directamente relacionadas con la oncogénesis. FIG. 1.17. Desregulación del ciclo celular por el virus HPV. Nature Publishing Group – Nature Reviews 1. INTRODUCCIÓN 31 LA DISFUNCIÓN DE LAS PROTEÍNAS QUINASAS ha sido demostrada en diversos tipos de cáncer humanos [36-38] y pueden tener distintas causas: LAS REORDENACIONES GENÉTICAS suelen originar una proteína híbrida donde, el dominio catalítico de la proteína quinasa está unido a otra proteína, como es el caso de la fusión de la tirosina quinasa c-Abl a la región breakpoint cluster BCR en la leucemia mieloide crónica. [39] LAS MUTACIONES suelen tener como resultado la autofibrilación, es decir, en la autoactivación en ausencia de una señal apropiada (factor de crecimiento) y por tanto, un mayor riesgo de recurrencia y metástasis, tal y como ocurre con el oncogen c-Kit en tumores gastrointestinales. [40-41] OTRA ALTERACIÓN que puede darse es la expresión aumentada de una proteína quinasa o del ligando para la tirosinaquinasa receptor (RTK), como es el caso de la expresión aberrante HER2/ErbB2/EGFR2 en el cáncer de mama. LAS ONCOPROTEÍNAS son factores de transcripción cuyo gen (oncogen) ha sufrido una mutación, de forma que permanecen continuamente activos o se sobreexpresan sin necesidad de señales externas. De este modo, al estimular sin control la síntesis de las proteínas implicadas en la regulación del ciclo celular, pueden inducir el crecimiento incontrolado de las células y, por tanto, dar lugar a un tumor. LA DESREGULACIÓN DE LAS PROTEÍNAS QUINASAS debido a la activación de oncogenes o la pérdida de genes supresores también se relaciona con la oncogénesis. Este es el caso de la mutación de la GTPasa Ras, que conlleva la desregulación de Raf. [42] SON NUMEROSOS los factores de transcripción cuya importancia ha sido demostrada en el cáncer, sin embargo, son pocos los oncogenes que se relacionan directamente con el cáncer de mama. Entre éstos, cabe destacar el gen FAM83B [35], el HER2/neu (Human Epidermal growth factor receptor 2) [43-45], el HCCR-1 (Human Cervical Cancer Receptor) [47-48] y Pokemon [49-50]. 1. INTRODUCCIÓN 32 1.3. LA PROTEÍNA CLUSTERINA LA PROTEÍNA CLUSTERINA (CLU) O APOLIPOPROTEÍNA J es una glicoproteína heterodimérica de 449 aminoácidos y 7580kDa unida por puente disulfuro cuya parte glicosilada, procedente del retículo endoplasmático, tiene cerca de un 30% de residuos N-Linked ricos en ácido siálico. SE TRATA DE UNA PROTEÍNA MULTIFUNCIONAL, altamente conservada en distintas especies, presentando homologías de entre el 70 y el 80%, especialmente en las secuencias CLE y AP1, encargadas de la regulación génica de su expresión. [56] CADA DÍMERO de la proteína madura procede de un polipéptido precursor común de 60kDa que, tras perder por proteólisis un péptido señal de 22 aminoácidos entre los residuos 227 y 228, genera las cadenas alfa y beta. Ambas cadenas se ensamblan de forma antiparalela para originar la molécula heterodimérica unida por 5 puentes disulfuro entre los centros ricos en cisteína. EN HUMANOS la proteína clusterina está codificada por el gen CLU situado en el cromosoma 8, brazo p12 y p21 (8p21.3p12), en la banda negativa entre los pares de bases 27510369 y 27528244. El gen CLU está ubicado en la hebra minus y se transcribe en sentido reverso (desde el centrómero hasta el p-telómero). FIG. 1.18 Modelo de la molécula de clusterina. BioScientifica Ltd. Copyright © 2010, Society for Endocrinology [63]. EL GEN CLU tiene diez exones en total y puede ser transcrito en dos isoformas de ARNm (NM-001831, 2859bp; y NM203339,2979bp) que resultan del uso alternativo de los dos primeros exones, 1 y 1’. Los otros exones, 2-9, están compartidos por ambas isoformas. Su expresión puede ser constitutiva o inducible, en función del tejido en el que se encuentre y de la función que realice. [56] FIG. 1.19 Estructura del gen de la clusterina y sus productos de transcripción. BioScientifica Ltd. Copyright © 2010, Society for Endocrinology [57]. LA FIGURA MUESTRA la estructura del gen CLU y sus productos de transcripción: (A) refleja el mapa del gen CLU en el cromosoma 8 y muestra la posición de los exones (bandas negras) e intrones (bandas blancas). (B) muestra la estructura de los exones de las variantes del ARNm del gen CLU. Las bandas oscuras representan los exones 1a de la isoforma 1: las grises intermedias representan al exón 1b de la isoforma 2 y las bandas gris claro representan al exón 21c de la isoforma 1136. 1. INTRODUCCIÓN 33 FIG. 1.20 Resultados de la transcripción del gen de la clusterina. www.atlasgeneticsoncology.org A PARTIR DEL GEN CLU pueden originarse tres isoformas de la proteína clusterina con diferentes localizaciones y funciones celulares: La ISOFORMA 1, clusterina nuclear o CLUn. La ISOFORMA 2, clusterina secretora o CLUs. La ISOFORMA 11036 o clusterina citoplasmática. La cadena del ARNm de la CLUn es ligeramente más larga y, mediante splice o empalme alternativo, da lugar a las otras dos isoformas. [58][64-65] EL RESULTADO DE LA TRANSCRIPCIÓN del gen de la clusterina tiene 3 sitios de inicio de la traducción (ATG) en banda. El proceso de traducción de la isoforma 1 aún se está estudiando, aunque parece que puede originar a dos isoformas nucleares, una con inicio de la traducción en la secuencia ATG del exón 3 (417 aminoácidos) y otra, comenzando en el sitio ATG del exón 1 (459 aminoácidos). LA ISOFORMA 2, que resulta en una proteína de 449 aminoácidos (NP-976084) y cuya transcripción comienza en el segundo ATG del exón 2, justo antes de la señal de localización para el retículo endoplasmático, es la que mejor se ha caracterizado. LA CLUSTERINA SECRETORA se produce a partir de la transcripción de la isoforma 2, originando una proteína precursora inicial presecretora de unos 60kDa. Ésta proteína es fuertemente glicosilada y posteriormente escindida en el retículo endoplasmático, para dar lugar a las cadenas α y β, que serán ensambladas mediante 5 puentes disulfuro en la proteína madura final de 75-80kDa. LA CLUSTERINA NUCLEAR también es traducida en un primer momento en forma de un precursor no glicosilado de unos 49kDa, antes de ser traslocada dentro del núcleo. Allí, Pajak et al. en 2007 puso en evidencia de la existencia de dos formas de clusterina nuclear, una de 50kDa y otra de 60kDa, que podrían resultar de la transducción desde el codón ATG presente en el exón 3 o en el exón 1, respectivamente. 1. INTRODUCCIÓN 40 1.4. TERAPIAS GÉNICAS EN EL TRATAMIENTO DEL CÁNCER 1.4.1. LA TERAPIA GÉNICA LA TERAPIA GÉNICA es la introducción de material exógeno, natural o recombinante, en sujetos humanos con la finalidad terapéutica de corregir deficiencias celulares expresadas en el nivel fenotípico o de dotar a las células de una nueva función. ESTA TRANSFERENCIA de material génico exógeno se puede realizar mediante el uso de vectores virales, como retrovirus, adenovirus, virus asociados a adenovirus y herpesvirus, o mediante el uso de vectores no virales. LOS MÉTODOS NO VIRALES incluyen métodos físicos, como la microinyección, electroporación y microproyectiles, y métodos químicos como la precipitación con fosfato de calcio, policationes, lípidos, liposomas y membranas derivadas de eritrocitos. LA TERAPIA GÉNICA puede llevarse a cabo tanto en células germinales como en células somáticas, mediante técnicas ex vivo o técnicas in vivo. LA TERÁPIA GÉNICA EX VIVO es la técnica más utilizada y se basa en la obtención de células del propio individuo para su cultivo y modificación genética y posterior reintroducción a través de vectores. LA TERAPIA GÉNICA IN VIVO se basa en la introducción de material genético exógeno directamente al órgano diana a través de vectores, también conocida como terapia génica in situ, o en la introducción del material genético por vía parenteral para su efecto sistémico. El uso de distintos vectores facilita la localización celular y su acción en determinados tipos celulares. LAS TÉCNICAS DE TERAPIA GÉNICA incluyen la inserción génica, donde no se modifica el gen defectuoso, la modificación génica, con la normalización del gen defectuoso, la cirugía génica, con la sustitución del gen defectuoso y, por último, el bloqueo de genes mediante el uso de ribocimas, tríplices y oligonucleótidos anti-sentido. EN LA ACTUALIDAD en la lucha contra el cáncer se hace necesario el desarrollo de nuevas terapias que mejoren el efecto de los citostáticos sobre las células tumorales y mejoren la supervivencia de los pacientes. 