Ciclo reproductivo, cultivo en criadero y en el medio natural de la almeja babosa Venerupis pullastra (Montagu, 1803)
Full text
InstitutodeAcuicultura UNIVERSIDADDESANTIAGODECOMPOSTELA Cicloreproductivo,cultivoencriaderoy enelmedionaturaldelaalmejababosa Venerupispullastra(Montagu,1803) Memoriapresentadapor: AnaCerviñoOtero ParaoptaralgradodeDoctoraenBiología ISBN 978-84-9887-828-8 (edición digital PDF)
DoroteaMartínezPatiño,DoctoraenBiologíaeInvestigadoradelCentrode CultivosMariñosdeRibadeo‐CIMA(XuntadeGalicia) INFORMA: Queeltrabajotitulado“Cicloreproductivo,cultivoencriaderoyenelmedio naturaldelaalmejababosaVenerupispullastra(Montagu,1803)”presentadopor AnaCerviñoOteroparaoptaralTítulodeDoctoraenBiología,hasidorealizadobajo midirección.Considerándolofinalizado,autorizosupresentaciónydefensa. Ribadeo,a2demayode2011 VºB Fdo:Dra.DoroteaMartínezPatiñoFdo:Dra.MarcelinaAbadCaeiro DirectoradelaTesisDoctoralTutoradelaTesisDoctoral
Esta tesis ha sido desarrollada en el Centro de Cultivos Mariños de Ribadeo (CIMA) gracias a la beca para la formación de personal en temas de investigación marina, concedida por la Consellería do Mar de la Xunta de Galicia (DOG nº 173 de 08/09/2003), durante el período comprendido entre septiembre de 2003 y agosto de 2007. Desde diciembre de 2007 hasta noviembre de 2009, se finalizaron las experiencias en el marco del proyecto de investigación “ALBA: Mejora en la producción de almeja babosa Venerupis pullastra (Montagu, 1803)” (06RMA50801PR) concedido por la Dirección Xeral de Investigación, Desenvolvemento e Innovación de la Consellería de Economía e Industria de la Xunta de Galicia, en el cual disfruté de un contrato de trabajo. Parte de los resultados de esta tesis se han complementado con los trabajos realizados en el marco del proyecto de Investigación “Desarrollo de la tecnología de producción y cultivo de almejas”, de la Junta Nacional Asesora de Cultivos Marinos (JACUMAR).
A mi familia A todos mis compañeros de Ribadeo y en especial, con mucho cariño, a José María Almejas con patatas (Receta de Cambados) Ingredientes: patatas, almejas, aceite, pimentón y ajo. Se cuecen las patatas. Cuando estén casi cocidas se le quita media cantidad del agua que hayas utilizado para cocer. Se le añaden las almejas por encima y se dejan abrir a fuego lento con la tartera tapada. Tan pronto abran se retira del fuego y se ponen en una bandeja con un fondo de agua de cocción. Se prepara una ajada y se echa por encima. Se sirven acompañadas con un Albariño. Ana Otero
Cuando llegué a Ribadeo para realizar esta tesis no sabía lo que me esperaba... yo era siete años más joven e inexperta... y en el mundo todavía iban a suceder muchos acontecimientos. Mientras esta tesis iba cobrando vida, a lo largo de estos años, fui aprendiendo muchas cosas... Hacerunatesisesundesafíoalaconstancia,alingenio,alaperseverancia...Hacer unatesisespasarhorasyhorasensolitario...Hacerunatesisesdejaraunladomuchos proyectospersonales,losplanesacortoplazo,eltiempodedicadoaunamismayalos demás...Perograciasaestatesis,medicuentaquehabíamuchagentequeconfiabaenmí yqueconsuapoyoyayudaalgúndíalaibaafinalizar. Aunquelarealizacióndeestatesissehallevadoacabograciasalaayudade muchagente,measaltaunmuyhumanopatriotismoquemellevaaconcentrarlamayor partedelméritoenelaporteprofesionalypersonaldetodasycadaunadelaspersonas queintegranointegraronesteCentro.Trabajarjuntoaellos,hasidoparamíungran honoryvayadeantemanomiagradecimientoatodosellos. EnprimerlugarlequieroagradeceraDoroteaMartínez,demaneraespecialy sincera,elconstanteapoyoquemehaofrecidoalolargodetodosestosañosyla confianzamostradaenmíentodomomento.Tea,estoyaprendiendomuchodetienel ámbitoprofesional,peromásaúnenlopersonal.Dartelasgraciastambiénportutiempo, tucercanía,tusgrandescualidadeshumanasypornodejardelucharporesteCentroniun solodía. AJustayaSusana,osagradezcoenormementequeestuvieraisahísiemprequeos necesitéyquemeenseñaraispacientementedesdeelprimerdía...esosí,paralosácidos grasosnecesitaréotrossieteañosmás...comodijealgúndía...soistanexcelentes personascomoprofesionales.AFiznosóloleagradezcolaayudaprestadaconla embriologíaylaestadística,sinoquetambién,todalaayudaquemebrindódesdeque lleguédebecaria...ysiempreconunasonrisa...estoyseguradequellegarásmuylejos.A Conchitaporqueseleyótropecientasvecesestemanuscritoyporquenohubounsólodía enelquenomeanimaraparaqueloacabara...yporqueséquelohacíadecorazón.
3.3.5EVOLUCIÓNDELACOMPOSICIÓNBIOQUÍMICAENRELACIÓNCONELCICLOGAMETOGÉNICO73 3.3.6PARASITOLOGÍADELASPOBLACIONESDEESTUDIO81 ‐3.4DISCUSIÓN89 4.CAPÍTULOII:DESARROLLOEMBRIONARIOYLARVARIO99 ‐4.1INTRODUCCIÓN99 ‐4.2MATERIALYMÉTODOS102 4.2.1OBTENCIÓNDELDESOVEYTOMADEMUESTRAS102 4.2.2PROCESADOPARAELMICROSCOPIOELECTRÓNICODEBARRIDO102 4.2.3PROCESADOPARAELMICROSCOPIOELECTRÓNICODETRANSMISIÓN104 ‐4.3RESULTADOS106 4.3.1DESARROLLOEMBRIONARIOYLARVARIO106 ‐4.4DISCUSIÓN126 5.CAPÍTULOIII:CULTIVOENCRIADERO133 ‐5.1INTRODUCCIÓN133 ‐5.2MATERIALYMÉTODOS143 5.2.1CULTIVODEMICROALGAS143 5.2.2RECOGIDADEREPRODUCTORESYTRASLADO145 5.2.3MANTENIMIENTODELOSREPRODUCTORES147 5.2.4OBTENCIÓNDELAPUESTAYRECOGIDADEHUEVOS148 5.2.5CULTIVOLARVARIO148 5.2.6CULTIVODEPOSTLARVASYSEMILLA149 5.2.7PROCESADODELOSREPRODUCTORES150 5.2.8RECOGIDADEMUESTRASDELARVAS152 5.2.9RECOGIDADEMUESTRASDEPOSTLARVASYSEMILLA153 5.2.10TRATAMIENTOESTADÍSTICODELOSDATOS154 ‐5.3RESULTADOS155 5.3.1ESTABULACIÓNDEREPRODUCTORES155 5.3.2OBTENCIÓNDELAPUESTA156 5.3.3CULTIVOLARVARIO159 5.3.4CULTIVOPOSTLARVARIO162 5.3.5CULTIVODESEMILLA163 5.3.6OPTIMIZACIÓNDELCULTIVO.RELACIÓNDELACALIDADDELASPUESTASCONLOSREPRODUCTORES165 5.3.6.1ÍndicesdeCondicióndelosreproductores165 5.3.6.2Composiciónbioquímicadelosreproductores167 5.3.6.3Estadiogametogénicodelosreproductores170 5.3.6.4Crecimientodelosdesarrolloslarvariosypostlarvarios172 5.3.6.5Supervivenciadelosdesarrolloslarvariosypostlarvarios175 5.3.6.6Relaciónentrelosdesovesyloscultivos178 ‐5.4DISCUSIÓN181
6.CAPÍTULOIV:CULTIVOENELMEDIONATURAL191 ‐6.1INTRODUCCIÓN191 6.1.1SISTEMASDEPREENGORDEENINSTALACIONESENTIERRA193 6.1.2SISTEMASDEPREENGORDEENELMEDIONATURAL195 6.1.2.1Zonasdemarismas195 6.1.2.2Zonasintermareales197 6.1.2.3Preengordeensuspensión199 6.1.3ENGORDE205 ‐6.2MATERIALYMÉTODOS208 6.2.1OBTENCIÓNDELASEMILLA208 6.2.2DESCRIPCIÓNYUBICACIÓNDELOSSISTEMASDEPREENGORDE210 6.2.3PARÁMETROSDEESTUDIO212 6.2.3.1Épocadelañodeiniciodelcultivo212 6.2.3.2Densidad212 6.2.3.3Tallainicial213 6.2.4PARÁMETROSAMBIENTALES214 6.2.5CONTROLDECRECIMIENTOYMORTALIDAD215 6.2.6ESTUDIOHISTOLÓGICODELASEMILLA216 6.2.7CRECIMIENTODIFERENCIAL217 6.2.7.1Seguimientoenbatea217 6.2.7.2Seguimientoencriadero219 6.2.8BIOMETRÍAYCOMPOSICIÓNBIOQUÍMICADELASEMILLA219 6.2.9CULTIVOINTEGRAL:CRIADERO,PREENGORDEYENGORDE221 ‐6.3RESULTADOS223 6.3.1PREENGORDEENBATEAEINTERMAREAL223 6.3.1.1Épocasdecultivo223 6.3.1.2Efectodeladensidadenelcrecimiento228 6.3.1.3Tallainicialdepreengorde230 6.3.2CONTROLPATOLÓGICOYMADURACIÓNREPRODUCTIVADELASEMILLA233 6.3.2.1Controlpatológico233 6.3.2.2Maduraciónreproductiva234 6.3.3CRECIMIENTODIFERENCIAL236 6.3.3.1Seguimientoenbatea238 6.3.3.2Seguimientoencriadero241 6.3.4RELACIONESBIOMÉTRICASYCOMPOSICIÓNBIOQUÍMICADELASEMILLA243 6.3.4.1Relacionesbiométricas243 6.3.4.2Composiciónbioquímica245 6.3.5EXPERIENCIADECULTIVOINTEGRAL:CRIADERO,PREENGORDEYENGORDE247 ‐6.4DISCUSIÓN251 7.CONCLUSIONES265 8.BIBLIOGRAFÍA271
ABREVIATURAS
Abreviaturas abrAbril adCiliosadorales agoAgosto ANOVATestdeAnálisisdeVarianza blasBlastoporo CBCabeza ceCeloma chaCharnela CILCiliados CLCola cmCentímetro COCCCoccidios CONJConjuntivo CVCélulasvesiculares desvDesviaciónestándar dicDiciembre disDisoconcha E0Estadioderepososexual E1Estadiodeiniciodelagametogénesis E2Estadiodegametogénesisavanzada E3Estadiodemadurezypuesta E4Estadioderenovacióngonadal eneEnero EPIEpiteliointestinal ESPCEspermatocito ESPGEspermatogonia ESPZEspermatozoide febFebrero gGramo g.l.Gradosdelibertad GlucgonGlucógenoengónada GlucviscGlucógenoenvíscera GREGGregarina hHora HAPLHaplosporidio HEMHemocitos HvHuevo ICGÍndicedeCondiciónGonadal ICVÍndicedeCondiciónVisceral igcInvaginacióndelaglánduladelaconcha indIndividuo INTECMARInstitutoTecnolóxicoparaoControldoMedioMariño julJulio junJunio kgKilogramo lLitro
Abreviaturas LLongitud LdLarvad LipgonLípidosengónada LipviscLípidosenvíscera lnLogaritmoneperiano MMolar mMetro macrMacrómeros marMarzo mayMayo MEBMicroscopioelectrónicodebarrido METMicroscopioelectrónicodetransmisión METCMetacercarias mgMiligramo micrMicrómeros minMinuto mitMitocondrias mlMililitro mmMilímetro MortMortalidad MUSCMúsculo NNormal n.sNosignificativo NEMNematopsissp. nmNanómetro NONoroeste nºNúmero novNoviembre octOctubre OVCOvocito OVGOvogonia OVPEOvocitopedunculado OVROvocitoresidual pProbabilidad pIProdisoconchaI pIIProdisoconchaII paPenachoapical PARAVParavortexsp. PERPerkinsusolseni periPeriostraco PFParedfolicular PhPesohúmedo PlPostlarva postCiliospostorales ppaPenachopostanal preCiliospreorales
Abreviaturas PrgonProteínasengónada proPrototroca PrviscProteínasenvíscera PvLarvapediveliger R²Coeficientedeajuste RICKColoniasdetiporicketsiano RYNRynchodidasp. segSegundo sepSeptiembre SGSeriegametogénica SOSuroeste SPOEsporoquistedetrematodo STEINSteinhausiasp. SupSupervivencia T1CélulassecretorasT1 T3CélulassecretorasT3 telTelotroca TmToneladas TRITrichodinasp. TUBTúbulosdigestivos URASUrastomasp. vVolumen VACEspaciovacío valValvas velVelo χ2Chicuadrado € Euros µgMicrogramo µlMicrolitro ºCGradocentígrado
1.INTRODUCCIÓNGENERAL
1.Introduccióngeneral 8 Elsistemanerviosoloformantresparesdeganglios:cerebrales,pedalesy viscerales,unidosentresíporuncordónneuronal.Losganglioscerebralesestán localizadoscercadelabocayactúansobrelaregiónanterior,lospedalesenervanel pieylaparteposteriordelmanto,ylosvisceralesactúansobrelasbranquiasylamasa visceral. 1.4REPRODUCCIÓN Sereproducensexualmente,esunaespeciedioicasindimorfismosexual. Lagónadaestáconstituidaporgonoductosyfolículos,yenépocasdemadurez ocupaunagranpartedelamasavisceral.Losgonoductoscarecendecélulas musculares,porloquelaexpulsióndelosgametosserealizagraciasalmovimientode losciliosquetapizanestosconductos.Losfolículossonestructurasdeformaacinosay muyramificada;enellostienelugarlagametogénesis. Lagametogénesiscomienzacuandolasgonias(célulasgerminalesprimordiales) sediferencianenovogoniasoespermatogonias.Lasovogoniassondiploidesyse dividenrepetidamentepormitosisparaproducirovocitosprimarios.Éstosentranen meiosisdandolugaralosovocitosprevitelogénicos,adheridosalaparedinternadel folículo,loscualesiránaumentandoprogresivamentedetamañodebidoaque acumulansustanciasdereserva.Unavezqueelovocitoalcanzalamadurez,sesepara delapareddelfolículoymigrahaciaellumendondepermanecehastaeldesove.La segundadivisiónmeióticadelovocitotienelugarunavezseproducelafecundación. Lasespermatogoniasdiploidessedividenrepetidamentepormitosispara originarlosespermatocitosprimariosdemenortamañoquelasespermatogonias. Estosespermatocitossufrenlaprimeradivisiónmeióticadandolugaralos espermatocitossecundarios.Éstos,asuvez,entranrápidamenteenlasegunda divisiónmeióticaformandolasespermátidas.Losespermatozoidesseformanapartir