1.4.2. OLIGONUCLEÓTIDOS ANTISENTIDO (ODN) UN OLIGONUCLEÓTIDO ANTISENTIDO es una hebra de ADN monocatenario de corta longitud (entre 13-25 bases) con origen natural o artificial, que teóricamente puede hibridar con una única secuencia de ARNm diana presente en la célula, bloqueando su traducción. LA ESPECIFICIDAD de éste método se basa en la estimación de que cualquier secuencia de al menos 13 pases en el ARN o de 17 bases en el ADN está representada una sola vez dentro del genoma humano. ESTAS MOLÉCULAS se diseñan con el fin de modular la traducción de la información genética de las proteínas, principalmente de las relacionadas con la proliferación celular, apoptosis, angiogénesis y metástasis. ATENDIENDO A SU MECANISMO de silenciamiento de genes en la célula, los oligonucleótidos antisentido se pueden clasificarse en ARNasa H-Dependientes y de Bloqueo Estérico. [99] 1. INTRODUCCIÓN 41 TIPOS DE OLIGONUCLEÓTIDOS ANTISENTIDO OLIGONUCLEÓTIDOS ARNasa HDEPENDIENTES: Son los usados con mayor frecuencia en investigación clínica e inducen la degradación del ARNm diana mediante la activación de la enzima ARNasa H o ribonucleasa H, que hidroliza los complejos híbridos ARN/ADN. La ARNasa-H supone una maquinaria de destrucción de éste tipo de moléculas muy eficiente, consiguiendo resultados de silenciamiento o inhibición de la expresión de la proteína diana de entre el 80 y el 95%. ADEMÁS, estos oligonucleótidos son muy específicos, ya que pueden inhibir la expresión de una determinada proteína por medio de distintas secuencias diana que pueden estar muy separadas dentro de la misma región codificante. Aunque el mecanismo exacto de acción de la ARN-asa H no es bien conocido, se ha visto que homologías de 5 pares de bases son suficientes para inducir su actividad. OLIGONUCLEÓTIDOS DE BLOQUEO ESTÉRICO: Impiden físicamente la progresión de la maquinaria de traducción, interfiriendo en las fases de iniciación o elongación. Al contrario que los oligonucleótidos ARNasa-H dependientes, tienen como diana una secuencia muy específica de la región codificante del ADN (extremo 5’- o región de inicio de codificación AUG). La eficacia de silenciamiento de la expresión génica por medio de ésta técnica es menor que en el anterior caso ya que, en ocasiones, el ribosoma puede deshacerse de la hebra antisentido y continuar con la traducción. FIG. 1.26 Mecanismo de silenciamiento génico mediado por ODN. Idtdna 1. INTRODUCCIÓN 42 PARA CONSEGUIR EL EFECTO de silenciamiento del gen diana, es necesario que el oligonucleótido antisentido pueda atravesar la membrana celular de las células. A día de hoy, el mecanismo exacto por el que esto ocurre sigue bajo estudio. LA ENTRADA DEL OLIGONUCLEÓTIDO en la célula diana ocurre, al parecer, de forma mayoritaria mediante mecanismos de transporte activo como la endocitosis de adsorción y pinocitosis de fase fluida, procesos dependientes de la temperatura, la estructura, la concentración del oligonucleótido y la línea celular. Cuando la concentración del oligonucleótido es pequeña, puede ocurrir su internalización vía receptor de membrana. Cuando la concentración es alta, el receptor de membrana se satura y la entrada por pinocitosis cobra mayor importancia. [100102] PARA MEJORAR LA ENTRADA de estas moléculas en el interior de la célula así como su actividad espacial y temporal, se hace necesario el uso de transportadores. El uso conjunto de los oligonucleótidos con los vectores mejora, además, la estabilidad de éstos frente a la degradación por parte de las nucleasas al tiempo que permite disminuir las concentraciones de ensayo. LA PRIMERA GENERACIÓN de vectores de transporte está basada en el uso de liposomas, coloides vesiculares compuestos generalmente por una bicapa de fosfolípidos y colesterol que dejan en su interior un compartimento acuoso en el que el oligonucleótido puede encapsularse. Debido a su carga positiva, los liposomas tienen gran afinidad por las membranas celulares, cuya carga residual en condiciones fisiológicas es negativa. Como ejemplo de vector de transporte muy usado en los estudios de investigación se encuentra la LIPOFECTINA. EN LO ESTUDIOS IN VIVO no se hace necesario el uso de este tipo de vectores de transporte, ya que las células incorporan los oligonucleótidos desde el exterior de la célula hasta el citoplasma y posteriormente, hacia el núcleo sin ayuda de estas sustancias mediante mecanismos que aún no están bien definidos. EL DISEÑO DE ESTE TIPO DE MOLÉCULAS que puedan usarse en terapia humana es difícil, ya que hay que tener en cuenta varios factores que afectan a su estabilidad y actividad: Deben ser capaces de entrar en la célula diana, ser altamente afines a la secuencia complementaria de ARNm, deben estar modificados químicamente para evitar la digestión por las nucleasas, deben activar la ribonucleasa H que degrade selectivamente el complejo ODNRNA y, por supuesto, no pueden causar efectos segundarios peligrosos. [103] LA TERAPIA ANTISENTIDO se está empleando en la actualidad para bloquear la acción de diversas familias proteicas relacionadas con la proliferación celular y la progresión tumoral. [104] APOPTOSIS DEFECTUOSA: A1, MCL1, BCL-2, BXL-XL, BCL-W, IAPs, Clusterina, HSP70MITF CICLO CELULAR: Ciclina D, MYC, CDKs REGULACIÓN GÉNICA ABERRANTE: DNA Metiltransferasa, Histona deacetilasa FACTORES DE CRECIMIENTO: EGFR, PKA1, HER2/NEU, IGF1, IGFBP2, BRAF, PKCα, RAS/RAF ANGIOGÉNESIS: VEGF, VEGFR, bFGF INMORTAIDAD CELULAR: Telomerasa METÁSTASIS: MMPs TERAPIA ANTISENTIDO 1. INTRODUCCIÓN 43 1.4.3. siRNA - SMALL INTERFERING RNA LA INTERFERENCIA DEL ARN (RNAi) es un mecanismo que regula la expresión génica limitando la transcripción de los genes bien, suprimiendo su transcripción (silenciamiento transcripcional de genes o TGS, del inglés Transcriptional Gene Silencing) o bien, activando un proceso de degradación de una determinada secuencia de ARN (silenciamiento post-transcripcional de genes o PTGS, del inglés PostTranscriptional Gene Silencing). [105] LA FUNCIÓN NATURAL de la interferencia del ARN (RNAi) y parece ser la protección del genoma frente a la invasión por elementos foráneos tales como virus o transposones. De hecho, suponen una efectiva maquinaria que ha encontrado en distintos organismos, desde los hongos hasta los organismos vegetales y animales vertebrados e invertebrados. [105] RNAi También se ha asociado a procesos de regulación celular como el silenciado de transposones, mecanismos de defensa antiviral, regulación génica y modificación de cromosomas. [105] DADA LA ALTA ESPECIFICIDAD de este proceso para silenciar su ARNm diana y por tanto, para reducir o suprimir la expresión del gen correspondiente, ha propiciado su uso en investigación como un método fácil y rápido de silenciamiento de genes. CABE REMARCAR la naturaleza autocatalítica que propicia un efecto amplificado. Este efecto parece deberse a la acción de polimerasas ARN-dependientes o RdRP (del inglés RNA-dependent RNA polymerase), que sería la responsable de replicar los siRNA y mejorar la respuesta de defensa de la célula frente a la entrada de secuencias de ADN parásitas. [106-107] AUNQUE A DÍA DE HOY aún no está bien definido como se produce el mecanismo de interferencia por iRNA, se ha propuesto un MODELO DE INTERFERENCIA DE DOS PASOS que comprende una maquinaria común que incluye: dsRNA (del inglés Double Stranded RNA o ARN bicatenario) como activador del proceso, ARN diana degradado de un modo específico y la actuación de un grupo de proteínas muy conservadas. FIG. 1.27 Mecanismo de silenciamiento génico mediado por siRNA. Gene-quantification EL PRIMER PASO, O FASE DE INICIO DE LA RNAi, comienza con unión y degradación de una molécula larga de ds-RNA a fragmentos de ARN (siRNA). Este proceso, dependiente de ATP, es llevado a cabo por la enzima DICER, una nucleasa perteneciente a la familia de las ARNasa III con alta especificidad por las moléculas de dsRNA. EL PROCESO da como resultado una molécula de ARN bicatenario de entre 20 a 25 nucleótidos o siRNA, del inglés small interfering RNA (ARN de interferencia pequeño o ARNip) con 2 o 3 nucleótidos desemparejados en cada extremo 3’, por lo 1. INTRODUCCIÓN 44 que cada hebra de ARN tiene un grupo fosfato 5’ y un grupo hidroxilo 3’ libre.[92] LA ENZIMA DICER tiene cuatro dominios diferentes: un dominio helicasa aminoterminal, una parte central ARN-asa III, una zona de unión a dsRNA y un dominio PAZ de reconocimiento del sustrato altamente conservado. EN LA SEGUNDA FASE, estas moléculas de siRNA se unen al complejo de multinucleasa RISC, que en presencia de ATP, activan el reconocimiento de su ARNm homólogo a la hebra antisentido y su posterior corte aproximadamente en la mitad de la región dúplex (entre 11 y 12 nucleótidos desde el extremo 5’ de la hebra guía del siRNA). Estos fragmentos de ARNm seguramente son degradados más tarde por exoribonucleasas, ya que se ha visto que aunque el ARNm no se acumula en el citosol, sí es detectable en el núcleo. [109110] 1. INTRODUCCIÓN 45 1.5. NUEVAS TERAPIAS BASADAS EN LA INHIBICIÓN DE LA CLUSTERINA Y DE LAS PROTEÍNAS QUINASAS 1.5.1. INHIBIDORES DE LA CLUSTERINA LOS EFECTOS DE LA INHIBICIÓN DE CLU en el tratamiento de pacientes con cáncer de mama están en estudio y manifiestan resultados contradictorios. EXISTEN EVIDENCIAS que establecen que la inhibición de CLUs en los estadios más tardíos de la evolución del cáncer tienen efectos terapéuticos beneficiosos, ya que la clusterina puede conferir una mayor resistencia de las células tumorales a los tratamientos. Por el contrario, el bloqueo de la clusterina en los estadios más tempranos tiene un efecto contrario, representando un biomarcador que se correlaciona de forma positiva con una mayor supervivencia. [111] INVESTIGACIONES IN VITRO mostraron que el uso de oligonucleótidos anti-sentido (ODN) y siRNA específicos para el ARNm de la clusterina, sensibiliza a las células de cáncer de pulmón frente a la quimio y radioterapia, disminuyendo su potencial metastásico. EL CUSTIRSEN (OGX-011, OncoGeneX Pharmaceuticals, Inc., Bothell, WA. USA) es un oligonucleótido antisentido de segunda generación diseñado para bloquear el exón 1 del ARNm de la clusterina secretora CLUs, disminuyendo su expresión y mejorando los resultados clínicos en pacientes con cáncer prostático avanzado. En el año 2014 comenzó la fase III de los ensayos con indicios de su utilidad en otros tipos de cáncer diferentes al cáncer de próstata, como cáncer de mama, pulmón o cáncer de ovario. SIN EMBARGO, las investigaciones in vivo en pacientes con cáncer de pulmón aún no han revelado ningún resultado alentador. Los estudios llevados a cabo en el año 2009, demostraron como el Custirsen no evidencia ventajas cuando se asocia a la quimioterapia para el cáncer de mama. En 2014, en la fase III de los ensayos, se ha vuelto a comprobar que el tratamiento de pacientes con metástasis de cáncer prostático (CRPC) con Custirsen y quimioterapia basada en docetaxel/prednisona, no mejora la tasa de supervivencia en comparación con los pacientes tratados únicamente con quimioterapia, lo que hace necesario que se lleven a cabo más investigaciones en este campo. (Datos obtenidos de OncoGenex Pharmaceuticals Inc.) [106] LOS EFECTOS SECUNDARIOS de este tipo de tratamiento van desde los típicos gripales, hasta una disminución en el recuento de neutrófilos, fiebre, derrame pleural o disnea 1. INTRODUCCIÓN 46 1.5.2. INHIBIDORES DE LAS PROTEINAS QUINASAS ESTÁ DEMOSTRADO el papel de las MAPK en los fenómenos de resistencia a la quimio [88] y radioterapia [89] convencional, así como que las MAPK pueden estar implicadas en la respuesta a distintas terapias de cáncer, incluidas las basadas en inhibidores de tirosinas-quinasas. [115] ACTUALMENTE se está llevando a cabo un esfuerzo considerable en la investigación de estrategias que inhiban las MAPK que participan en la tumorogénesis. En la actualidad, lo métodos más efectivos están basados en el desarrollo de anticuerpos anti-receptores e inhibidores de bajo peso molecular. ANTICUERPOS ANTI-RECEPTORES LOS ANTICUERPOS se unen con el dominio extracelular del receptor HER2 (Human Epidermal Growth Factor Receptor), proteína que se sobreexpresa en un gran número de adenocarcinomas humanos y en el 20-25% de los casos de cáncer de mama, relacionándose con un tumor más agresivo y de peor pronóstico. ESTA UNIÓN BLOQUEA la unión del receptor con el factor de crecimiento epidérmico, inhibiéndose el crecimiento tumoral, revirtiéndose la resistencia a citoquinas y reduciéndose la producción del factor de crecimiento endotelial. ASÍ MISMO, la unión del anticuerpo favorece el inicio de una respuesta inmune citotóxica contra las células tumorales que sobreexpresan HER2, lo que incrementa el efecto citotóxico de la quimioterapia. COMO EJEMPLO de esta terapia está el Trastuzumab (Herceptin) que se usa en cáncer mamario, ovárico, prostático y pulmonar. [116] FIG. 1.28 Efecto celular de Trastuzumab, Pertuzumab y T-DM1. Antibody-Drug Conjugates and T-DM1. Onc Live. March 21, 2014 1. INTRODUCCIÓN 47 INHIBIDORES DE BAJO PESO MOLECULAR EL EFECTO CELULAR de los inhibidores de bajo peso molecular se basa en el bloqueo del sitio de unión del ATP, impidiendo la activación por fosforilación del sustrato de la proteína quinasa y, por tanto, deteniendo la transducción de la señal al núcleo. H89 (N-[2-(p-bromocinnamylamino)-ethyl]- 5-isoquinolinesulfonaime}, CAS Nº 12724385-0), es un potente inhibidor con acción selectiva frente a las PKA, proteína-quinasas dependientes de AMP cíclico (S6K1, MSK1, PK1, ROCKII, PKBα, MAPKAP-K1b), mediante inhibición competitiva por el ATP en su subunidad catalítica. Al inhibir a PKA, disminuye la fosforilación del residuo de treonina de Akt, impidiendo la asociación de PI3K con Ras y, por tanto, favoreciendo la actividad de la PI3K libre. La PI3K puede entonces activar al p38 mediante MAPK, incrementando la fosforilación de Akt e induciendo la apoptosis. H89 también puede inhibir a las proteína-quinasas activadas por estrés mitógeno (MSK). [117118] FIG 1.29 Efecto celular de H89 en la línea de adenocarcinoma humano Caco-2. American Journal of Physiology. Vol. 293. 