1.Introduccióngeneral 9 FIGURA1.4:Ciclovitalde V .pullastra. delasespermátidasmedianteunaseriedereorganizacionescelulares,disponiéndose deformaradialhaciaellumendelfolículo. Lagametogénesisesunprocesoquerequieregrancantidaddeenergía,porlo quelamovilizacióndelosnutrientesdelalimentoingeridohacialagónadaesesencial paraeldesarrollodelosgametos.Enlamayoríadelosbivalvos,estedesarrollono dependedirectamentedelalimentoingerido,sinoquepuedeestarsubordinadoalas reservasalmacenadasoaambosfactores. 1.5CICLOVITAL Lafecundaciónesexternayeldesarrollodelalarvaesindirecto,pasandopor variasfaseslarvariasdevidaplanctónicahastaquesufrenlametamorfosis,sevan haciaelfondoycomienzanlavidabentónica(Figura1.4). Losespermatozoidesyovocitossonexpulsadosalexteriorporelsifón exhalante.Elespermatozoidepenetraenelovocito,produciéndosepocodespuésla
1.Introduccióngeneral 10 membranadefertilizaciónqueimpedirálapenetracióndemásespermatozoides.Tras lafertilizacióncomienzaeldesarrolloembrionariohastalaaparicióndelaprimera formalarvaria.Todosloscambiosqueocurrenduranteeldesarrolloembrionariohasta laformacióndelosprimerosestadioslarvarios,tienenlugar,graciasalasreservas almacenadasenelovocito,durantelagametogénesis. Lasegmentacióndelosovocitosesespiral.Trasvariasdivisionesseformala blástulaciliada,queporepiboliadarálugaralagástrulatambiénciliada.Éstase transformaráenlalarvatrocóforaprovistadeunacoronadeciliosyunpenachoapical. Enestafase,laglánduladelaconchasecretalaprimeraconchalarvariao prodisoconchaIqueacabaráenvolviendolalarvatrocóforaparadarlugaralalarvaD. LalarvaDesplanctónica,comienzaaalimentarse,tieneelvelototalmente desarrolladoysecaracterizaportenerlacharnelarecta.Duranteestaetapacomienza aproducirseunconsiderableaumentodetamaño,loqueimplicauncrecimientodela concha,laprodisoconchaII,enlacualseobservanlaslíneasdecrecimiento. Posteriormentelacharnelasecurvaporlaformacióndelumbo,dandolugaralalarva umbonada. Lalarvacomienzaadesarrollarelpiemientrasquepersistetodavíaelvelo,esla larvapediveliger.Enestemomentolalarvasefijaalsubstratopasandodeunavida planctónicaaunmododevidabentónico. Durantelametamorfosiselvelosereabsorbe,perdiendolafunciónde captacióndealimentoydesplazamiento,comenzandoadesarrollarselosfilamentos branquiales.Estapostlarvacomienzaaadoptarlaformadefinitivadeadulto,crecea partirdelosnutrientesdelmedioydesarrollalaconchaadultaodisoconcha.
1.Introduccióngeneral 11 1.6PRODUCCIÓN LaLey11/2008,de3dediciembredePescadeGalicia,modificadaporlaLey 6/2009,de11dediciembre,defineensuartículo27elmarisqueocomo«elejercicio delaactividadextractiva,desarrolladaapieodesdeembarcación,enlazonamarítima omarítimo‐terrestredirigidademodoexclusivoyconartesselectivasyespecíficasala capturadeunaovariasespeciesdemoluscos,crustáceos,tunicados,equinodermosy otrosinvertebradosmarinos,confinesdecomercialización». EnestamismaLeyseclasificanlaszonasdeexplotaciónmarisqueraen: ‐Zonasdelibremarisqueo Bancosnaturalescuyaexplotaciónnoestásujetaaunaautorizacióno concesiónadministrativa. ‐Zonasdeautorizaciónmarisquera Bancosnaturalesounaporcióndeelloscuyaexplotaciónseotorgaenuso privativonormalatítuloprecarioparasuexplotaciónenrégimende exclusividad. ‐Zonasdeconcesiónmarisquera Bancosnaturalesounaporcióndeelloscuyaexplotaciónseotorgaenuso privativoanormalqueimpliqueelderechoaocupación,usoogozoenrégimen temporal. Laextraccióndemoluscosenlaszonasdelibremarisqueoyenlas autorizacionesmarisquerasesrealizadaporlasagrupacionesdemariscadores.Su facetamássencillayartesanal,quetienecomoobjetivolacapturademoluscosenla playayserealizasinembarcación,esloqueseconocecomomarisqueoapie.Esta actividadtieneunagranimportanciasocialenGalicia,yaquedeelladependenlos ingresosdemásde4.000personas,siendomásde3.500mujeres.Elmarisqueoaflote
1.Introduccióngeneral 12 esdesempeñadoprincipalmenteporhombres,agrupandounas3.500personasycerca de3.000embarcaciones(deCoo,2008). LasprincipalesespeciesdebivalvosexplotadasporlosmariscadoresenGalicia son:laalmejababosa(Venerupispullastra),laalmejafina(Ruditapesdecussatus),la almejajaponesa(Ruditapesphilippinarum),laalmejarubia(Venerupisrhomboides)yel berberecho(Cerastodermaedule). Losparquesdecultivo,concesionesadministrativasaentidadesprivadas situadasenlazonamarítimo‐terrestre,estándedicadosprincipalmentealcultivode almejafina,babosayjaponesa.EnGaliciaexisten1.134parquesdecultivo,1.000de ellossituadosenCarril. Enlaevoluciónanualdelascapturas(Figura1.5),seobservaapartirdelaño 2005undescensoenlaproduccióndealmejababosayalmejafina,yunaumentoenla almejajaponesayrubia.Apartirdeeseañolaalmejababosapasadeserlaprimeraen toneladasdecapturasaserlasegunda,despuésdelaalmejajaponesa. FIGURA1.5:Evolucióndelascapturas(enTm)dealmejababosa,fina,japonesayrubiaenlos últimos10 años. 0 500 1000 1500 2000 2500 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010 Producción(Tm) Años Babosa Fina Rubia Japonesa
1.Introduccióngeneral 13 Enlosúltimoscincoañosseextrajeron5.140toneladasdealmejababosa.La RíaconmayorproducciónfueladeArousaconel59%,seguidadelasRíasdeNoia (15%),Ferrol(12%)yVigo(9%).EntrelasCofradíasconmayorvolumendeextracción destacaAIlladeArousaporhaberregistradoenlosúltimos5añoscercadel17%dela extraccióndetodaGalicia,seguidadelaCofradíadeNoia,conel13,5%. Elpreciomediodelaalmejababosaduranteestosúltimosañosvarióentre12y 15€/kg,laalmejafinaoscilóentre20y30€/kg,ylasalmejasrubiayjaponesase mantuvieronentre7y10€/kg. Debidoaladiferenciadepreciodeprimeraventaenlonjaentrelasdistintas almejas,lacotizaciónglobaldelaalmejababosalesigueenimportanciaalaalmeja fina,yaambaslesiguenlasotrasespeciesdealmejas.Durantelosúltimos10añosla cotizaciónanualmediadelaalmejababosafueentornoa15millonesdeeurosyla finade16millonesdeeuros(Figura1.6).Laalmejajaponesasubióprogresivamente de4millonesdeeurosenelaño2001a18millonesenel2008,bajandohasta12 millonesenel2010.Laalmejarubiapasó,enesemismoperíododetiempo,de3a5 millonesdeeuros. FIGURA1.6:Cotizaciónglobal(enmillonesde€)dealmejababosa,fina,japonesayrubia enlosúltimos10años. 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010 Importe(millonesde€) Años Babosa Fina Rubia Japonesa
1.Introduccióngeneral 14 1.7PLANESDEEXPLOTACIÓNYEXTRACCIÓN ElDecreto423/1993,de17dediciembre,porelqueserefundelanormativa vigenteenmateriademarisqueo,extraccióndealgasycultivosmarinos,modificado porelDecreto237/2002,de11dejulio,establecequelaextraccióndemariscoyla recoleccióndealgasestaránsujetasalPlanGeneraldeExplotaciónMarisquera, aprobadoconcarácteranualporlaConselleríadePesca,MarisqueoeAcuicultura,hoy ConselleríadoMar. LosPlanesGeneralesdeExplotaciónsonunconjuntodenormasy orientaciones,decarácteranual,destinadasaregularyprogramardichaextraccióny recolecciónquesólopodráserejercidaporpersonasyembarcacionesconpermisode explotación.EstosplanessonaprobadosporordendelaConselleríadoMar,después deconsultarconlasentidadesrepresentativasdelsector. EnestosPlanesseintegran: ‐Planesdeexplotaciónparaautorizacionesmarisqueras ElaboradosporsusentidadestitularesypresentadosenlasDelegaciones TerritorialesdelaConselleríadoMarajustándosealsiguienteesquema: númerodemariscadoresyembarcacionespropuesto;períodosyzonasde explotación;númerodedíasprevistodeactividad;normasdecomercialización, vigilanciaytopedecapturasporespecies,pormariscadorypordía. ‐Normasdeexplotaciónparazonasdelibremarisqueo ElaboradasdeoficioporlaConselleríadoMardespuésdeconsultarconlos representantesdelsectorylasasistenciastécnicas.Enestecaso,puedela DirecciónXeraldeRecursosMariños,modificarlasespecies,períodosyzonas deextracciónestablecidaenlasnormas.
1.Introduccióngeneral 15 ‐Planesespecíficosdeexplotaciónparazonasdelibremarisqueo Elaboradasporlascofradíasoentidadesasociativasdelsectorajustándosealos plazosyesquemadelosPlanesdeExplotación. Laextraccióndealmejababosaseregulasegúnelartículo114delDecreto 424/93enelcualsedefinenlasartesdecapturademoluscosbivalvos.Entrelos utilizadosactualmenteenGaliciaparalacapturadealmejababosasedistinguendos modalidadesenfuncióndelalocalizacióndelosbancosnaturales(Figura1.7): a)Apie:Serealizaenbancosnaturalesalosquesetieneaccesoapieenlas bajamares.EnGalicialasartesmásutilizadasparalaextraccióndealmejason:el “sacho”,el“angazo”yel“fouciño”.Sonartessencillasqueprovienendelinterior, siendotradicionalmenteusadasenlaslaboresdecampo. b)Aflote:Seefectúaenlosbancosqueestánsiempresumergidos,porloquese realizadesdeembarcación.Paralacapturadealmejababosaenlosbancos submarealesseutilizael“rastro”yel“raño”.Sonartesdearrastreutilizadasenaguas pocoprofundas,enlasqueestáprohibidousaraparejosmecánicosparaelarrastre sobreelfondo,nitampocopuedenserremolcadasporlaembarcación,porloquesu usoesestrictamentemanual. FIGURA1.7:Extraccióndealmejababosa enlaRíadeArousa. A:apie. B:aflotedesdeembarcación. AB
2. OBJETIVOS
3.Cicloreproductivo 24 expulsadosalmedio.Dentrodeunmismoindividuosepuedendarcasosdeasincronía folicular,coexistiendodentrodelagónadafolículosendistintosestadiosdedesarrollo; Villalbaetal.(1993a)encontraronenlaalmejababosaqueeldesarrollofolicularenlas hembrasnoerasincrónico. Paraelestudiodelciclogametogénicosehandesarrolladodistintosmétodos quesepuedenclasificarenindirectosydirectos.Losprimerossebasanenestimarla presenciadelarvasenelplanctonoverlaposteriorfijacióndepostlarvasosemillay lossegundosconsistenenestudiosdeltejidogonadaldelosindividuos,siendoestos últimoslosmásfiables. Dentrodelosmétodosdirectosexistenlosquesimplementesonobservaciones macroscópicasdelagónada(observandolacoloraciónyelaspecto)comoelde GlemarecyBouron(1978)aplicadoaVenéridos,oenlosqueseelaboranÍndicesde Condicióngonadal.Otrosmétodosdirectossebasanenobservacionesmicroscópicas, yaseandefrotisinvivodelagónada,comoelelaboradoporLucas(1965),odelas preparacioneshistológicasdetejidogonadal. Paradeterminarelgradodedesarrollogametogénicodelosindividuosapartir delaobservacióndepreparacioneshistológicassepuedenutilizarescalascualitativas, quesebasanendescribirlosdistintosmomentosporlosquepasalagónadadurante elciclo.Alolargodelosañossehandesarrolladonumerosasescalashistológicas, diferenciándoseenelnúmeroylacaracterizacióndeestosestadiosgonadales.En bivalvoscabedestacarlasescalasdeHollandyChew(1974)yXieyBurnell(1994) descritasparalaalmejajaponesa,ylasdeLubet(1959)yWilsonySeed(1974) descritasparaelmejillón. Enlosúltimosañossehandesarrolladootrosmétodosdenaturaleza cuantitativacomoeselestereológico.EnVenéridoslautilizacióndeestemétodo abarcadesdeestudiosdedistribucióndefrecuenciadetalladeovocitosporanálisisde imagen(MorvanyAnsell,1988yXieyBurnell,1994)hastacálculosdelasfraccionesde volumenocupadasporlosdiversostiposcelulares(RodríguezMoscoso,2000).