2007 CHELERYTHRINE (C21H18NO4Cl, CAS Nº 3895-92-9), un alcaloide de benzofenantridina que actúa como un potente y selectivo inhibidor de la proteínaquinasa C, promoviendo la liberación de citocromo c por parte de la mitocondria e induciendo apoptosis. [119-120] GENISTEÍNA (4’,5,7-Trihydroxyisoflavone, CAS Nº 446-72-0) es un flavonoide que atenúa la proliferación celular mediada por factores de crecimiento y citoquinas. Su acción se basa en una potente y específica inhibición de la autofosforilación de la tirosina-quinasa del receptor del factor de crecimiento epidérmico (EGF). También parece desempeñar un papel en las rutas de traducción de las señales, como la inhibición de la ADN-topoisomerasa II, acción antiangiogénica y antioxidante. [121] FIG. 1.30 Efecto celular de la Genisteina. Clin. Cancer Res July 2002 vol.8 no.7 2369-2377 AL IGUAL que otros citotóxicos, los inhibidores de bajo peso molecular de proteínas quinasas, al inhibir de forma permanente elementos fundamentales para la supervivencia proliferación celular, inducen toxicidad también en las células normales. 1. INTRODUCCIÓN 48 LOS EFECTOS DE LA TOXICIDAD son mayores durante el uso de inhibidores que inhiben múltiples receptores en comparación con inhibidores más específicos y acción reducida en el número de receptores inhibidos. ENTRE LOS EFECTOS SECUNDARIOS más frecuentes se encuentran los vómitos, anorexia, diarrea, sangrado gastrointestinal y alteraciones dermatológicas (foliculitis facial, tricomegalia y ulceraciones). Otros efectos secundarios pueden incluir hepatotoxicidad espasmos musculares localizados, nefropatía con pérdida de proteínas y anemia hemolítica, lo que afecta muy negativamente a la calidad de vida de los pacientes. ACTUALMENTE cuando estos efectos secundarios se vuelven más severos, se prescribe la descontinuación temporal de la terapia así como una reducción de la dosis o frecuencia de administración del quimioterápico al reiniciar el tratamiento. 2. OBJETIVOS 49 OBJETIVOS 3. MATERIAL Y MÉTODOS 56 3.3. ENSAYOS DE INHIBICIÓN DE LA EXPRESIÓN DE CLUSTERINA 3.3.1. INHIBICIÓN DE LA EXPRESIÓN DE LA PROTEÍNA CLUSTERINA MEDIANTE OLIGONUCLEÓTIDOS ANTISENTIDO (ODN) MATERIALES MEDIO DE CULTIVO DMEM (Dulbecco’s Modified Eagle’s), de Sigma Chemical Co., St. Louis, MO (USA), libre de suero, y suplementado con lipofectina para potenciar la transferencia de los ODN. OLIGONUCLEÓTIDOS FOSFOROTIOATO (ODN) PRODUCIDOS PARA SU USO EN HUMANOS ODN-Clu y ODN_Control Roche Molecular Biochemical, Mannheim, Germany. Ambos ODN con una secuencia específica para el gen de la clusterina humana. Esta secuencia se corresponde con el sitio de inicio del exón II del gen CLU en humanos 5′-CAGCAGCAGAGTCTTCATCAT-3′. La secuencia control en este estudio fue 5′-CAGCAGCAGAGTATTTATCAT-3′. La Basic Local Aligment Search Tool de la base de datos de la National Center for Biotechnology Information mostró que no existían homologías entre los ODN utilizados con ningún otro gen humano conocido. TRANSPORTADOR Lipofectina (Life Technologies, Glasgow, UK) previamente mezclada a temperatura ambiente y en una concentración 1,5µg/ml durante 20 minutos con medio DMEM, para potenciar la transferencia de los ODN. MÉTODO PASO 1 Cultivo de las células en la dilución del transportador (medio DMEM y lipofectina 1,5µg/ml) junto con los ODN (10nM para el control y 100nM para clusterina). PASO 2 Incubación a 37ᵒC con agitación durante 4 horas PASO 3 Sustitución del medio con lipofectina y los ODN por medio estándar e incubación a 37ᵒC durante 24h. PASO 5 Lectura de resultados. Experiencias anteriores obtuvieron una máxima reducción en los niveles de ARNm empleando una concentración de ODN 100nM, lo que justifica la realización de las experiencias con esta concentración. [1] 3. MATERIAL Y MÉTODOS 57 3.3.2. INHIBICIÓN DE LA EXPRESIÓN DE LA PROTEÍNA CLUSTERINA MEDIANTE EL PLÁSMIDO PARA CLUSTERINA O siRNA MATERIALES MEDIO DE CULTIVO RPMI 1640 (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO (USA), suplementado con10% FBS. REACTIVO DE TRANSFERENCIA FuGene ®6 Transfection Reagent (Promega Biotech Iberica, Spain) siRNA DUPLEX sc-43688 (Santa Cruz Biotechnology, USA) siRNA CONTROL sc-37007 (Santa Cruz Biotechnology, USA) Para determinar la concentración óptima de siRNA necesaria, previamente se realizó el cultivo de las líneas celulares objeto del estudio con 50, 100 y 200nM, consiguiéndose la mayor mortalidad de las células con una concentración 200nM (comparado con el control):  Para la línea MDA los resultados fueron los siguientes: 68,5±1,7 vs 26±2,2 (p<0,001).  Para la línea MCF-7: 55,2±4,1 vs 40±4 (p=0,04). MÉTODO PASO 1 Añadir FuGene al medio DMEM e incubar a 37ᵒC en agitación durante 5 minutos. PASO 2 Añadir el siRNA al medio con FuGene. Incubar en agitación a 37ºC durante 15 minutos. PASO 3 Añadir la mezcla anterior a cada pocillo con las células de ensayo, de forma que la concentración final de siRNA sea 200nM. PASO 4 Incubación de las células de ensayo durante 48h, a 37º, con el fin de permitir la expresión del plásmido transferido. PASO 5 Lectura de resultados Para la preparación del control, se empleó un siRNA control con una secuencia que no conlleva la degradación específica de ningún RNAm celular conocido. 3. MATERIAL Y MÉTODOS 58 3.4. ENSAYOS COMBINADOS CON INHIBIDORES DE PROTEINAS QUINASA MATERIALES INHIBIDORES DE LA PROTEIN-QUINASA H89, Chelerythrine, Genisteina. Sigma Chemical Co. St. Louis, Mo, USA MEDIO DE CULTIVO Medio DMEM (Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium, Sigma Chemical Co. St. Louis, MO, USA) libre de suero TRANSPORTADOR ODN Lipofectina (Life Technologies, Glasgow, UK) previamente mezclada a temperatura ambiente y en una concentración 1,5µg/ml durante 20 minutos con medio DMEM. OLIGONUCLEÓTIDOS FOSFOROTIOATO (ODN) PRODUCIDOS PARA SU USO EN HUMANOS ODN-Clu, Roche Molecular Biochemical, Mannheim, Germany. ODN-Clu: 5’-GCACAGCAGGAGAATCTTCAT-3’, complementaria para la secuencia de clusterina. ODN-Clu Control: 5’-GCACAGCAGGAGGATATTCAT-3’ siRNA DUPLEX sc-43688 (Santa Cruz Biotechnology, USA) complejo que contiene juegos de siRNA diseñados para bloquear de 3 a 5 dianas en la expresión del gen CLU. siRNA CONTROL sc-37007 (Santa Cruz Biotechnology, USA) REACTIVO TRANSFERENCIA siRNA FuGene ®6 Transfection Reagent (Promega Biotech Iberica, Spain) 3. MATERIAL Y MÉTODOS 59 MÉTODO ENSAYO CON INHIBIDORES DE PROTEÍNA-QUINASA ENSAYO CON INHIBIDORES + ODN ENSAYO CON INHIBIDORES + siRNA PASO 1: Incubación de las líneas celulares del ensayo durante 24 horas a 37ᵒC en medio estándar DMEM junto con las concentraciones dadas de inhibidores: H89 (50nM), Chelerythrine (1,3µM), Genisteina (50µM). Cultivo de las células en medio DMEM, libre de suero, con 1,5µg/ml de lipofectina y las concentraciones correspondientes de ODN (100nM para el control y 100 nM para clusterina) durante 4 horas en una estufa a 37ᵒC con agitación constante. Cultivo de las células en medio DMEM, libre de suero, junto con el reactivo de transferencia FuGene y el siRNA 200nM durante 48 horas, a 37ᵒC. PASO 2: Para el control, las distintas líneas celulares se incubaron en medio de cultivo estándar, también durante 24 horas a 37ᵒC. Transcurrido el tiempo, se sustituye el medio con los ODN y la lipofectina por medio estándar y las diferentes dosis de inhibidores. Dosificación de las concentraciones dadas de inhibidores. PASO 3: Transcurrido el tiempo, se comprobó la viabilidad celular mediante contaje en la cámara de Neubauer. Incubación durante 24h a 37ᵒC. Incubación durante 24 horas, a 37ᵒC. Comprobación de la viabilidad celular mediante contaje en la cámara de Neubauer. Lectura de resultados mediante contaje en la cámara de Neubauer. Cada experiencia se repite 2 veces. Para poder determinar la dosis óptima de estos quimioterápicos, se realizaron ensayos con diferentes concentraciones y tiempos de incubación con el fin de elaborar una curva dosis-respuesta: INHIBIDOR CONCENTRACIÓN TIEMPOS LECTURA H89 50Nm 0, 8, 24, 48h Chelerythrine 1,3µM 0, 8, 24, 48h Genisteina 50µM 0, 8, 24, 48h 3. MATERIAL Y MÉTODOS 60 3.5. COMPROBACIÓN DE VIABILIDAD CELULAR MEDIANTE CONTAJE POR EXCLUSIÓN MATERIALES Cámara de Neubauer 50.000 células/pocillo. Azul tripán. MÉTODO 1. Mezcla de un alícuota de 10µl del cultivo de la experiencia correspondiente con 5µl de azul tripán, coloide que se introduce en el interior de las células muertas a través de las roturas en su membrana. 2. Introducción de la muestra por el extremo de la cámara de Neuebauer con ayuda de una micropipeta. 3. Colocación de la cámara de Neubauer en un microscopio de contraste de fases o de campo claro. Las células que aparecen de color azul son consideradas como no viables, y por exclusión, se consideran viables las células blancas. 3.5.1. LA CÁMARA DE NEUBAUER SE TRATA DE UNA GRUESA PLACA DE CRISTAL con forma de portaobjetos, de unos 30-70mm y unos 4mm de grosor utilizada para realizar contajes de células. PUEDE SER simple, con una porción central, donde se realiza el conteo, dividida en tres partes. O DOBLE, el modelo más común, con 2 zonas de conteo, una superior y otra inferior al eje longitudinal de la cámara. FIG. 3.1 Esquema de una cámara de Neubauer LA RETÍCULA COMPLETA mide 3mmx3mm de lado y está subdividida en 9 cuadrados de 1mm de lado cada uno. El cuadrado central se divide en 25 cuadrados medianos de 0,2mm de lado y cada uno de estos cuadrados se subdivide a su vez en 16 cuadrados pequeños. El cuadrado central está formado, por tanto, por 400 cuadrados pequeños. EL CUBREOBJETOS es un cuadrado de cristal de aproximadamente 22mm x 22mm que debe colocarse sobre la cámara de recuento de forma que cubra su parte central, delimitando un espacio entre la cámara y el cubreobjetos de 0,1mm. Para evitar que el cubreobjetos se levante y la distancia sea mayor a 0,1mm, se utilizan dos pinzas especiales que lo sujetan 3. MATERIAL Y MÉTODOS 61 3.6. COMPROBACIÓN DE LA INHIBICIÓN DE LA EXPRESIÓN DE LA CLUSTERINA 3.6.1. TÉCNICA RT-PCR (REVERSE TRANSCRIPTION-POLIMERASE CHAIN REACTION) Esta técnica permite cuantificar la expresión del ARNm MATERIALES Kit de extracción de ARN High Pure RNA Isolation, Roche Biochemical, Manheim, Alemania. Kit RT-PCR 1st Strand cDNA synthesis kit, Roche Biochemical, Manheim, Alemania. PRIMERS (Roche Biochemical Manheim, Alemania): CLUSTERINA: Cls: 5’ GGCGACGATGACCGGACTGT 3’ Clas: 5’ GGGACCGTCACAGTGATGGG 3’ β-ACTINA: cho15: 5’ GGCATCGTGATGGACTCCG 3’ cho 16: 5’ GCTGGAAGGTGGACAGCGA 3’ PRIMERA FASE: AISLAMIENTO DEL ARN TOTAL METODO DE LA GUANIDINA ISOTIOCIANATO Resuspensión de un cultivo con 107 células en 500µg de una solución de guanidina isotiocianato 4M. Extracción con fenol/cloroformo. Extracción de 400µg de la fase acuosa a un tubo estéril. Precipitación del ARN con 2,5µl de β mercaptoetanol 14,3M. Tratamiento con ADNsa I (Roche Biochemical, Mannheim, Alemania) durante 2 horas a 37ᵒC para eliminar cualquier posible resto de contaminación por DNA genómico. Almacenamiento de las muestras a -20ᵒC. SEGUNDA FASE: OBTENCIÓN DEL ADNc A 5µl del ARN aislado previamente, se le añaden 15µl de una solución máster elaborada con 2µl de tampón buffer 10x (100mM Tris, 500mM KCl, pH 8,3), 4µl de MgCl2 (25mM), 2µl de dNTPs (dATP, dGTP, dCTP, dTTP 10mM), 2µl de primer oligo-p(dT)15, 1µl de inhibidor de ARNasa (50 unidades/µl). Enrasado con agua estéril y libre de ARNasa. Adición de 0,6µl de la enzima AMV retrotranscriptasa. Termociclado de la muestra (Termociclador Perkin Elmer Cetus Model 9600) con los parámetros que se especifican a continuación: i. Desnaturalización durante 10 minutos a 25ᵒC. ii. Polimerización durante 60 minutos a 45ᵒC. iii. Parada de la polimerización durante 5 minutos a 95ᵒC. iv. Parada 5 minutos a 4ᵒC v. Almacenamiento a -20ᵒC. TERCERA FASE: PCR Por cada 5 µl de muestra, se preparan de 25µl de una solución máster compuesta por Tampón para PCR 10x, MgCl2 (25mM), dNTPs (dATP, dGTP, dCTP, dTTP 10 mM), agua estéril, 10pM de primer (β-actina o clusterina) y 0,5U de Taq Polimerasa (Roche). 0 20 40 60 80 100 10' 60' 5' 5' 3. MATERIAL Y MÉTODOS 62 La amplificación del ADN se realiza en un termociclador GeneAmp 2400 (Perkin Elmer, Foster City, CA, USA). AMPLIFICACIÓN CLUSTERINA: i. Desnaturalización 5 min. a 94ᵒC 30 ciclos: ii. Desnaturalización 30s a 94ᵒC iii. Unión del cebador 60s a 64ᵒC iv. Extensión 30s a 72ᵒC Elongación: v. Elongación 7min a 72ᵒC vi. Finalización 5min a 4ᵒC Almacenamiento -20ᵒC AMPLIFICACIÓN β-ACTINA: i. Desnaturalización 5 min. a 94ᵒC 25 ciclos: ii. Desnaturalización 30s a 94ᵒC iii. Unión del cebador 60s a 58ᵒC iv. Extensión 30s a 72ᵒC v. Elongación 7min a 72ᵒC vi. Finalización 5min a 4ᵒC Almacenamiento -20ᵒC 0 20 40 60 80 100 5' 30'' 1'30'' 7' 5' 0 20 40 60 80 100 5' 30'' 1'30'' 7' 5' 3. MATERIAL Y MÉTODOS 63 3.6.2. TÉCNICA ELECTROFORESIS EN GEL DE AGAROSA La malla porosa formada por la agarosa junto con la aplicación de una corriente eléctrica permite la separación de las moléculas según su tamaño y punto isoeléctrico. MATERIALES Agarosa 1,5% Tampón TBE (Tris Borato EDTA) 10x Bromuro de etidio 10mg/ml Tampón de carga (azul de bromofenol) 1x Marcador de peso molecular interno PM VI (Roche Molecular Biochemical, Manheim, Alemania) con rango de 154-2176pdb puesto que la proteína clusterina se obtiene a partir de un gen de 428 pares de bases, y la β-actina, a partir de 600). ELABORACIÓN DEL GEL Echar en un matraz 1,5g de agarosa, 7,5ml de tampón TBE 10x y enrasar con agua destilada hasta 75ml. Cubrir con papel de aluminio y calentar hasta la disolución de la agarosa. Dejar enfriar hasta que no queme al tacto, y añadir 15µl de bromuro de etidio. Agitar manualmente hasta homogeneizar la mezcla. Verter en el molde del gel con el peine de 8 pocillos. Dejar enfriar a temperatura ambiente. ELECTROFORESIS Colocar el gel solidificado en la cubeta de electroforesis Cubrir con tampón TBE 10x Mezclar 10µl del producto amplificado con 1µl de tampón de carga (azul de bromofenol). Cargar las muestras en la zona catódica del gel. Someter a una corriente eléctrica de 70V 19A durante 40 minutos. Visualización del patrón de migración con un transiluminador ultravioleta. 