Introducción 25 ElciclogametogénicodelaalmejababosaVenerupispullastrafueestudiado porFigueras(1957)yPérezCamacho(1980),ambosmediantelatécnicadefrotis. MediantehistologíasetieneconocimientodeltrabajorealizadoporVillalbaetal. (1993a)enunapoblacióngallegayeldeMaiaetal.(2006)realizadoenaguas portuguesas.ÁlvarezFariña(2005)yJaraJara(1995),estudiaronelciclogametogénico deestaespeciemedianteestereología;esteúltimoensemilladealmejaenuncultivo realizadoenaguaresidualprocedentedeunapiscifactoríaderodaballo. EnestecapítulosedefineelciclogametogénicodelaalmejababosaV. pullastraentrespoblacionesgallegas,mediantelaobservacióndepreparaciones histológicasyelempleodeunaescalacualitativaadaptadaaestaespecie. Losbivalvosmarinospresentanciclosdealmacenamientoydeutilizaciónde energíarelacionadosíntimamenteconelciclogametogénico.Lasvariaciones estacionalesenlasactividadesmetabólicassonfrutodeunaseriedeinteracciones entrealimentodisponible,condicionesambientales,crecimientoyactividad reproductora(Gabbott,1983).Enlatitudesaltaslaproduccióndenutrienteses estacionalylosbivalvosrespondenaestavariabilidaddediferentesmaneras.Asíen algunasespecies,elperíododeproduccióndegametoscoincideconeldemayor disponibilidaddenutrientes,porloquemuestranunaflexibilidadensuestrategia reproductoraasociadaaunestilodevidaoportunista(MacArthuryWilson,1967y Lubet,1986).Enotrasespecies,losnutrientessonalmacenadosendiferentesórganos delcuerpoylaproduccióndegametostienelugardurantelosperíodosdebaja disponibilidaddealimento,sonespeciesdeestilodevidaconservador. Existentrabajosquehacenreferenciaalasrelacionesqueseestablecenentre elciclogametogénicoylacomposiciónbioquímicaenbivalvosmarinos.Dentrodelos Venéridosseencuentranlossiguientestrabajos:Anselletal.(1964),Adachi(1979), BeningeryLucas(1984),Medhioub(1986),Goulletqueretal.(1988),Gimenoetal. (1990),Robertetal.(1993),Rodríguezetal.(1993),RodríguezMoscosoetal.(1993), JaraJara(1995),RodríguezMoscosoyArnáiz(1998),Delgado(2001),Ojeaetal.(2001) yÁlvarezFariña(2005).
3.Cicloreproductivo 26 Deentreloscomponentesmayoritarios,elglucógenoestáconsideradocomoel principalcomponentedelasreservasenbivalvosmarinos(Giese,1967).Graciasasu hidrosolubilidadsonreservasdeusoinmediatofacilitandosumovilizaciónhacialos tejidos,cubriendonecesidadesenergéticastantodemantenimiento,enépocasde bajadisponibilidaddealimento,comorelacionadasconlosperíodosreproductivos. GabbotyBayne(1973),WilsonySeed(1974)yMann(1979)establecenelpapeldel glucógenocomoconstituyenteenergéticoesencialquesostieneelesfuerzo reproductor. Loslípidos,generalmentemenosimportantesdesdeelpuntodevistadel aporteenergético(Giese,1966;Ackman,1989yBesnardetal.,1989),presentanuna excelentecapacidaddeseralmacenados.SegúnBeningeryLucas(1984)constituyen partedelasreservasenépocasnutricionalesdeficitarias.Esconocidasuimportancia paralaformacióndegametos(Holland,1978)alconstituirlaprincipalreservade energíadelosovocitosylarvasdebivalvos,hechoquequedademostradoporuna bajadadelosnivelesdeestecompuestoenépocasdepuesta(Gabbott,1975). Lafunciónprincipalatribuidaalasproteínasesestructural,sindescartarsu papelcomoreservaenergéticaenbivalvosadultosparticularmentedurantela gametogénesis(Holland,1978),ensituacionesdebajosnivelesdeglucógenooseveros desequilibriosmetabólicos(BeningeryLucas,1984).Adachi(1979)encuentraqueel niveldeproteínastienerelaciónconeldesarrollodelagónadaenlaalmejajaponesa, sugiriendoquelaproteínadelmúsculoaductorpuedeserutilizadaparalaproducción degónada.Enotrosentido,JaraJara(1995)sostienequeelaumentodeproteínasen almejaesunexcelenteindicadordecrecimientoyquetienepocarelaciónconlos ciclosquesiguenelglucógenoyloslípidos,sugiriendoqueelpapeldelasproteínasen elmetabolismoenergéticoespocoimportanterespectoalosanteriorescomponentes bioquímicos. ÁlvarezSeoane(1960)yGonzález(1975),realizaronelestudiodela composiciónbioquímicadelaalmejababosaperosinrelacionarloconelciclo gametogénico.Elprimerodeterminólacomposiciónbioquímicadelapartecomestible
Introducción 27 delaalmejaorientandolosresultadosalconsumohumano,yelsegundo relacionándoloconlosparámetrosecológicos.ÁlvarezFariña(2005)describela dinámicareproductoradeestaespecieapoyándoseenestudioshistoquímicos. Enestetrabajoseestudialavariacióndelacomposiciónbioquímica mayoritariadelaalmejababosa(glucógeno,lípidosyproteínas)entrespoblacionesa lolargodelciclogametogénico,conelfindedescribirlaestrategiareproductorade estaespecieenGalicia. Unodelosfactoresquepuedenmodificarelcicloreproductivodelosbivalvos eslapresenciadeparásitos,quepuedenafectardirectamentealagónadaobienal estadogeneraldelindividuo.ExistenparásitosenlaalmejadeltipoPerkinsussp.que hansidorelacionadosconmortalidadesdealmejafina,especialmenteenépocas estivalesenlasquelasalmejasestabansometidasacondicionesdeestrés(Villalbaet al.,2005).Casas(2001)detectóqueenunapoblacióngallegadealmejafina,al aumentarlaintensidaddeinfecciónporPerkinsusatlanticus,aumentabaelporcentaje deindividuosenreposogonadalydescendíaelporcentajedeindividuosenestadode gametogénesisymadurez. Otrosparásitosquetambiénpuedenocasionarunefectonegativoenel potencialreproductorsonlostrematodos.Losbivalvosmarinosactúannormalmente comosushospedadoresprimariosensusfaseslarvariasdeesporoquisteycercaria,o comohospedadorsecundarioenlafasedemetacercarias.Lostrematodosmás importantesqueafectanalosbivalvossonlospertenecientesalafamilia Bucephalidae,suslarvassonprobablementelosparásitosmetazoosmásnocivosque afectanabivalvosmarinos(Iglesias,2006),causandosucastraciónydebilitamiento. Lasmetacercariasnormalmentenocausancastraciónyhansidoconsideradas generalmentecomocausantesdepocooningúndañoenelhospedador.Sinembargo, existenevidenciasdequepuedencausarotrosdaños(Lauckner,1983),entrelos cualesestáundebilitamientogeneral,alteracionesenelcomportamiento,aumentoen elconsumodeoxígenoylatasametabólica.
3.Cicloreproductivo 28 EnGaliciaserealizarontrabajossobrelapatologíadelasalmejas:Figuerasetal. (1992),Villalbaetal.(1993b,1999y2005),López(1995),Ordásetal.(2001),Casas (2001)yCasasetal.(2002).Ningunodeellosrelacionaelefectodelaparasitación gonadalenelcicloreproductivodelaalmejababosa. Enestetrabajoserealizaelanálisishistopatológicodelosindividuosutilizados paraelestudiodelcicloreproductivo,conelfindeidentificarlosparásitosquepueden incidireneldesarrollogametogénicoy,porlotanto,disminuirlacapacidad reproductoradeestaespecie. Laalmejababosahabitatantoenbancossubmarealescomoenintermareales. Losprimerosseencuentransiempresumergidosyporlotantoladisponibilidadde alimentoesmásconstantequeenunapoblaciónintermareal.Asuvezlapoblacióndel bancointermarealestásometidaaperíodosdedesecaciónyafactoresambientales comolabajadadesalinidadporlluviasolasubidadelastemperaturasduranteel verano.Eversoleetal.(1980)yWalkeryHefferman(1994)encontrarondiferenciasen eldesarrollogonadalentreejemplaresdeMercenariasp.procedentesdelárea submarealeintermareal. Enestecapítulosepretendedefinirelcicloreproductivodelaalmejababosa enGalicia.Serealizaelestudiohistológicodelagónadautilizandounaescala cualitativa,ylavariacióndeloscomponentesbioquímicosmayoritariosalolargodel ciclo. Seescogieronparaellotresbancosnaturales:unodeellossituadoalNoroeste deGalicia(enCamariñas)ylosotrosdosalSuroeste(enOGrove).DentrodeOGrove sehanescogidodosbancos,unointermarealyelotrosubmareal.Seanalizanlas posiblesdiferenciasentreunapoblacióndelNOyotradelSO,ydentrodeunamisma zonaentreunaintermarealdeotrasubmareal. Seestudiatambiénelefectodelaparasitaciónenlacondicióngonadalyla capacidadreproductoradeestaespecie.
Materialymétodos 29 3.2MATERIALYMÉTODOS 3.2.1RECOGIDAYPROCESADODELASMUESTRAS CadamessemuestreóunlotedeVenerupispullastradetallapróximaala comercialdecadaunadelastreszonasdeestudio(Figura3.1).Seescogierontres bancosnaturales,unodeellosessubmarealyestásituadoenlaRíadeCamariñas(NO deGalicia)ylosotrosdospertenecenalaRíadeArousa(SOdeGalicia).Estosdos bancosselocalizanenlazonasuroestedelaRía,unodeellosessubmarealyestá situadodelantedelpuertodeOGrove(bancode“ACantareira”)yelotroes intermarealyestásituadoentreOGroveyAToxa(bancodela“VíaNorte”).Eneste trabajosehacereferenciaaestaspoblacionesdeestudiocomo:Camariñas,OGrove submarealyOGroveintermareal. FIGURA3.1:LocalizacióndelostresbancosnaturalesdeV.pullastrautilizadosenesteestudio. RÍADECAMARIÑAS CAMARIÑAS OGROVE BANCOSUBMAREAL BANCOINTERMAREAL BANCOSUBMAREAL “ACANTAREIRA” “VIANORTE” RÍADEAROUSA
3.Cicloreproductivo 30 Laextracciónlarealizaronmensualmentelasmariscadorasdelaagrupacióno enalgúncasodirectamentelaasistenciatécnicadelapropiacofradía.Ennoviembre de2003serecogieronlasprimerasmuestrasyseconcluyeronenmayode2005; obteniendoasídatosdelciclogametogénicoalolargode19meses. Lasmuestrasllegabanrefrigeradasyseprocesabandirectamentesin depuraciónprevia;solamentesemanteníanduranteunahoraenaguaparaexpulsar lasarenasdelacavidadpaleal.Estoeradebidoaquesetemíanposiblespérdidasde gametossiseintroducíanlasalmejasdenuevoenelaguadurante24horas;hechoque sepudoconfirmarennuestrolaboratorioalobservardurantetodoelperíodode estudio,quelasalmejassobrantesexpulsabangametos(enmayoromenorcantidad) alserintroducidasenagua. 3.2.2OBTENCIÓNDELOSDATOSAMBIENTALESDELASZONASDEMUESTREO Losdatosdesalinidad(‰),temperatura(ºC)yclorofilaa(µg/l)delaszonasde muestreohansidocedidosporelInstitutoTecnolóxicoparaoControldoMedio Mariño(INTECMAR).Losdosprimerosfueronrecogidosmedianteperfilesverticales realizadosconunCTDSeabird25ylosdatosdeclorofilafueronobtenidosmediante análisisespectrofluorimétrico. LosdatoscorrespondientesalapoblacióndeOGrovesubmarealprocedende laestaciónA8denominada“Meloxo”ylosdatosdelapoblaciónintermarealprovienen delaestaciónA7.DelapoblacióndeCamariñasnosehaconseguidoobtenerningún dato.