3. MATERIAL Y METODOS 64 3.6.3. TÉCNICA WESTERN BLOT Esta técnica permite la separación, identificación y la cuantificación relativa de la expresión de la proteína clusterina en los extractos celulares tras la realización de cada una de las experiencias. PRIMERA FASE Obtención de los EXTRACTOS CELULARES a partir de los cultivos. OBTENCIÓN EXTRACTOS CELULARES MATERIALES PBS (Phosphate buffered saline) frío (+2ᵒC). Tampón de lisis (0,5% SDS, 10mM EDTA, 50mM Tris-HCl, pH 8.0) frío (+2ᵒC). Mezcla de proteasa fresca (0,5mg/ml) para evitar la digestión por parte de las proteasas celulares. OBTENCIÓN DE LOS EXTRACTOS CELULARES Lavado de los cultivos celulares con PBS frío y agitación manual. Desechar el medio y volver a repetir. Volver a añadir PBS a la placa y rascar con una espátula estéril para favorecer la resuspensión de las células. Recoger el sobrenadante con una pipeta y colocar en tubos de microcentrífuga. Centrifugar a 1500rpm durante 5 minutos y desechar el sobrenadante. Añadir 180µl del tampón de lisis frío junto con 20µl de proteinasa K. Incubar durante 30 minutos en hielo. Clarificar el lisado mediante centrifugación durante 10 minutos a 12.000rpm a +4ᵒC. Transferir el sobrenadante conteniendo la mezcla de proteínas a un tubo limpio y estéril y almacenar en frío o congelado a -20ᵒC. PREPARACIÓN DE LA MUESTRA Extractos celulares Marcadores SEGUNDA FASE SEPARACIÓN de las proteínas en función de peso molecular y movilidad electroforética mediante electroforesis en gel de poliacrilamida. CONSIDERACIONES PREVIAS: El gel de poliacrilamida se forma por copolimerización de la acrilamida y la bis-acrilamida, en una reacción iniciada por la Tetrametilentiléndiamina (TEMED) y el amonio Persulfato (APS). Los extractos celulares se tratan con el detergente aniónico SDS para conseguir la desnaturalización parcial de las proteínas (sin estructura secundaria ni terciaria, pero sin afectar a los puentes di-sulfuro) con el fin de formar complejos desnaturalizados con una carga negativa más o menos homogénea a lo largo de la cadena polipetídica y proporcional a su masa. (Se estima que el SDS se una en una proporción aproximada de 1,4g SDS/g proteína). GEL POLIACRILAMIDA MATERIALES Agua desionizada Acrilamida/bisacrilamida 40% TBE 10x APS (Amonio Persulfato) 10% TEMED (Tetrametiletiléndiamina) Azul Coomassie R250 ELABORACIÓN DEL GEL SDS-POLIACRILAMIDA Para preparar 15ml del gel, se utilizan 7,5ml de acrilamida/bisacrilamida, 1,5ml de TBE 10x, 6ml de agua desionizada, 20 µl de APS y 40µl de TEMED. ELECTROFORESIS GEL POLIACRILAMIDA Cubrir el gel con el tampón de electroforesis. Someter a una corriente eléctrica de 200V. Tras comprobar que el tampón cubre totalmente el gel, se retira con cuidado el peine y se cargan las muestras (6µl del marcador, seguido por 15µl de las muestras en cada pocillo). Correr el gel hasta que el azul de bromofenol llegue casi al borde inferior del gel (40 minutos aproximadamente). 3. MATERIAL Y MÉTODOS 65 Sacar el gel y sumergirlo en fijador durante 15 minutos, en un recipiente tapado para evitar los vapores tóxicos del metanol, con agitación suave. De este modo se lava buena parte del SDS del gel, que podría interferir con la tinción. Teñir el gel durante 1h con azul Coomassie R250. TERCERA FASE: DETECCIÓN de la proteína clusterina mediante su unión al anticuerpo específico. Dado que los geles son frágiles y difíciles de manipular y que anticuerpos no son retenidos en éstos, se hace necesario transferir las proteínas a un soporte más adecuado. En este caso, se realizó una electrotransferencia a una membrana de nitrocelulosa, de forma que las proteínas migren hacia el polo positivo de la cámara bajo el efecto de un campo eléctrico. MATERIAL Esponja 6 hojas de papel de filtro Membrana nitrocelulosa Gel Poliacrilamida con las muestras Cámara de electrotransferencia Tampón de transferencia 25mM Tris, 190 mM Glicina, 20% Metanol MÉTODO Mojar el papel de filtro en el tampón de transferencia. El gel y la membrana se ponen en contacto directo y se fijan firmemente, a modo de sándwich, entre varias capas de papel absorbente y las esponjas de la cámara: Esponja – 3 Papeles de filtro – Membrana de nitrocelulosa – 3 Papeles de Filtro. Este complejo se sumerge en la cámara con el gel de transferencia, teniendo cuidado de colocar que la membrana de nitrocelulosa se encuentra entre el gel de poliacrilamida con las muestras y el electrodo positivo. Aplica la corriente eléctrica que permita la migración durante 4h. CUARTA FASE: INMUNODETECCIÓN. Permite la visualización de las proteínas adheridas a la membrana mediante su unión a anticuerpos marcados. MATERIALES Anticuerpo anti-CLU (Millipore, MA, USA) al 5% en BSA (Bovine Serum Albumina). Anticuerpo secundario conjugado con peroxidasa (Millipore, MA, USA) diluido al 5% en el tampón de bloqueo. Anticuerpo control anti-ACTINA (Millipore, MA, USA) al 5% en BSA (Bovine Serum Albumina). Tampón de bloqueo: Leche desnatada diluida al 5% en TBS. Tampón de lavado TBST (Tris-Buffered Saline + Tween 20). Reactivo ECL (Enhanced chemiluminescent). MÉTODO Bloqueo de la membrana mediante su incubación durante 1 hora a 4ᵒC. con el tampón de bloqueo. Incubación de la membrana con el anticuerpo primario y el tampón de bloqueo durante 12 horas a 4ᵒC en un agitador. Lavado tres veces con TBST durante cinco minutos en un agitador y a temperatura ambiente. Incubación de la membrana con el anticuerpo secundario conjugado y el tampón de bloqueo a temperatura ambiente durante 90 minutos. Lavado tres veces con TBST durante cinco minutos en agitador y a temperatura ambiente. Cubrir totalmente la membrana con el reactivo ECL e incubación durante 2 minutos. Visualización de resultados. Visualización 4. RESULTADOS 72 0 10 20 30 40 50 60 70 MCF-7 MDA 56 70 47 48 MORTALIDAD (%) TRATAMIENTO CON siRNA siRNA 48h CONTROL 4.4. EFECTO DEL TRATAMIENTO CON siRNA CLUSTERINA SOBRE LA SUPERVIVENCIA CELULAR ** ANÁLISIS ESTADÍSTICO TRATAMIENTO CONTROL siRNA (%) siRNA (%) P MCF-7 41±6 56±10 n.s. MDA 48±0 70±2 p<0,01 Los resultados representan la media, expresada en forma de porcentaje, de los recuentos obtenidos en tres experiencias diferentes ± el error estándar de la media. NIVEL DE SIFNIFICANCIA: *<0,05 **<0,01 ***<0,001 FIG. 4.5 Los resultados muestran que el tratamiento aislado con el siRNA específico para clusterina en una concentración 200nM no aumenta de forma significativa, comparación con el control, la muerte de las células de la línea MCF-7. En el caso de la línea MDA-MB-231, dicho efecto sí es significativo. 4. RESULTADOS 73 4.5. EFECTO DE LOS INHIBIDORES DE PROTEINAS QUINASAS SOBRE LA EXPRESIÓN LA CLUSTERINA FIG. 4.6 El ensayo de Western-Blot a diferentes tiempos (0, 8, 24 y 48h) tras el tratamiento con los inhibidores enzimáticos elegidos (Genisteina 100µM, H89 50nM y Chelerythrine 1,3 µM) evidencia que la forma secretora de la clusterina (CLU-s) se sobreexpresa de forma máxima tan pronto como tras 8h de tratamiento y que este efecto se mantiene después de las 48h en la línea MDA. 4. RESULTADOS 74 4.6. EFECTO DEL TRATAMIENTO CON OLIGONUCLEÓTIDOS ANTISENTIDO SOBRE LA EXPRESIÓN DE CLUSTERINA β-ACTINA CLUSTERINA MDA MCF-7 FIG. 4.7 La reacción de la retrotranscriptasa inversa muestra una fuerte disminución del ARNm de la clusterina tras el tratamiento con los ODN específicos de clusterina (ODNclu), en comparación con la expresión basal (C) y con el tratamiento con la secuencia control (ODNc). PM: Peso Molecular. 4. RESULTADOS 75 4.7. EFECTO DEL TRATAMIENTO CON siRNA SOBRE LA EXPRESIÓN DE CLUSTERINA C siRNAc siRNA-CLU CLUSTERINA β-ACTINA FIG. 4.8 El nivel de ARNm de clusterina tras su amplificación mediante la técnica de RT-PCR disminuye notablemente como muestra la electroforesis en gel de agarosa después del tratamiento con el siRNA específico para clusterina (siRNA-CLU), en comparación con las células cultivadas en medio normal (C) y el control positivo, β-actina. 