Materialymétodos 31 3.2.3OBTENCIÓNDELOSDATOSBIOMÉTRICOS,CÁLCULODELPESOSECOEÍNDICESDE CONDICIÓN Decadamuestreoseprocesóunnúmerodealmejascomprendidoentre30y 50.Sesepararonlosmachosylashembras,utilizandocomomínimo15individuosde cadasexo. Acadaindividuoseletomaronlassiguientesmedidasutilizandouncalibre digitalMitutoyo(precisión0,01mm)yunabalanzadeprecisiónGramPrecision (precisión0,01g): Longitudmáximadelejeantero‐posterior Alturamáximadelejedorso‐ventral Anchuramáxima Pesofrescototal Pesofrescodelaconcha Pesofrescodelavianda Pesofrescodelagónada Acadaindividuoselediseccionólagónadaseparándoladelrestodelavianda, ambaspartessecongelaronpara,posteriormente,realizarlosanálisisbioquímicos. Elpesosecosecalculóliofilizandounamuestradetejido,congelándola previamente,ymanteniéndoladurante24‐48horasenunliofilizadorrefrigerado. Posteriormentesepesólamuestrapreviopasoporundesecadorduranteunahora. Lasconchassemantuvieronenunaestufaa100ºCdurante24horas.Secalcularonlos siguientespesossecos: Pesosecodelavianda Pesosecodelaconcha Pesosecodelagónada
3.Cicloreproductivo 32 ConlosdatosobtenidosdelpesosecosecalcularonlosÍndicesdeCondición: ÍndicedeCondiciónvisceral: ICV=(Pesosecodelavianda/Pesosecodelaconcha)x100 ÍndicedeCondicióngonadal: ICG=(Pesosecodelagónada/Pesosecodelaconcha)x100 3.2.4MÉTODOHISTOLÓGICO Paraelestudiohistológicoeltejidogonadalseintrodujodurante24horasenel líquidofijador.Lasprimerasmuestras(hastamarzo2004)sefijaronconBouin‐ Hollande,posteriormenteseoptóporutilizarelfijadorDavidson,obteniéndose mejoresresultadosdefijación. Seguidamenteseprocedióadeshidratarlasmuestrasenunprocesadorde tejidosautomáticoHistolabZX‐100,paraluegoincluirlasenparafina.Enelprocesador lasmuestraspasaronporlasiguienteseriedebaños: etanolal80%(1x1h) etanolal96%(3x2h) etanolal100%(2x1h) 1etanolal100%:1xileno(1x1h) xileno(2x1h) parafinaa60ºC(2x3h) Elsiguientepasofuelaformacióndebloquesdeparafinaconcadaunadelas muestras.Serealizóenuncentroformadordebloques,compuestoporun dispensadordeparafinacalienteyunaplacarefrigeradoradondeseenfrían.Se cortaronlosbloquesobtenidosconunmicrotomoMicromHM340E,sehicieron seccionesde5micrasdeespesorqueluegoseextendieronenunbañodeaguaa40ºC,
Materialymétodos 33 pararecogerlossobreunportaobjetosconunacapadeglicerinaquefacilitabasu adherencia.Sesecabanenunaestufaa40ºC. Elúltimopasofuelatinciónconhematoxilina‐eosina,paraellopreviamentese realizabaeldesparafinadoylahidratacióndeloscorteshistológicos,elprocesoera manualyserealizabapasandolaspreparacionesporlasiguienteseriedebaños: xileno(3x2min) etanolal100%(1x2min) etanolal96%(1x2min) etanolal80%(1x2min) etanolal70%(1x2min) etanolal50%(1x2min) aguadestilada(1x5min) Elsiguientepasoeralatinciónensí,ycomprendíalossiguientesbaños: hematoxilinadeHarris(1x5min) aguacorriendo(1x5min) eosina(1x10min) etanolal100%(4x1min) xileno(3x1min) LaspreparacionessemontaronconHistomountyseobservaronalmicroscopio óptico. Análisiscualitativo: Laescalautilizadaesunaadaptaciónaestaespeciedelasescalascomúnmente utilizadasparaotrosbivalvos.Sebasaenlasescalascualitativasexistentespara bivalvos(Lubet,1959;HollandyChew,1974yWilsonySeed,1974),peroconligeras modificacionesadaptadasaestaespecietraslaobservacióndelaspreparaciones.A
3.Cicloreproductivo 40 3.2.6.3DETERMINACIÓNDELÍPIDOSTOTALES Paraladeterminacióndelípidostotalesseutilizóelmétodogravimétrico utilizadoporFolchetal.(1957),previaextracciónconcloroformo‐metanol(Figura3.4). Separtióde200mgdetejidoliofilizadoypulverizado,alacualseleextrajeron loslípidosrealizandolavadossucesivosconcloroformo‐metanol2:1(v:v).Secomenzó conunlavadocon4ml,sonicandolamuestra,centrifugándolayrecogiendoel sobrenadante.Eltejidosedimentadoseresuspendióconotros3mldecloroformo‐ metanolpararealizarelsegundolavado;esteprocesoserepetíatantasvecescomo fueranecesariohastaextraerlatotalidaddeloslípidosdelamuestra. Elsobrenadanterecogidodespuésdetodosloslavadossetransvasóauna ampolladedecantaciónfiltrándoloatravésdeunembudo.Seañadieron3mlmásde cloroformo‐metanolqueseutilizabanparalavarelpropiotuboyelfiltrodelembudoy clorurosódico0,6N(el25%delvolumendecloroformo‐metanoldelaampolla)para arrastrarlosrestosdemateriaorgánicadelamuestra.Seagitabanysedejaban reposardurante24horas. Aldíasiguienteserecogíalafraccióninferiordelaampollaqueconteníalos lípidos,alasuperiorselevolvíaahacerotrolavadoconlamismacantidadinicialde cloroformo‐metanolydeclorurosódico. Seevaporaronloslípidosenpresenciadenitrógenoyseredisolvieronen3ml decloroformo.Deaquíseextrajeron3alícuotasde300µlenunascápsulas previamentetaradas,paraposteriormenteevaporarlasenunaestufaa50ºCdurante doshoras,sepesarondenuevolascápsulasysehallaronasíloslípidostotalespor diferencia.
Material y métodos 41 FIGURA 3.4: Esquema del método empleado para la determinación de lípidos totales.
3.Cicloreproductivo 42 3.2.7TRATAMIENTOESTADÍSTICODELOSDATOS ElanálisisestadísticoserealizóutilizandoelpaqueteestadísticoSPSS®para Windowsversión15.0. Lacomparacióndemediasdelosdistintoscomponentesbioquímicosentrelas distintaspoblacionesseanalizómedianteuntestdeanálisisdevarianza(ANOVA).Se utilizóeltestdeKolmogorov‐Smirnovparaelestudiodelanormalidad.La homogeneidaddevarianzassehacomprobadomedianteeltestdeLevene.Las comparacionesmúltiplessehanllevadoacabomedianteeltestdecomparación múltiplederangos(testdeTukey). Paraelestudiodelsex‐ratioenlaspoblacionesseutilizóuntestChi‐cuadrado. SerealizóunAnálisisdeComponentesPrincipalesparadiscriminarlas tendenciasdelacomposiciónbioquímica(lípidosgónada,lípidosvíscera,proteínas gónada,proteínasvíscera,glucógenogónadayglucógenovíscera)conrespectoalos estadiosgametogénicos(iniciodelagametogénesis,gametogénesisavanzada, madurezyrenovación)yalosÍndicesdeCondicióngonadalyvisceraldeacuerdocon losejesprincipales. Enelestudiodeasociaciónentrelacomposiciónbioquímicadelaspoblaciones, losÍndicesdeCondiciónylosestadiosgametogénicos,seutilizóelcoeficientede correlacióndeSpearman(Zar,1996). LosvaloresdeporcentajesdecadaestadiogametogénicoylosÍndicesde Condicióngonadalyvisceralsetransformaronconlafunciónarcoseno.
Resultados 43 3.3RESULTADOS 3.3.1PARÁMETROSAMBIENTALESDELASZONASDEMUESTREO Enlasfiguras3.5y3.6sepresentanlosdatosambientalesdelaspoblacionesde OGrovesubmarealyOGroveintermareal,desdenoviembrede2003hastamayode 2005,cedidosporelINTECMAR. Enambaspoblacioneslatemperaturasigueuncicloestacionalcon temperaturasmínimaseninvierno(12ºC),quesevanincrementandoenprimavera, hastaalcanzarelmáximoenverano(18,5ºC).Lasalinidadoscilaligeramentealolargo delaépocadeestudio,entre34‰y35,5‰.Enrelaciónalaclorofilaa,eninviernose observanlasmínimasconcentracionesyapartirdelaprimaveraseencuentranvarios picosdedistintaintensidad,4enOGrovesubmarealy3enOGroveintermareal,que sesucedenaproximadamentecadadosmeses. 10 12,5 15 17,5 20 30 31 32 33 34 35 36 Temperatura Temperatura Salinidad Salinidad ºC 0 1 2 3 4 Clorofila Clorofila µg/l O Grove submareal O Grove submareal ‰ 5 nov-03 may-04 ago-04 nov-04 feb-04 feb-05 may-05 a a FIGURA3.5: Gráficaconlosdatosdetemperatura(ºC),salinidad(‰)yclorofilaa(µg/l) enlapoblacióndeOGrovesubmareal.
3.Cicloreproductivo 44 3.3.2DATOSBIOMÉTRICOS,PESOSECOEÍNDICEDECONDICIÓN 3.3.2.1POBLACIÓNDECAMARIÑAS EnlatablaIII.1semuestranlosparámetrosbiométricosobtenidosduranteel períododeestudiodelaalmejababosaVenerupispullastraenlapoblaciónde Camariñas.Sepresentanlosvaloresmediosmensualesdelongitud,alturayanchura, pesofrescototalypesofrescoysecodelaconcha,viandaygónada. Lalongitudmediamensualdelosindividuosestudiadosdeestapoblaciónfue de40mm,oscilandoentreunmínimode37,65mmdelmesdediciembrede2003y unmáximode44,53mmdelmesdeenerode2004. 10 12,5 15 17,5 20 30 31 32 33 34 35 36 Temperatura Temperatura Salinidad Salinidad ºC 0 1 2 3 4 Clorofila Clorofila µg/l O Grove intermareal O Grove intermareal ‰ 5 nov-03 may-04 ago-04 nov-04 feb-04 feb-05 may-05 FIGURA3.6:Gráficaconlosdatosdetemperatura(ºC),salinidad(‰)yclorofilaa(µg/l) enlapoblacióndeOGroveintermareal.
Resultados 45 TABLAIII.1:DatosbiométricosmediosmensualesdeV.pullastradelapoblacióndeCamariñasdurante losmesesdeestudio.Media±desv. Enlafigura3.7serepresentalavariacióndelÍndicedeCondicióngonadaly visceraldurantelosmesesdeestudio.Ambosíndicespresentaronunpatrónde evoluciónsimilarconunvalormáximode5,66paraelgonadaly18,81paraelvisceral, enelmesdediciembrede2003.Posteriormenteambosíndicesdescendieron paulatinamentehastaelmesdeabrilde2004dondeseencontraronlosmínimos valorescoincidiendoconunperíododespuésdelapuesta(1,74elgonadaly6,67el visceral).Losíndicesvolvieronaaumentarmanteniéndoseentornoavaloressimilares desdeelmesdeagostohastadiciembre.Apartirdelmesdediciembrede2004ambos índicescomenzaronadescender(aligualqueelañoanterior)encontrándose igualmenteunmínimo(enambosíndices)enelmesdeabrilde2005. MEDIDAS(mm)PESOFRESCO(g)PESOSECO(g) FECHALongitudAlturaAnchuraTotalConchaViandaGónada ConchaViandaGónada 11‐nov‐03 40,12 ±1,78 26,24 ±1,37 17,75 ±1,09 11,50 ±1,64 5,64 ±0,83 3,84 ±0,70 0,58 ±0,21 5,28 ±0,80 0,86 ±0,15 0,18 ±0,06 10‐dic‐03 37,65 ±1,70 25,11 ±1,15 17,75 ±0,83 10,21 ±1,07 5,18 ±0,65 3,51 ±0,04 0,93 ±0,02 4,83 ±0,61 0,91 ±0,11 0,27 ±0,05 15‐ene‐04 44,53 ±2,66 30,14 ±1,67 21,65 ±1,50 19,41 ±3,93 10,45 ±2,34 5,34 ±0,95 1,33 ±0,41 9,78 ±2,26 1,24 ±0,22 0,38 ±0,12 10‐feb‐04 40,30 ±2,23 26,66 ±1,43 18,60 ±1,15 12,45 ±2,00 6,26 ±1,17 3,47 ±0,57 0,96 ±0,26 5,88 ±1,13 0,73 ±0,12 0,25 ±0,07 11‐mar‐04 38,96 ±1,77 25,90 ±1,14 17,82 ±0,86 11,15 ±1,24 5,72 ±0,76 3,09 ±0,47 0,69 ±0,15 5,24 ±0,70 0,61 ±0,08 0,17 ±0,04 16‐abr‐04 42,14 ±1,54 28,89 ±1,06 20,86 ±1,03 16,83 ±1,86 9,33 ±1,24 3,85 ±0,61 0,84 ±0,18 8,72 ±1,19 0,58 ±0,11 0,15 ±0,04 14‐may‐04 43,39 ±2,44 30,29 ±1,68 21,54 ±1,47 19,47 ±3,50 10,41 ±1,93 4,36 ±0,79 1,24 ±0,29 9,71 ±1,88 0,84 ±0,15 0,27 ±0,06 1‐jul‐04 40,60 ±1,58 28,01 ±1,20 20,45 ±1,26 15,01 ±2,28 8,32 ±1,42 4,46 ±0,64 1,22 ±0,27 7,82 ±1,37 0,95 ±0,17 0,31 ±0,07 10‐ago‐04 40,70 ±1,82 28,04 ±1,30 20,42 ±1,02 15,25 ±2,02 8,40 ±1,24 4,96 ±0,67 1,55 ±0,27 7,88 ±1,23 1,16 ±0,16 0,43 ±0,08 14‐sep‐04 40,54 ±1,71 27,84 ±1,14 19,96 ±0,75 14,70 ±1,65 7,73 ±1,63 4,96 ±0,73 1,45 ±0,38 7,53 ±1,12 1,17 ±0,17 0,42 ±0,11 19‐oct‐04 39,81 ±2,19 26,42 ±1,48 18,17 ±1,30 12,78 ±2,29 6,46 ±1,48 4,35 ±0,90 1,09 ±0,55 6,10 ±1,41 0,93 ±0,19 0,31 ±0,16 15‐dic‐04 39,29 ±0,98 25,89 ±0,90 20,75 ±1,96 11,00 ±1,16 5,57 ±0,68 3,72 ±0,42 0,89 ±0,17 5,24 ±0,65 0,82 ±0,09 0,25 ±0,05 27‐ene‐05 38,59 ±2,50 25,80 ±1,88 17,97 ±1,26 11,10 ±2,83 5,87 ±1,47 3,21 ±0,75 0,70 ±0,22 5,53 ±1,40 0,67 ±0,16 0,17 ±0,05 25‐feb‐05 40,72 ±3,39 27,76 ±2,35 19,48 ±3,56 14,82 ±3,81 7,49 ±2,37 3,81 ±0,99 1,00 ±0,42 7,36 ±2,00 0,77 ±0,19 0,25 ±0,10 29‐abr‐05 39,93 ±1,95 25,59 ±0,97 17,70 ±1,00 10,56 ±1,31 5,21 ±0,76 3,27 ±0,6 1 0,63 ±0,21 4,88 ±0,75 0,64 ±0,12 0,15 ±0,05
3.Cicloreproductivo 46 FIGURA3.7:EvolucióndelÍndicedeCondicióngonadal(ICG)yvisceral(ICV)deV.pullastraenla poblacióndeCamariñas. 3.3.2.2POBLACIÓNDEOGROVESUBMAREAL EnlatablaIII.2semuestranlosdatosdelapoblacióndeOGrove.Sepresentan lamediayladesviaciónestándardelasmedidasbiométricas,lospesosfrescosypesos secosdurantelosmesesdeestudio. Lalongitudmediadelosindividuosdiseccionadosfueentornoa37mm,entre unmáximode40mmenfebrerode2004yunmínimode31,83mmenseptiembrede esemismoaño. AmbosÍndicesdeCondiciónpresentantambiénenestapoblaciónuna evoluciónparalela,comoserepresentaenlafigura3.8.Sinembargo,seobservanmás variacionesalolargodelañoqueenlapoblacióndeCamariñas.Ennoviembrede2003 encontramoslosmáximosvalores,4,61paraelÍndicegonadaly17,91paraelvisceral, queposteriormentedescendieronduranteelmesdediciembre.Enenerode2004se observaotrasubida,seguidodeundescensoenelmesdemarzo,dondese encuentranlosmínimosvaloresenambosíndices(2,47elgonadaly10,19elvisceral), aligualqueenCamariñasdebidoaldesove.Enlosmesesdeagosto,septiembrey octubreencontramosvaloresaltosenambosíndices,quedespuésdisminuyeronhasta elmesdefebrero(unmesantesqueenel2004). fecha nov‐03dic‐03ene‐04feb‐04mar‐04abr‐04may‐04jun‐04jul‐04ago‐04sep‐04oct‐04nov‐04dic‐04ene‐05feb‐05mar‐05abr‐05 I.C.Camariñas ICG ICV 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20
Resultados 47 TABLAIII.2:DatosbiométricosmediosmensualesdeV.pullastraenlapoblacióndeOGrovesubmareal durantelosmesesdeestudio.Media±desv. MEDIDAS(mm)PESOFRESCO(g)PESOSECO(g) FECHALongitudAlturaAnchuraTotalConchaViandaGónada ConchaViandaGónada 19‐nov‐0337,96 ±2,51 24,77 ±2,51 17,25 ±1,14 10,26 ±2,10 5,00 ±1,05 3,60 ±0,82 0,72 ±0,24 4,65 ±1,00 0,60 ±0,12 0,22 ±0,02 17‐dic‐0338,03 ±2,18 25,36 ±1,77 17,94 ±1,34 11,45 ±2,50 5,87 ±1,51 2,83 ±0,70 0,54 ±0,22 5,46 ±1,43 0,39 ±0,09 0,13 ±0,05 21‐ene‐0438,11 ±2,25 25,19 ±1,63 17,93 ±1,22 11,16 ±2,17 5,88 ±1,16 3,37 ±0,7 0,74 ±0,28 5,42 ±1,12 0,52 ±0,13 0,19 ±0,07 24‐feb‐0439,99 ±1,55 26,23 ±1,11 18,25 ±0,99 11,89 ±1,06 5,95 ±0,88 3,55 ±0,38 0,63 ±0,11 5,44 ±0,84 0,50 ±0,06 0,15 ±0,03 23‐mar‐0437,89 ±2,23 25,81 ±1,65 18,40 ±1,64 11,96 ±2,59 6,14 ±1,50 2,97 ±0,74 0,62 ±0,32 5,68 ±1,44 0,40 ±0,08 0,15 ±0,07 27‐abr‐0436,45 ±2,61 23,13 ±1,63 16,18 ±1,30 8,47 ±1,97 4,33 ±1,08 2,49 ±0,61 0,45 ±0,19 4,00 ±1,04 0,35 ±0,08 0,11 ±0,05 1‐jun‐0435,87 ±1,93 23,62 ±1,22 16,69 ±0,80 8,63 ±1,14 4,47 ±0,67 3,15 ±0,37 0,71 ±0,13 4,14 ±0,64 0,47 ±0,06 0,18 ±0,03 2‐jul‐0438,92 ±2,84 25,40 ±1,69 17,66 ±1,46 11,23 ±2,45 5,72 ±1,28 3,42 ±0,86 0,71 ±0,13 5,34 ±1,24 0,50 ±0,11 0,17 ±0,06 3‐ago‐0437,00 ±1,98 23,86 ±1,35 17,39 ±1,17 9,75 ±1,65 4,75 ±0,89 3,63 ±0,61 0,77 ±0,23 4,39 ±0,85 0,52 ±0,08 0,18 ±0,07 3‐sep‐0431,83 ±1,98 21,07 ±1,45 15,18 ±1,14 6,39 ±1,46 3,28 ±0,79 2,18 ±0,49 0,48 ±0,23 3,05 ±0,75 0,31 ±0,10 0,13 ±0,06 15‐oct‐0437,82 ±2,54 24,61 ±1,75 17,28 ±1,20 10,08 ±2,07 4,89 ±1,07 3,46 ±0,81 0,69 ±0,24 4,59 ±0,67 0,53 ±0,13 0,19 ±0,07 24‐nov‐0435,42 ±2,40 23,60 ±1,21 16,86 ±1,01 9,11 ±1,36 4,69 ±0,77 3,77 ±0,58 0,57 ±0,20 4,39 ±0,73 0,42 ±0,08 0,17 ±0,06 21‐dic‐0437,52 ±2,17 24,62 ±1,18 17,35 ±0,86 9,80 ±1,38 5,05 ±0,68 3,06 ±0,58 0,60 ±0,18 4,75 ±0,64 0,45 ±0,08 0,10 ±0,07 14‐ene‐0537,30 ±1,35 24,14 ±1,02 17,23 ±0,86 10,04 ±1,23 4,99 ±0,69 2,95 ±0,39 0,59 ±0,13 4,68 ±0,69 0,40 ±0,05 0,15 ±0,03 10‐feb‐0535,70 ±1,05 23,14 ±0,67 16,25 ±0,70 8,63 ±0,70 4,37 ±0,46 2,35 ±0,30 0,44 ±0,13 4,09 ±0,44 0,47 ±0,66 0,10 ±0,03 10‐mar‐0537,78 ±2,45 24,59 ±1,36 17,36 ±1,07 10,70 ±1,07 5,44 ±0,77 3,23 ±0,61 0,72 ±0,21 5,10 ±0,74 0,69 ±0,13 0,19 ±0,05 7‐abr‐0537,46 ±2,33 24,57 ±1,36 17,55 ±0,95 10,22 ±1,60 5,17 ±0,88 3,12 ±0,46 0,66 ±0,18 4,92 ±0,85 0,63 ±0,10 0,16 ±0,04 10‐may‐0537,05 ±1,85 24,09 ±1,02 17,07 ±0,98 9,49 ±1,42 4,89 ±0,74 2,89 ±0,62 0,64 ±0,22 4,67 ±0,72 0,58 ±0,13 0,16 ±0,05
3.Cicloreproductivo 48 FIGURA3.8:EvolucióndelÍndicedeCondicióngonadal(ICG)yvisceral(ICV)deV.pullastraenla poblacióndeOGrovesubmareal. 3.3.2.3POBLACIÓNDEOGROVEINTERMAREAL SepresentanenlatablaIII.3losparámetrosbiométricoscorrespondientesala poblacióndeOGroveintermareal. Lalongituddelosindividuosmuestreadosenestapoblaciónfuemenoralas otrasdos,conunamediade35,5mm.Losdatososcilaronentreunmáximode38,54 mm(mesdeoctubrede2004)yunmínimode33,77mm(septiembredeesemismo año). Enlafigura3.9sepresentanlosdatosdelÍndicedeCondicióngonadalyvisceral deestapoblación.Ennoviembrede2003seencontraronvaloresaltosenambos índices(3,18elgonadaly13,86elvisceral),quecomenzaronadescenderhastaun mínimoanualenelmesdeabrilde2004(conunvalorde1,42elgonadaly8,45el visceral).Duranteelveranolosíndicespresentaronvaloresaltos,disminuyendoa partirdelmesdediciembre,hastallegaralmínimoqueenelaño2005seadelantóa marzo(1,69y9,42elgonadalyvisceral,respectivamente). fecha I.C.OGrovesubmareal ICG ICV 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 nov‐03dic‐03ene‐04feb‐04mar‐04abr‐04may‐04jun‐04jul‐04ago‐04sep‐04oct‐04nov‐04dic‐04ene‐05feb‐05mar‐05abr‐05may‐05
Resultados 49 TABLAIII.3:Datosbiométricosmediosmensualesde V .pullastra enlapoblacióndeOGrove intermarealdurantelosmesesdeestudio.Media±desv. MEDIDAS(mm)PESOFRESCO(g)PESOSECO(g) FECHALongitud AlturaAnchura TotalConchaViandaGónada ConchaViandaGónada 25‐nov‐03 35,18 ±1,03 22,84 ±0,63 16,04 ±0,72 8,33 ±0,68 4,13 ±0,42 2,62 ±0,37 0,50 ±0,12 3,82 ±0,40 0,53 ±0,08 0,12 ±0,03 23‐dic‐03 36,45 ±1,34 24,55 ±0,95 17,71 ±0,94 10,26 ±1,35 5,30 ±0,73 3,11 ±0,46 0,73 ±0,16 4,92 ±0,71 0,45 ±0,09 0,13 ±0,04 27‐ene‐04 36,75 ±1,38 24,05 ±0,87 16,84 ±0,66 9,45 ±0,98 4,69 ±0,59 2,66 ±0,30 0,51 ±0,11 4,31 ±0,55 0,47 ±0,06 0,13 ±0,03 25‐feb‐04 37,32 ±1,66 24,81 ±1,18 17,62 ±1,05 10,47 ±1,40 5,33 ±0,80 2,62 ±0,44 0,47 ±0,47 4,90 ±0,77 0,47 ±0,07 0,10 ±0,03 24‐mar‐04 36,30 ±1,68 23,94 ±0,95 17,07 ±0,95 9,39 ±1,30 5,00 ±0,70 2,46 ±0,40 0,42 ±0,16 4,61 ±0,67 0,47 ±0,08 0,10 ±0,04 20‐abr‐04 35,14 ±2,44 23,45 ±1,68 17,12 ±1,25 9,41 ±2,02 4,98 ±1,07 2,10 ±0,36 0,30 ±0,09 4,59 ±1,04 0,39 ±0,07 0,07 ±0,02 2‐jun‐04 33,91 ±1,73 22,37 ±1,19 16,11 ±0,87 7,42 ±1,09 3,87 ±0,62 2,39 ±0,41 0,50 ±0,11 3,54 ±0,39 0,51 ±0,09 0,12 ±0,03 24‐jun‐04 33,87 ±1,64 22,66 ±1,03 16,53 ±0,88 8,00 ±1,20 4,21 ±0,59 2,83 ±0,34 0,61 ±0,12 3,91 ±0,57 0,57 ±0,07 0,13 ±0,02 3‐ago‐04 37,05 ±1,73 24,72 ±1,01 18,04 ±0,99 11,11 ±1,50 5,73 ±0,81 3,48 ±0,66 0,78 ±0,20 5,31 ±0,79 0,70 ±0,12 0,20 ±0,05 3‐sep‐04 33,77 ±1,55 22,60 ±1,14 16,49 ±1,00 8,41 ±1,28 4,30 ±0,75 2,73 ±0,41 0,61 ±0,16 4,05 ±0,73 0,59 ±0,08 0,17 ±0,05 15‐oct‐04 38,54 ±2,14 25,29 ±1,63 17,90 ±1,25 11,19 ±1,90 5,46 ±0,97 3,32 ±0,97 0,64 ±0,26 5,11 ±0,94 0,65 ±0,23 0,16 ±0,09 16‐nov‐04 35,40 ±1,89 23,74 ±1,28 17,15 ±0,83 9,02 ±2,16 4,83 ±0,74 2,79 ±0,47 0,55 ±0,15 4,53 ±0,64 0,61 ±0,10 0,15 ±0,04 14‐dic‐04 35,52 ±1,98 23,46 ±1,14 17,01 ±0,90 8,88 ±1,88 4,68 ±0,79 3,20 ±0,73 0,53 ±0,15 4,40 ±0,75 0,54 ±0,10 0,14 ±0,04 14‐ene‐05 36,17 ±1,81 24,23 ±0,95 17,42 ±1,03 10,04 ±1,47 5,33 ±0,74 2,78 ±0,38 0,59 ±0,17 5,02 ±0,73 0,54 ±0,12 0,15 ±0,05 10‐feb‐05 34,13 ±1,48 22,57 ±1,05 16,45 ±0,82 8,69 ±1,25 4,43 ±0,71 2,08 ±0,37 0,40 ±0,11 4,18 ±0,67 0,40 ±0,07 0,10 ±0,03 10‐mar‐05 34,21 ±1,47 22,80 ±1,10 16,60 ±0,85 8,14 ±1,45 4,22 ±0,61 1,94 ±0,33 0,32 ±0,12 3,97 ±0,59 0,37 ±0,10 0,07 ±0,03 7‐abr‐05 34,07 ±1,49 22,42 ±0,92 16,18 ±0,95 8,17 ±1,09 4,09 ±0,59 2,01 ±0,36 0,38 ±0,10 3,81 ±0,57 0,45 ±0,08 0,13 ±0,03 10‐may‐05 34,35 ±1,65 22,85 ±1,04 16,42 ±0,87 8,56 ±1,07 4,35 ±0,60 2,32 ±0,38 0,43 ±0,12 4,12 ±0,59 0,44 ±0,07 0,10 ±0,03
3.Cicloreproductivo 56 E4.Renovacióngonadal Losfolículospresentancélulasvesicularesdenuevaformación.Enlosmachos (Figuras3.15.13y3.15.14)losespermatozoidessesitúanenelcentrodelfolículo rodeadosdevariaslíneasdecélulasvesiculares(CV).Seobservangoniasrepoblando losfolículosperonohayniespermatogoniasniespermatocitos.Enlashembras(Figura 3.15.15),quedanovocitosresidualesnoatrésicos(OVC)rodeadosdenuevascélulas vesiculares,noseobservanovocitosprevitelogénicos.Enalgúncaso(Figura3.15.16)se puedeencontraralgunapequeñazonadetejidoconjuntivoorganizándoseenfolículos (CONJ). 1615 14 13 CONJ CV OVC FIGURA3.15:ImágenesdemicroscopíaópticadeV. pullastra enestadio E4derenovacióngonadal. 13:Macho.14:Macho,CV(célulavesicular).15:Hembra,OVC(ovocito).16:Porcióndegónada invadidaportejidoconjuntivo,CONJ.Barrasdeescala100µm.