4. RESULTADOS 76 0 5 10 15 20 25 30 35 40 ODN 48h + H-89 ODN 48h + CHE ODN 48h + GEN 36 28,5 29 29,2 26 27 MORTALIDAD (%) ENSAYO COMBINADO ODN CON INHIBIDORES DE PROTEÍNAS QUINASAS ODN-CLU ODN-CONTROL 4.8. EFECTO DE LOS TRATAMIENTOS COMBINADOS DE INHIBIDORES DE CLUSTERINA JUNTO CON INHIBIDORES DE PROTEÍNAS QUINASAS * ANÁLISIS ESTADÍSTICO MCF-7 ODN-Clu (%) TRATAMIENTO ODN-Control + PKI (%) ODN-Clu + PKI (%) P 19,7±11,9 H-89 50nM 29,2±1,9 36±1,4 P<0,05 CHE 1,3µM 26±1,5 28,5±1 N.S. GEN 50µM 27±1,8 29±2 N.S. Los resultados representan la media, expresada en forma de porcentaje, de los recuentos obtenidos en tres experiencias diferentes ± el error estándar de la media. El valor de p se refiere a los valores de las dos columnas previas. NIVEL DE SIFNIFICANCIA: *<0,05 **<0,01 ***<0,001 FIG. 4.9 Los resultados muestran como el único tratamiento combinado con ODN-CLU (100nM) que presenta un efecto significativo sobre la muerte de las células tumorales de la línea MCF-7, en comparación con el tratamiento con la secuencia control de ODN-CLU (100nM), es el realizado junto con el inhibidor de proteínas quinasas H-89. 4. RESULTADOS 77 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 ODN 48h + H-89 ODN 48h + CHE ODN 48h + GEN 41 47,5 49,7 20,5 30,7 27 MORTALIDAD (%) Título del eje ENSAYO COMBINADO ODN CON INHIBIDORES DE PROTEÍNAS QUINASAS ODN-CLU ODN-CONTROL * *** ** ANÁLISIS ESTADÍSTICO MDA LÍNEA CELULAR ODN-Clu (%) TRATAMIENTO ODN-Control + PKI (%) ODN-Clu + PKI (%) P MDA 12,1±11,8 H-89 20,5±2,1 41±1,8 p<0,01 CHE 30,7±1,7 47,3±7,5 p<0,05 GEN 27±1 49,7±4,3 p≤0,001 Los resultados representan la media, expresada en forma de porcentaje, de los recuentos obtenidos en tres experiencias diferentes ± el error estándar de la media. El valor de p se refiere a los valores de las dos columnas previas. NIVEL DE SIFNIFICANCIA: *<0,05 **<0,01 ***<0,001 FIG. 4.10 Los resultados muestran como el tratamiento previo de las células de la línea tumoral MDA-MB-231 con ODN-CLU (100nM) tiene un efecto significativo sobre la mortalidad, en comparación con el tratamiento con la secuencia control ODN (100nM) tanto para el inhibidor de proteínas quinasas H-89 50nM, como para el Chelerythrine 1,3µM y la Genisteina 50µM. 4. RESULTADOS 78 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 H89 CHE GEN 36 28,5 29 49,4 22,2 34,5 MORTALIDAD (%) EFECTO DEL PRETRATAMIENTO CON ODN SOBRE LA SENSIBILIDAD A IPK DE LA LÍNEA MCF-7 ODN-CLU+PKI PKI ** ANÁLISIS ESTADÍSTICO MCF-7 TRATAMIENTO ODN-CLU + INHIBIDOR (%) INHIBIDOR (%) P H-89 36±1,4 49,4±4 n.s. CHE 28,5±1 22,1±1,7 p<0,01 GEN 29±2 34,5±3,6 n.s. Los resultados representan la media, expresada en forma de porcentaje, de los recuentos obtenidos en tres experiencias diferentes ± el error estándar de la media. NIVEL DE SIFNIFICANCIA: *<0,05 **<0,01 ***<0,001 FIG. 4.11 Los resultados muestran como, en comparación con el tratamiento exclusivo con los inhibidores de proteínas quinasas H-89 (50nM), Chelerythrine (1,3µM) y Genisteina (50µM), el tratamiento previo de la línea tumoral MCF-7 con ODN-CLU (100nM) en combinación con el inhibidor Chelerythrine aumenta de forma significativa la mortalidad celular. 4. RESULTADOS 79 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 H89 CHE GEN 41 47,3 49,7 33 17,7 35,5 MORTALIDAD (%) EFECTO DEL PRETRATAMIENTO CON ODN SOBRE LA SENSIBILIDAD A IPK DE LA LÍNEA MDA ODN-CLU+PKI PKI ** * ** ANÁLISIS ESTADÍSTICO MDA TRATAMIENTO ODN-CLU + INHIBIDOR (%) INHIBIDOR (%) P H-89 41±1,8 33±2 p<0,01 CHE 47,3±7,5 17,7±3 p<0,01 GEN 49,7±4,3 35,5±4,5 p<0,05 Los resultados representan la media, expresada en forma de porcentaje, de los recuentos obtenidos en tres experiencias diferentes ± el error estándar de la media. NIVEL DE SIFNIFICANCIA: *<0,05 **<0,01 ***<0,001 FIG. 4.12 Los resultados muestran como, en comparación con el tratamiento exclusivo con los inhibidores de proteínas quinasas H-89 (50nM), Chelerythrine (1,3µM) y Genisteina (50µM), el tratamiento previo de las células de la línea tumoral MDA-MB-231 con ODN-CLU (100nM) aumenta de forma significativa la mortalidad. 4. RESULTADOS 80 0 10 20 30 40 50 60 H89 CHE GEN 57,2 32,7 51,2 49 22,1 34,5 MORTALIDAD (%) EFECTO DEL PRETRATAMIENTO CON siRNA SOBRE LA SENSIBILIDAD A IPK DE LA LÍNEA MCF-7 siRNA-CLU+PKI PKI ** * ** *** EFECTOS DEL TRATAMIENTO COMBINADO CON siRNA Clu Y PKI LÍNEA MCF-7 LÍNEA CELULAR TRATAMIENTO PKI (%) PKI+siRNA (%) P MCF-7 H-89 49,4±4 57,2±1,04 p<0,05 CHE 22,1±1,7 32,7±1 p<0,001 GEN 34,5±3,6 51,2±2,17 p<0,01 Los resultados representan la media, expresada en forma de porcentaje, de los recuentos obtenidos en tres experiencias diferentes ± el error estándar de la media. NIVEL DE SIFNIFICANCIA: *<0,05 **<0,01 ***<0,001 FIG. 4.13 Los resultados evidencian que el tratamiento previo de las células de la línea tumoral MCF-7 con siRNA para clusterina 200nM tiene un efecto citotóxico significativo en comparación con el tratamiento exclusivamente con los inhibidores H-89 50nM, Chelerythrine 1,3µM y Genisteina 50µM. 4. RESULTADOS 81 0 10 20 30 40 50 60 H89 CHE GEN 44,2 40 56,2 33 17,7 35,5 MORTALIDAD (%) EFECTO DEL PRETRATAMIENTO CON siRNA SOBRE LA SENSIBILIDAD A IPK DE LA LÍNEA MDA siRNA-CLU+PKI PKI ** ** *** EFECTOS DEL TRATAMIENTO COMBINADO CON siRNA Clu Y PKI LÍNEA MDA TRATAMIENTO PKI (%) PKI+siRNA (%) P H-89 33±2 44,2±2,6 p<0,01 CHE 17,7±3 40±2,6 p<0,001 GEN 35,5±4,5 56,25 p<0,01 Los resultados representan la media, expresada en forma de porcentaje, de los recuentos obtenidos en tres experiencias diferentes ± el error estándar de la media. NIVEL DE SIFNIFICANCIA: *<0,05 **<0,01 ***<0,001 FIG. 4.14 Los resultados evidencian que el tratamiento previo de las células de la línea tumoral MDA-MB-231 con siRNA para clusterina 200nM tiene un efecto citotóxico significativo en comparación con el tratamiento exclusivamente con los inhibidores H-89 50nM, Chelerythrine 1,3µM y Genisteina 50µM 5. DISCUSIÓN DE RESULTADOS 88 encarga de localizar el ARNm complementario y degradarlo de forma selectiva. LA HEBRA ANTISENTIDO unida a una ARNpolimerasa dependiente de ARN, puede aparearse con un ARNm complementario y servir de molde para la síntesis de una nueva molécula de dsRNA. DADO QUE ESTE PROCESO se realiza en repetidos ciclos de degradación específica, el resultado es el silenciamiento amplificado de la expresión del gen correspondiente, aunque en la mayoría de los casos, el silenciamiento no es completo, sino que el resultado es una reducción de la expresión o knock-down. EN LOS ÚLTIMOS AÑOS se han diseñado RNAi para aproximadamente el 99% de los genes que codifican para proteínas en humanos y ratón. OTRO MÉTODO EFICAZ para conseguir el silenciamiento de un determinado gen consiste en el uso de los ODN, cortas moléculas de ADN de una sola hebra que pueden hibridar con una única secuencia diana de ARNm, promoviendo su degradación por las ARNasas citoplasmáticas o incluso bloqueando la acción de los ribosomas, resultando en una inhibición de su traducción a proteínas. [26] TRATAMIENTO CON ODN LOS ENSAYOS REALIZADOS evidencian que, en comparación con los resultados del tratamiento con la secuencia ODN-control, el tratamiento con ODN específicos para clusterina inhibe de forma significativa la supervivencia de ambas líneas celulares, siendo ésta significancia mayor en el caso de la línea MDA-MB-231. TRATAMIENTO CON siRNA EN COMPARACIÓN con los resultados tras el tratamiento con la secuencia control, el tratamiento con siRNA específicos para clusterina, únicamente ejerce un efecto citotóxico significativo en la línea MDA-MB231. LA MAYOR SIGNIFICANCIA en la mortalidad de las células pertenecientes a la línea MDAMB-231, donde la clusterina se expresa de forma constitutiva, se debe al bloqueo específico de la expresión de ésta proteína y, por tanto, al bloqueo de su papel citoprotector. [27] EN EL CASO DE LA línea MCF-7, donde la de la expresión de la proteína clusterina es inducida, presentando una baja expresión de la misma en condiciones basales, este efecto citotóxico es mucho menos significativo. 