Resultados 57 EsfrecuentequeduranteelestadioE4seobserveasincroníafoliculardentrode unmismoindividuo,apareciendoprincipalmenteduranteelperíodoverano‐otoño, épocadetransiciónentrelamadurezycomienzodeunnuevociclodegametogénesis. Enestaépocaencontramosfolículosenmadurez,folículosqueempiezanaformar célulasvesiculares,einclusoalgúnfolículoenreabsorción.Enlosindividuosenlosque seobservóestaasincroníasehaoptadoporasignaraquelestadioqueestabapresente enlamayorpartedelagónada.Enlafigura3.16semuestrandosfotografías pertenecientesaunindividuohembradeCamariñasdelmesdeagosto. Estaasincroníafolicularlepermitealaalmejababosaqueduranteelperíodo detransición,haciaelcomienzodeunanuevagametogénesis,lagónadapresente todavíafolículosconovocitosmadurosnoatrésicos,yporlotanto,concapacidadde serexpulsados. FIGURA3.16:DosfotografíaspertenecientesalmismoindividuohembradeV. pullastra.Izquierda folículosenmadurezypuesta,derechafolículosenrenovacióngonadal. Barrasdeescala100µm.
3.Cicloreproductivo 58 3.3.3.2POBLACIÓNDECAMARIÑAS Siguiendolaescaladescritaanteriormente,enlasfiguras3.17y3.18se representaelporcentajedeindividuosqueseencuentranmensualmenteencada estadio. FIGURA3.17:CiclogametogénicodelapoblacióndeCamariñasdeV.pullastradurantelosmesesde estudio.Individuosmacho. FIGURA3.18:CiclogametogénicodelapoblacióndeCamariñasdeV.pullastradurantelosmesesde estudio.Individuoshembra. nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 abr‐05 E1 E2 E3 E4 fecha 0% 20% 40% 60% 80% 100% nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 abr‐05 E1 E2 E3 E4 fecha 0% 20% 40% 60% 80% 100%
Resultados 59 Enestapoblación,duranteelotoñoencontramoslamayoríadelosindividuos enelestadioE4derenovacióngonadalyenelestadioE1deiniciodela gametogénesis.Amedidaquesevaacercandoelinviernodesaparecenlosindividuos enestadioE4,yaunquetodavíaseobservanindividuosenestadioE1yalgunosyaen estadioE3demadurezypuesta,lamayoríadelosindividuosseencuentranenestadio E2degametogénesisavanzada. EnCamariñasdurantelaprimaverayverano(desdemarzoaseptiembre),nose observanindividuosengametogénesisylamayoríadelapoblaciónseencuentraen estadioE3demadurezypuesta.Duranteestosmesesseobservanalgunosindividuos delapoblaciónenestadioE4derenovacióngonadal. Elamplioperíododemadurezypuestaquepresentaestapoblaciónsedebea que,enlosfolículosgonadalesseobservannuevasgoniasquedaránorigen,deforma continuada,anuevosespermatozoidesenelcasodelosmachos,yovocitos previtelogénicosypedunculadosenelcasodelashembras.Duranteesteperíodono seobservancélulasvesicularesenlosfolículos,porloquelaproduccióndenuevos gametossedeberealizaraexpensasdelosnutrientesreciénasimilados,yquedurante laprimaverayveranosonabundantesenelmediomarino. Amedidaqueempiezanadisminuirelnúmerodeindividuosenmadurez, aumentanlosestadiosderenovacióngonadaleiniciodelagametogénesis.Ambos estadiossecaracterizanporlaabundanciadecélulasvesicularesycomosevereflejada enlacomposiciónbioquímica(semuestraenapartadosposteriores),coincideconlos mayorescontenidosdeglucógenoylípidosengónada.Estosnutrientes,acumulados duranteelveranoyelotoño,proporcionanlaenergíanecesariaparalaformaciónde gametosduranteelinvierno. Aunqueseharealizadoelestudiogametogénicodemachosyhembras separadamente,seobservaquelaevolucióndelcicloesigualenambossexos.
3.Cicloreproductivo 60 3.3.3.3POBLACIÓNDEOGROVESUBMAREAL Enlasfigura3.19y3.20semuestranlosdatosobtenidostraslaasignaciónde unestadioacadaunodelosindividuosdelapoblacióndeOGrovesubmareal. FIGURA3.19:CiclogametogénicodelapoblacióndeOGrovesubmarealdeV.pullastradurantelos mesesdeestudio.Individuosmacho. FIGURA3.20:CiclogametogénicodelapoblacióndeOGrovesubmarealdeV.pullastradurantelos mesesdeestudio.Individuoshembra. nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 may‐05 abr‐05 0% 20% 40% 60% 80% 100% E1 E2 E3 E4 fecha nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 may‐05 abr‐05 0% 20% 40% 60% 80% 100% E1 E2 E3 E4 fecha
Resultados 61 AdiferenciadelapoblacióndeCamariñas,enlapoblacióndeOGrove submarealseencuentramayorheterogeneidaddeestadiosenunmismomuestreo. MientrasqueenlapoblacióndeCamariñaslagametogénesis(estadioE1yE2)se observabasóloenotoñoeinvierno,enOGrovesubmareal,duranteelveranoya principiosdelaprimavera,encontramosindividuosenestosestadios. Además,seobservaqueduranteelotoñoyelinviernoseencuentramayor númerodeindividuosenestadioE4(renovacióngonadal)yE3(madurezypuesta)que enlapoblacióndeCamariñas. Aunqueseobservandiferenciasenlosporcentajesdeindividuosencada estadioalolargodelaño,laevolucióndelcicloessimilaralapoblacióndeCamariñas. Apartirdelveranodisminuyeelnúmerodeindividuosmadurosycomienzaunnuevo ciclodegametogénesis,aumentandoelporcentajedeindividuosenlosestadiosE4y E1.Eldesarrollodelagametogénesisavanzadurantelosmesesdeotoñoeinvierno hastaelmesdeabril,dondeseobservanlamayoríadelosindividuosenmadurez. Enambossexosseencuentraheterogeneidaddeestadiosalolargodelaño, siendolaevolucióndelciclosimilarenmachosyhembras. 3.3.3.4POBLACIÓNDEOGROVEINTERMAREAL EnlapoblaciónintermarealdeOGroveseencuentrandiferenciasconrespecto alapoblaciónsubmareal,puestoqueenlaprimeraseencuentramenorproporciónde individuosenmadurezalolargodelaño. Enlasfiguras3.21y3.22seobservalaevolucióndelosestadiosenlos ejemplaresdeOGroveintermareal.
3.Cicloreproductivo 62 FIGURA3.21:CiclogametogénicodeV.pullastraenlapoblacióndeOGroveintermareal. Individuosmacho. FIGURA3.22:CiclogametogénicodeV.pullastraenlapoblacióndeOGroveintermareal. Individuoshembra. DuranteelotoñoyelinviernolamayoríadelapoblaciónintermarealdeO Groveseencuentraengametogénesis(estadiosE1yE2),observandopocosindividuos enE3yE4(madurezyrenovacióngonadal).Durantelaprimaverasecontinúa observandoquelamitaddelapoblaciónsigueengametogénesis,perolaotramitadse encuentrayaenmadurezyrenovacióngonadal. nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 may‐05 abr‐05 0% 20% 40% 60% 80% 100% E1 E2 E3 E4 fecha nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 may‐05 abr‐05 0% 20% 40% 60% 80% 100% E1 E2 E3 E4 fecha
Resultados 63 Entrelosmesesdemayoyagostoseobservaelmayorporcentajedeindividuos enmadurezenestapoblación.Apartirdeestemomentolapoblacióncomienzaun nuevociclodegametogénesis. Enambossexosenlapoblaciónintermarealseobservamayorporcentajede individuosenestadioE1yE2alolargodelañoqueenlapoblacióndeOGrove submareal.TambiéndentrodeOGroveintermareal,duranteelotoñoseencuentra mayorporcentajedeindividuoseniniciodelagametogénesis(E1)enlashembrasque enlosmachos. 3.3.3.5SEX‐RATIO Enlasiguientetablasemuestraelnúmerodeindividuosmacho,hembrae indiferenciadosencontradosenlastrespoblacionesdurantetodoslosmuestreos. TABLAIII.4:Númeroyporcentajedeindividuosmacho,hembraeindeterminadosenlastres poblacionesdeV.pullastraestudiadas. EnlapoblacióndeCamariñasseencontróunaproporciónmachos:hembrasde 1,15:1;nodesviándosesignificativamentedeunaproporción1:1(χ2=2,55;g.l.=1; p>0,05).EnOGrovesubmareallaproporciónfuede1,14:1;nodesviándosetampoco deunaproporción1:1(χ2=2,83;g.l.=1;p>0,05).EnlapoblacióndeOGroveintermareal seencontróunarelaciónmachos:hembrasde1,29:1;desviándosesignificativamente deunaproporción1:1(χ2=11,83;g.l.=1;p=0,001),encontrandomásmachosque hembras. MachosHembrasIndeterminadosTotal Camariñas258(53,2%)223(46%)4(0,8%)485 OGrovesubmareal333(53,2%)291(46,5%)2(0,3%)626 OGroveintermareal412(55,9%)319(43,3%)6(0,8%)737
3.Cicloreproductivo 64 3.3.4COMPOSICIÓNBIOQUÍMICA Semuestranacontinuaciónlosdatosobtenidostraselanálisisdelcontenidoen glucógeno,proteínasylípidos(enmg/gpesoseco).Seanalizó(porseparadomachosy hembras)lagónadayelrestodelindividuo,esdecir,laviandamenoslagónada.Enlas gráficasseomitenlosdatosdedesviaciónestándarparahacerlasmáslegibles,yaque enningúncasoladesviaciónsuperael10%delamedia. 3.3.4.1GLUCÓGENO Enlafigura3.23serepresentalaevolucióndelglucógenoalolargodelaño.En lastrespoblacioneslacantidaddeglucógenoengónadadisminuyeprogresivamentea partirdelosmesesdenoviembreydiciembrede2003.Enelmesdeabrilseencuentra elmínimodeglucógenoenlaspoblacionesdeCamariñasyOGrovesubmareal.EnO Groveintermarealsellegaalmínimoenelmesdeeneroysemantienehastaelmesde abril. Losvaloresmínimosdeglucógenocoincidenconelmomentoenelqueenlas trespoblacionesseencuentramayorporcentajedeindividuosenmadurezypuesta.A partirdelmesdeabrilcomienzanaaparecerindividuosenestadioE4derenovación gonadal,estadiodeformacióndenuevascélulasvesiculares,coincidiendoconun incrementodeglucógenoengónada. Losvaloresdelcontenidodeglucógenoengónadaaumentandurantela primaveraparaalcanzarelmáximodurantelosmesesdeoctubreynoviembre.Esen estemomentocuandoseencuentramayornúmerodeindividuosenestadioE4de renovacióngonadalyE1deiniciodelagametogénesis,enambosestadiospredominan lascélulasvesicularesdentrodelosfolículos.Amedidaqueavanzalagametogénesis sevaconsumiendoelglucógenoylacantidaddeglucógenoengónadavuelvea decrecerhastaencontrardenuevolosmínimosvaloresapartirdelmesdemarzo.
Resultados 65 FIGURA3.23:Variacióndelglucógeno(mgglucógeno/gpesoseco)enV.pullastraenlastres poblacionesdeestudio. 0 50 100 150 200 250 300 350 400 nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 abr‐05 mgglucógeno/gpesoseco fecha Camariñas gónadafemenina gónadamasculina viandamenosgónadafemenina viandamenosgónadamasculina 0 50 100 150 200 250 300 350 400 nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 abr‐05 may‐05 mgglucógeno/gpesoseco fecha OGrovesubmareal gónadafemenina gónadamasculina viandamenosgónadafemenina viandamenosgónadamasculina 0 50 100 150 200 250 300 350 400 nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 abr‐05 may‐05 mgglucógeno/gpesoseco fecha OGroveintermareal gónadafemenina gónadamasculina viandamenosgónadafemenina viandamenosgónadamasculina
3.Cicloreproductivo 72 0 50 100 150 200 otoño invierno primavera verano mglípidosenvíscera/gpesoseco Camariñas OGrovesubmareal OGroveintermareal Encuantoalavariacióndeloslípidostotalesenelrestodelindividuo,éstosno presentanningunatendenciaadiferenciadelagónada.Losvaloresoscilanentrelos50 y100mg/gpesoseco,sindiferenciaentresexos.Elcontenidodelípidosengónadaes superioraladelrestodelindividuo,variandoentre70y220mg/gpesoseco. Enlafigura3.28secomparanestadísticamentelosvaloresagrupadospor estacionesdelacantidaddelípidosengónadayenvísceraenlastrespoblaciones. 0 50 100 150 200 otoño invierno primavera verano mglípidosengónada/gpesoseco Camariñas OGrovesubmareal OGroveintermareal b b a a a a a a a aa b b ab bb aa aa bb bb FIGURA3.28:Cantidaddelípidosengónada(arriba)yenvíscera(abajo)enmg/gpesosecoenlastres poblacionesestudiadasdeV.pullastra.Diferentesletrasrepresentandiferenciassignificativasentre losvaloresenlamismaestación.
Resultados 73 Lastrespoblacionesacumulanigualcantidaddelípidosengónadaduranteel veranoyelotoño.Eninvierno,enOGroveintermareal,seacumulasignificativamente menorcantidaddelípidosqueenlasotrasdospoblaciones.Enprimaverahaymayor cantidaddelípidosengónadaenOGrovesubmarealqueenlasotrasdospoblaciones. Enelrestodelindividuoseacumulasignificativamentemayorcantidadde lípidosenlapoblaciónsubmarealdeOGrovedurantelosmesesdeotoño,inviernoy primaveraconrespectoalasotraspoblaciones.Enveranotambiénacumulamás cantidadquelapoblacióndeCamariñas,aunquenosediferenciasignificativamente conOGroveintermareal. 3.3.5EVOLUCIÓNDELACOMPOSICIÓNBIOQUÍMICAENRELACIÓNCONELCICLO GAMETOGÉNICO Acontinuaciónsepresentanlosdatosanteriormenteexpuestospero resumidos.Semuestraencadapoblaciónlosdatosconjuntosdelciclogametogénico demachosyhembras;asícomolosdatosdelcontenidobioquímicoengónadaeÍndice deCondicióngonadal. EnlapoblacióndeCamariñas(Figura3.29),seobservadurantelosmesesde primaveraunadisminucióndrásticaenlacantidaddeglucógenoylípidosengónada, coincidiendoconlaépocaenlacualencontramosunnúmeromáximodeindividuosen estadiodemadurezypuesta,yasuvezelmínimoenelÍndicedeCondicióngonadal. Durantelosmesesdeotoñolosvaloresdeglucógenoylípidosengónadavuelvena aumentarcoincidiendoconlaaparicióndeindividuosenrenovacióngonadalcon formacióndenuevascélulasvesiculares.
3.Cicloreproductivo 74 0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500 nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jul‐04 ago‐04 sep‐04 oct‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 abr‐05 Proteínas,GlucógenoyLípidos(mg/g) %E4 %E3 %E2 %E1 Glucógeno Lípidos Proteínas Enlasfiguras3.30y3.31semuestranlasgráficascorrespondientesalas poblacionessubmarealeintermarealdeOGrove. 0 1 2 3 4 5 6 I.C.G I.C.G. 0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500 nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 abr‐05 may‐05 Proteínas,GlucógenoyLípidos(mg/g) %E4 %E3 %E2 %E1 Glucógeno Lípidos Proteínas 0 1 2 3 4 5 6 I.C.G I.C.G. FIGURA3.29:Representaciónsimplificadadelciclogametogénico,delÍndicedeCondicióngonadal (I.C.G.)en%,ydelacantidaddeglucógeno,proteínasylípidostotalesenmg/gpesoseco. PoblacióndeCamariñas. FIGURA3.30:Representaciónsimplificadadelciclogametogénico,delÍndicedeCondicióngonadal (I.C.G.)en%,ydelacantidaddeglucógeno,proteínasylípidostotalesenmg/gpesoseco. PoblacióndeOGrovesubmareal.
Resultados 75 Aunqueenlastrespoblacionessehaobservadounpatróndedesarrollo gonadalmuysimilar,seobservaenlasdospoblacionesdeOGrovemayor heterogeneidaddeestadiosdentrodeunmismomuestreo.Enlapoblaciónde Camariñas,entrelosmesesdeabrilyagosto,latotalidaddelapoblaciónseencuentra enestadioE3(madurezypuesta)yE4(renovacióngonadal),observandolaépocade gametogénesis(E1yE2)enlosmesesdeseptiembreamarzo.Sinembargo,enlasdos poblacionesdeOGrovelaépocadegametogénesis,estadioE1(iniciodela gametogénesis)yE2(gametogénesisavanzada),seprolongadurantemásmesesenel año.Debidoaesto,losvaloresdeglucógeno,lípidosyproteínasengónada,no alcanzanvalorestanaltoscomoenlapoblacióndeCamariñas. DentrodelasdospoblacionesdeOGrove,enlaintermarealencontramosmás individuosengametogénesisymenosenmadurezypuestaconrespectoalapoblación submareal. FIGURA3.31:Representaciónsimplificadadelciclogametogénico,delÍndicedeCondicióngonadal (I.C.G.)en%,ydelacantidaddeglucógeno,proteínasylípidostotalesenmg/gpesoseco. PoblacióndeOGroveintermareal. 0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500 nov‐03 dic‐03 ene‐04 feb‐04 mar‐04 abr‐04 may‐04 jun‐04 jul‐04 ago‐04 oct‐04 nov‐04 dic‐04 ene‐05 feb‐05 mar‐05 abr‐05 may‐05 Proteínas,GlucógenoyLípidos(mg/g) %E4 %E3 %E2 %E1 Glucógeno Lípidos Proteínas 0 1 2 3 4 5 6 I.C.G I.C.G.
3.Cicloreproductivo 76 FIGURA3.33:AnálisisdeComponentesPrincipalesenlapoblacióndeOGrovesubmareal.ICG: ÍndicedeCondicióngonadal;ICV:ÍndicedeCondiciónvisceral;GlucGon:glucógenoenlagónada; GlucVisc:glucógenoenlavíscera;PrGon:proteínasenlagónada;PrVisc:proteínasenlavíscera; LipGon:lípidosenlagónada;LipVisc:lípidosenlavíscera;E1:iniciodelagametogénesis;E2: gametogénesisavanzada;E3:madurezypuesta;E4:renovacióngonadal. SerealizóunAnálisisdeComponentesPrincipalesparadiscriminarlas tendenciasdelacomposiciónbioquímicaconrespectoalosestadiosgametogénicosy alosÍndicesdeCondicióngonadalyvisceraldeacuerdoconlosejesprincipales.Enlas figuras3.32,3.33y3.34serepresentanlosresultados. FIGURA3.32:AnálisisdeComponentesPrincipalesenlapoblacióndeCamariñas.ICG:Índicede Condicióngonadal;ICV:ÍndicedeCondiciónvisceral;GlucGon:glucógenoenlagónada;GlucVisc: glucógenoenlavíscera;PrGon:proteínasenlagónada;PrVisc:proteínasenlavíscera;LipGon: lípidosenlagónada;LipVisc:lípidosenlavíscera;E1:iniciodelagametogénesis;E2:gametogénesis avanzada;E3:madurezypuesta;E4:renovacióngonadal.
Resultados 77 Delanálisisdelosresultadosenlastrespoblacionessededucequeambos ÍndicesdeCondición,lacantidaddeglucógenoengónadayenvíscera,lacantidadde lípidosengónada,elporcentajedeindividuosenestadioE1deiniciodela gametogénesisyelporcentajeenE4derenovacióngonadal,tieneuncomportamiento similarencuantoasuvariacióntemporal,indicandoquesiguenelmismopatrónde evoluciónalolargodelaño. Porotrolado,lacantidaddeproteínasengónadapresentalamismaevolución temporalqueelporcentajedeindividuosenestadioE3demadurezypuesta, siguiendoambosvaloresunaevolucióntemporalsimilarenlastrespoblaciones. Lacantidaddeproteínasydelípidosenvísceranotieneuncomportamiento similarencuantoasuvariacióntemporalyaladelrestodecomponentes,loque indicaríaquesuvariaciónnoestaríarelacionadaconlaevolucióndelciclo gametogénico. FIGURA3.34:AnálisisdeComponentesPrincipales.PoblacióndeOGroveintermareal.ICG:Índice deCondicióngonadal;ICV:ÍndicedeCondiciónvisceral;GlucGon:glucógenoenlagónada;GlucVisc: glucógenoenlavíscera;PrGon:proteínasenlagónada;PrVisc:proteínasenlavíscera;LipGon: lípidosenlagónada;LipVisc:lípidosenlavíscera;E1:iniciodelagametogénesis;E2:gametogénesis avanzada;E3:madurezypuesta;E4:renovacióngonadal.