5. DISCUSIÓN DE RESULTADOS 89 5.4. EFECTO DE INHIBIDORES DE PROTEINAS QUINASAS SOBRE LA EXPRESIÓN DE CLUSTERINA LA CLUSTERINA se sobreexpresa como respuesta inespecífica a diversas condiciones de estrés celular como quimioterapia citotóxica, radiación, exceso de radicales oxígeno libre o carencia de andrógenos o estrógenos, aumentando la resistencia de la célula y su supervivencia. [16] ESTA INVESTIGACIÓN pone en evidencia por primera vez que los inhibidores de proteínas quinasas Chelerythrine, H-89 y Genisteina producen la misma respuesta en las líneas tumorales de mama MDA-MB-231 y MCF-7, induciendo un significativo aumento en la expresión de la proteína clusterina. ESTOS DESCUBRIMIENTOS corroboran la hipótesis de que la clusterina secretora está implicada en la supervivencia celular dentro de un medio hostil y que representa una adquisición fenotípica que facilita la invasión local y la diseminación de las células tumorales, lo que puede explicar la resistencia observada en los estudios in vivo de las células tumorales de casos avanzados frente a las terapias basadas exclusivamente en quimioterapia convencional. [17-18] 5. DISCUSIÓN DE RESULTADOS 90 5.5. EFECTO DE LOS ODN Y siRNA SOBRE LA EXPRESIÓN DE CLUSTERINA LOS RESULTADOS CONSTATAN que según lo esperado, tanto el tratamiento con ODN-CLU como siRNA-CLU inhiben de forma eficiente la expresión de la proteína clusterina en ambas líneas celulares. 5. DISCUSIÓN DE RESULTADOS 91 5.6. EFECTO DE LOS TRATAMIENTOS PREVIOS CON ODN O siRNA EN LOS ÚLTIMOS AÑOS diferentes estudios han confirmado un significativo aumento de la mortalidad celular tras el tratamiento combinado de ODN para clusterina junto con otros tratamientos convencionales, como en el caso del aumento de la sensibilidad a la radioterapia en cáncer de próstata [28-29]; la reducción en el crecimiento tumoral y la regresión vascular responsable de la metástasis del carcinoma de pulmón [30] o el incremento de la apoptosis en líneas celulares de próstata y cáncer de vejiga con sobre-expresión de clusterina tras el tratamiento combinado de radioterapia y ODN anticlusterina. [31-32] LOS ESTUDIOS DE SILENCIAMIENTO con siRNA también están obteniendo resultados significativos para aumentar el efecto de la radioterapia, como en el caso de modelos celulares de cáncer de pulmón y mama. [3334] DURANTE ESTE ESTUDIO se ha investigado si la inhibición de la clusterina mediante el uso de ODN y siRNA puede aumentar la sensibilidad de las células tumorales de mama frente al tratamiento con inhibidores de proteínas quinasas así como las combinaciones con mayor efecto citotóxico. TRATAMIENTO PREVIO CON ODN-CLU LOS ENSAYOS REALIZADOS CON LA LÍNEA MDA-MB-231 confirman que el tratamiento previo con ODN-CLU aumenta de forma significativa la sensibilidad de las células a los inhibidores Chelerythrine, H-89 y Genisteina. Los resultados del ensayo realizado comparando el efecto del tratamiento previo con ODN-CLU u ODNcontrol corroboran que este efecto sensibilizante se debe al bloqueo específico de la proteína clusterina. ESTE HALLAZGO concuerda con los obtenidos en otras investigaciones, en las que se establece que el tratamiento combinado de oligonucleótidos antisentido o de siRNA anti-clusterina junto con quimioterápicos citotóxicos tiene un efecto antineoplásico más potente que el producido por el uso exclusivo de la quimioterapia.[35-38] POR OTRO LADO, los resultados del mismo ensayo realizado en las células de la línea MCF-7, donde la clusterina no se expresa tan activamente como en la línea MDA-MB231 no han sido tan significativos ya que, aunque el tratamiento exclusivamente con ODN-CLU sí afecta de forma significativa a la supervivencia celular, el tratamiento combinado con los inhibidores de proteínas quinasas muestra resultados no homogéneos. LA MAYOR SENSIBILIDAD de las células MDA-MB-231 puede explicarse por el hecho de que exprese la proteína clusterina de forma constitutiva. Así, al disminuir la expresión de ésta proteína y su acción citoprotectora, se aumenta la sensibilidad a los citotóxicos. TRATAMIENTO PREVIO CON siRNA LOS RESULTADOS hacen patente que el tratamiento previo de ambas líneas celulares con siRNA específicos para clusterina aumenta de forma significativa la sensibilidad de ambas líneas celulares frente a la acción citotóxica de los tres inhibidores de proteínas quinasas elegidos, Chelerythrine, H-89 y Genisteina. 5. DISCUSIÓN DE RESULTADOS 92 EL MAYOR EFECTO sensibilizante ocasionado por el pretratamiento con siRNA, y que afecta a ambas líneas celulares, puede deberse a su efecto de silenciamiento amplificado en comparación con el mecanismo de silenciamiento llevado a cabo por los ODN. LA SENSIBILIZACIÓN DE LAS CÉLULAS a la apoptosis debida a la inhibición específica de la clusterina, viene a confirmar que la clusterina tiene un efecto citoprotector en las células tumorales de mama así como el importante papel de la terapia anticlusterina en el tratamiento de los carcinomas que expresan principalmente dicha proteína, como en el caso de las células de la línea MDA-MB-231. [17,36-40] 6. CONCLUSIONES 93 CONCLUSIONES 6. CONCLUSIONES 94 6. CONCLUSIONES 6.1. CONCLUSIONES 6.1.1. EFECTO DE LOS INHIBIDORES DE PROTEÍNAS QUINASAS SOBRE LA SUPERVIVENCIA CELULAR La supervivencia y proliferación de las células tumorales de las líneas MDA-MB-231 y MCF-7 parece estar más relacionada con las tirosinas quinasas y proteínas quinasas A, siendo menos dependiente de las isoformas A y B de la proteína quinasa C. 6.1.2. EFECTO DE LOS INHIBIDORES DE LA CLUSTERINA SOBRE LA SUPERVIVENCIA CELULAR La proteína clusterina juega un papel citoprotector que aumenta la supervivencia de las células tumorales que expresan de forma constitutiva de esta proteína. 6.1.3. EFECTO DE LOS INHIBIDORES DE PROTEINA QUINASA SOBRE LA EXPRESIÓN DE CLUSTERINA La expresión de la proteína clusterina en las células tumorales de mama, tanto en las que expresan la misma de forma constitutiva como en las que no, se ve incrementada tras su exposición a agentes citotóxicos como una respuesta adaptativa a un medio hostil que mejora su supervivencia. 6.1.4. EFECTO DEL TRATAMIENTO PREVIO CON INHIBIDORES CLUSTERINA SOBRE LA SENSIBILIDAD A INHIBIDORES DE PROTEÍNAS QUINASAS La inhibición previa de la expresión de la proteína clusterina aumenta la sensibilidad de las células tumorales de mama frente a la acción citotóxica de los inhibidores de proteínas quinasas. El efecto sensibilizante provocado por los siRNA es mayor que el provocado por los ODN. 6.2. CONCLUSIÓN FINAL El tratamiento combinado de inhibidores de proteínas quinasas junto con inhibidores de clusterina puede suponer una estrategia novedosa y prometedora en casos de resistencia de las células tumorales de mama a las terapias convencionales. 7. BIBLIOGRAFÍA 95 BIBLIOGRAFÍA 7. BIBLIOGRAFÍIA 96 7. BIBLIOGRAFÍA 1. INTRODUCCIÓN 1. Coldiz GA, Baer HJ, Tamimi RM. Breast cancer. In: Schottenfeld D, Fraumeni JF, editors. Cancer Epidemiology and Prevention. 3rd Ed. New York. Oxford University Press, 2006. 2. Lambe M, Hsieh CC, Chan HW, et al. Parity, age at first and last birth ad risk of breast cáncer: a populatio-based study in Seden. Breast Cancer Research and Treatment 1996; 38(3):305-311. 3. Bernstein L. Epidemiology of endocrine-related risk factors for breast cáncer. Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia 2002; 7(1):3-15. 4. Russo J, Moral R, Balogh GA, Mailo D, Russo IH. 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