3.Cicloreproductivo 78 Serealizóunestudiodecorrelaciónentrelosdistintoscomponentes bioquímicosylosestadiosgametogénicosenlastrespoblaciones(TablasIII.5,III.6y III.7).Enlastrespoblacionesseobservaquelacantidaddeglucógenoylípidosen gónadaestápositivamentecorrelacionada,al99%deconfianza,conlaaparicióndelos estadiosE4derenovacióngonadalyE1deiniciodelagametogénesis.Asuvez,el glucógenogonadalestánegativamentecorrelacionado(al99%deconfianza)conla cantidaddeproteínasengónadayconelestadioE3demaduracióngonadal. Encuantoalcontenidobioquímicoenlavíscera,delostrescomponentes,sólo elglucógenotieneigualcomportamientoqueengónada,porloqueparecequesu evoluciónpodríaestarrelacionadoconelciclogametogénico.Seobservaqueamayor cantidaddeglucógenoenvíscera,haymayorcantidaddeglucógenoylípidos,ymenor cantidaddeproteínasengónada.Asímismo,lacantidaddeglucógenoenvísceraestá relacionadoconelestadiogametogénicoal99%deconfianza,siendomásabundante duranteelestadioE4ymenosduranteelE3. TABLAIII.5:Coeficientedecorrelaciónentrelosdistintoscomponentesbioquímicosylosestadios gametogénicosenlapoblacióndeCamariñas.ICG:ÍndicedeCondicióngonadal;ICV:ÍndicedeCondición visceral;GlucGon:glucógenoenlagónada;GlucVisc:glucógenoenlavíscera;PrGon:proteínasenla gónada;Prvisc:proteínasenlavíscera;LipGon:lípidosenlagónada;LipVisc:lípidosenlavíscera. Negrita:correlaciónsignificativa,*al95%deconfianza,**al99%deconfianza. ICGICVGlucGonGlucVisc PrGonPrViscLipGonLipViscE1E2E3E4 ICG‐ 0,801**0,669**0,808** ‐0,437** ‐0,416**0,517**‐0,1110,329**0,041‐0,346**0,259* ICV‐ ‐ 0,757**0,858**‐0,516**‐0,336**0,527**‐0,0850,669**0,227*‐0,650**0,295** GlucGon‐ ‐ ‐ 0,871** ‐0,516** ‐0,247*0,609** ‐0,337**0,607**0,133‐0,611**0,440** GlucVisc‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,547**‐0,326**0,650**‐0,290**0,607**0,042‐0,571**0,498** PrGon‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,004‐0,576**0,272* ‐0,591** ‐0,287**0,586**‐0,172 PrVisc‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,1150,0660,026‐0,298**0,202*0,005 LipGon‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,1040,413**0,337** ‐0,515**0,101 LipVisc‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,303**0,0420,128‐0,085 E1‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 0,203* ‐0,768**0,342** E2‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,642**‐0,476** E3‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,277* E4‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐
Resultados 79 TABLAIII.6:Coeficientedecorrelaciónentrelosdistintoscomponentesbioquímicosylosestadios gametogénicosenlapoblacióndeOGrovesubmareal.ICG:ÍndicedeCondicióngonadal;ICV:Índicede Condiciónvisceral;GlucGon:glucógenoenlagónada;GlucVisc:glucógenoenlavíscera;PrGon: proteínasenlagónada;Prvisc:proteínasenlavíscera;LipGon:lípidosenlagónada;LipVisc:lípidosenla víscera.Negrita:correlaciónsignificativa,*al95%deconfianza,**al99%deconfianza. TABLAIII.7:Coeficientedecorrelaciónentrelosdistintoscomponentesbioquímicosylosestadios gametogénicosenlapoblacióndeOGroveintermareal.ICG:ÍndicedeCondicióngonadal;ICV:Índicede Condiciónvisceral;GlucGon:glucógenoenlagónada;GlucVisc:glucógenoenlavíscera;PrGon: proteínasenlagónada;Prvisc:proteínasenlavíscera;LipGon:lípidosenlagónada;LipVisc:lípidosenla víscera.Negrita:correlaciónsignificativa,*al95%deconfianza,**al99%deconfianza. ICGICVGlucGonGlucViscPrGonPrViscLipGonLipViscE1E2E3E4 ICG‐ 0,837**0,462**0,367**‐0,1700,0510,261**0,079 ‐0,067‐0,313**0,0260,471** ICV‐ ‐ 0,586**0,561**‐0,305**0,0100,315**0,020‐0,065‐0,208*‐0,1090,573** GlucGon‐ ‐ ‐ 0,688** ‐0,786**0,392**0486**0,0620,565** ‐0,147* ‐0,624**0,812** GlucVisc‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,543**0,438**0,280**‐0,1290,182‐0,061‐0,342**0,539** PrGon‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,345** ‐0,376**0,104‐0,633**0,0770,623** ‐0,620** PrVisc‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 0,220*‐0,0080,186*0,040‐0,296**0,230* LipGon‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 0,318**0,381** ‐0,269** ‐0,372**0,549** LipVisc‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 0,000‐0,142‐0,1210,349** E1‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,202* ‐0,650**0,473** E2‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,423**‐0,332** E3‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,554** E4‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ICGICVGlucGonGlucViscPrGonPrViscLipGonLipViscE1E2E3E4 ICG‐ 0,821**0,562**0,561** ‐0,357** ‐0,1100,354**0,0780,104‐0,470**0,1170,386** ICV‐ ‐ 0,503**0,537**‐0,353**‐0,0970,228*0,1330,164‐0,610**0,0660,579** GlucGon‐ ‐ ‐ 0,910** ‐0,826** ‐0,285**0,735**‐0,0300,695** ‐0,285** ‐0,564**0,164 GlucVisc‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,705**‐0,269**0,659**0,0210,600**‐0,284**‐0,515**0,256* PrGon‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 0,353** ‐0,555**0,103‐0,616**0,1870,497**‐0,042 PrVisc‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,0400,027‐0,275**0,320**0,112‐0,194* LipGon‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 0,1400,410**‐0,001‐0,411**‐0,035 LipVisc‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,267**‐0,1490,238*0,291** E1‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,219* ‐0,768**‐0,144 E2‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐0,303**‐0,671** E3‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 0,177 E4‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐
3.Cicloreproductivo 80 Laevolucióndelasproteínasyloslípidosenlavísceraparecequenoestá relacionadoconelavancedelciclogametogénico,puestoquelastrespoblaciones muestrancomportamientosdistintos,sinrelaciónconlaevolucióndelosmismosen gónada. EnlatablaIII.8semuestraunamediadelosdatosdecomposiciónbioquímica deV.pullastraalolargodelaño.Engeneral,enlastrespoblacioneselcomponente mayoritariodelagónadasonlasproteínas,encontrándosevaloresentreun25% duranteelotoñoyun45%durantelaprimavera.Elsiguientecomponentemayoritario eselglucógeno,queenépocasdeacumulaciónllegaaconstituirhastael30%dela gónada,mientrasquedespuésdesuutilizaciónparalaformacióndegametostansólo representael5%.Porúltimo,loslípidosensuépocademáximaacumulaciónno superanel15%delcontenidoenpesosecodelagónada. Enelrestodelindividuolasproteínassontambiénelcomponentemayoritario, representandoentreel40yel55%delpesosecodelavíscera.Loslípidosyel glucógenonosobrepasancadaunoel10%delpesosecodelavíscera. TABLAIII.8:Componentesmayoritarios(enporcentaje)delagónadaylavísceradeV.pullastra. PROTEÍNAS GLUCÓGENO LÍPIDOS GÓNADA25‐45 5‐30 5‐15 VÍSCERA40‐55 5‐10 5‐10 TOTAL40‐50 5‐20 5‐10
Resultados 81 3.3.6PARASITOLOGÍADELASPOBLACIONESDEESTUDIO Traslaobservaciónalmicroscopioópticodelaspreparacioneshistológicas realizadasparaelestudioparasitológico,sedetectaronlosparásitosyalteraciones patológicasquesedescribenacontinuación: BACTERIAS: Coloniasintracelularesdetiporicketsiano(Figuras3.35.1y3.35.2): Coloniasbasófilasintracelulares,tamaño2‐7µm,aparecenenlascélulas epitelialesdelasbranquiasytúbulosdigestivos. Quistesbacterianos: Coloniasextracelulares,100‐200µmdetamaño,rodeadasporunacubierta fibrosa,selocalizanenlabasedelepiteliobranquialytejidoconjuntivo. PROTISTAS: Ciliados(Figuras3.35.3,3.35.4,3.35.5y3.35.6): Seencuentranprincipalmenteenbranquiasycavidadpaleal,aunquetambién enellumenintestinal.Presentanunmacronúcleoyunmicronúcleo.Dentrodelos ciliadosobservadosseencuentranindividuosdelgéneroTrichodinasp.yRynchodida sp. Gregarinanoidentificada(Figura3.36.7): Localizadaenelepiteliointestinalyconjuntivoadyacente. Coccidios(Figura3.36.8): Seencuentranenelriñón,puedenaparecerendiversasfases:microgamontes, macrogamontes,esporoquistes,etc. MicrosporidiotipoSteinhausia(Figura3.36.9): Seencuentraenformadequistesconesporasdentrodelosovocitos.
3.Cicloreproductivo 88 Seobservarontambiéntrematodosenlafasedecercariasymetacercarias.En elcasodelascercarias,losesporoquistesllegabanaocuparlatotalidaddelagónada provocandolacastración;mientrasquelasmetacercariasaparecíanenquistadasenel pie,mantoopalposlabiales,conunaligerareacciónhemocitaria.Estasdosfases aparecieronconmayorfrecuenciaenCamariñas,enOGrovesubmareallaprevalencia fueligerayocasional.EnlapoblaciónintermarealdeOGrovedestacalaapariciónde metacercariasenquistadasentrelosplieguesdeformacióndelaconchaenelreborde delmanto. ElturbelarioParavortexsp.fuedetectadoenlastrespoblaciones,mientrasque Urastomasp.sóloaparecióendosdeellas.
Discusión 89 3.4DISCUSIÓN LaalmejababosaVenerupispullastraposeeunperíodomuydilatadode madurezypuesta,abarcandoprincipalmentelosmesesdesdefebreroajulio,y observándoseenlosmesesdeabril‐mayounpicodemáximapuesta.Enestosmeses escuandoempiezaaaumentarlatemperaturadelaguayhaymayordisponibilidadde alimento,porloqueesteperíododepuestapodríaserunaestrategiaparamaximizar elcrecimientodelarvasysemillaenprimavera‐verano(Holland,1978). Seobservaqueduranteelperíododemadurezypuesta,losfolículosgonadales presentanabundantesgametosmadurosyasuvezespaciosvacíosdegametosya expulsados,peroademás,enlasparedesdelfolículoaparecennuevaslíneas germinalespermitiendoqueesteperíodoseprolonguedurantemesesenestaespecie. EstasimultaneidaddeprocesostambiénlaencontraronRodríguezMoscoso(2000)y Ojeaetal.(2002)enRuditapesdecussatus. OtradelascaracterísticasdelcicloreproductivodeV.pullastra,adiferenciade otrosvenéridoscomolaalmejafinaR.decussatus(Ojeaetal.,2002)olaalmeja japonesaR.philippinarum(Drummondetal.,2006),esquenoposeeunperíodode reposo;esdecir,cuandolagónadadejadeproducirgametossecomienzanaformar célulasvesicularesparacomenzarunnuevociclodegametogénesis.Desdeeste estadioE4derenovacióngonadal,congametosresidualesycélulasvesiculares,se pasaalestadioE1deiniciodelagametogénesis,donde,ademásdelascélulas vesiculares,seobservannuevaslíneasgerminales. Lainexistenciadeunestadioderepososeconfirmasitenemosencuentaque delas1.633preparacioneshistológicasexaminadasenesteestudio,sólo12se correspondíanconindividuosindeterminados.Estosindividuospresentabaneltejido foliculartotalmentedesarrolladoyrepletodecélulasvesiculares,perolaausenciade gametosimpidióladiferenciaciónsexualdeestosindividuos.EnestaespecieÁlvarez
3.Cicloreproductivo 90 Fariña(2005),afirmabaqueelestadio0comotaleraescaso,debidoalarápida colonizacióndeltejidodereservaporprotogonias. EsfrecuentequeduranteelestadioE4derenovacióngonadalseobserve asincroníafolicular,observándosefolículosendiferentesestadiosdentrodeun mismoindividuo.Esteestadioapareceprincipalmenteduranteelperíodoverano‐ otoño,épocadetransiciónentrelamadurezycomienzodeunnuevociclode gametogénesis.Enestaépocaencontramosfolículosenmadurez,folículosque empiezanaformarcélulasvesiculares,einclusoalgúnfolículoenreabsorción. Enunestudiorealizadoenestamismaespecie,Villalbaetal.(1993a) detectarondesarrollosincrónicoentodoslosfolículosenlosindividuosmacho, mientrasqueenlashembras,engeneral,observaronfolículosendistintoestadio gametogénico.Enelpresenteestudio,losindividuosconasincroníafolicular,se clasificaronsegúnelestadiopredominanteenlagónada. Esdedestacarqueenlastrespoblacionessehaobservadounpatrónde desarrollogonadalmuysimilar,aunqueenlasdospoblacionesdeOGrovehaymayor heterogeneidaddeestadiosenlosdistintosmuestreos,yaquealolargodelaño encontramosindividuosentodoslosestadios.Porelcontrario,enlapoblaciónde Camariñas,entrelosmesesdeabrilyagosto,latotalidaddelapoblaciónseencuentra enestadioE3(madurezypuesta)yE4(renovacióngonadal),quedandolaépocade gametogénesisactivarestringidaalosmesesdeseptiembreamarzo.ÁlvarezFariña (2005),enunapoblacióndeAIlladeArousa(SOdeGalicia)tambiénencontró heterogeneidaddeestadiosenlosdistintosmuestreos. Estehechoprobablementeesdebidoaqueseanpoblacionessometidasa distintosfactoresambientales,yaunqueelciclogametogénicoescaracterísticodela especie,lascondicionesambientaleslomodifican;latemperaturayladisponibilidad dealimentodeunapoblaciónsondosfactoresexógenosquecondicionanlosprocesos reproductivos(MacArthuryWilson,1967;Thompsonetal.,1974;Lubet,1986yLe Pennecetal.,1991).
Discusión 91 Elamplioperíododemadurezypuesta,laausenciadereposo,laasincronía folicularylaheterogeneidaddeestadiosdentrodeunmismomuestreopermiten,que laalmejababosapresentegametosmadurosdurantetodoelañoconposibilidadde serexpulsadosydegenerarnuevosreclutamientos. Estapresenciacontinuadadeovocitosmaduros,yafueconfirmadaenel trabajodePérezCamacho(1980)conlatécnicadefrotis,apuntandoqueenesta especieencontrabaalmenosun80%delashembrasconovocitosmadurosdurante todoelaño.Villalbaetal.(1993a),tambiéndetectaronhembrasconfolículosmaduros alolargodetodoelaño. Alestudiarlaspreparacioneshistológicasdeestetrabajo,seobservaquelas célulasvesicularescomienzanaaparecerduranteelestadioE4derenovacióngonadal, ocupancasilatotalidaddelagónadaenelestadioE1deiniciodelagametogénesis, comienzanadesaparecerenelE2degametogénesisactivaysoninexistentesenel estadioE3demadurezypuesta.Durantelosmesesdeprimaveraseobservauna disminucióndrásticaenlacantidaddeglucógenoylípidosengónada,coincidiendocon laépocaenlacualencontramosunnúmeromáximodeindividuosenestadioE3 (cuandonoseobservancélulasvesiculares).Durantelosmesesdeotoño,losvalores deglucógenoylípidosengónadavuelvenaaumentarcoincidiendoconlaapariciónde individuosengametogénesisy,porlotanto,decélulasvesicularesenlosfolículos gonadales.Conesteestudiosepuedededucirquelascélulasvesiculares, característicasdelaalmejababosa,tienenlacapacidaddeacumularglucógenoy lípidosparaserutilizadosprincipalmenteenlagametogénesis.ÁlvarezFariña(2005) enuntrabajorealizadomediantehistoquímica,observóqueenestaespecielascélulas vesicularestienenlacapacidaddeacumularglucógenoylípidosneutros. Enlafigura3.38serepresentaunesquemaconlaevolucióngeneraldelciclo gonadaldelaalmejababosaalolargodelaño.
FIGURA3.38: RepresentaciónesquemáticadelciclogametogénicodeV. pullastra alolargodelaño. 3.Cicloreproductivo 92
Discusión 93 Seharealizadoelestudiodelciclogametogénicoseparandoambossexosyen estaespecienoseobservóasincroníatemporalentremachosyhembras.Maiaetal. (2006)enunestudiorealizadoenPortugaltambiénencontraronsincronismode maduraciónentremachosyhembras;sinembargo,Villalbaetal.(1993a),enunbanco deOGrovesíencontraronasincroníaenestamismaespecie. DentrodelasdospoblacionesdeOGrove,enladelbancointermarealel númerodeindividuosenmadurezdurantetodoelaño,esmenorqueenlapoblación submareal,siendotambiénlosÍndicesdeCondiciónsignificativamenteinferioresenla poblaciónintermareal.Estopuedeserdebidoaqueéstaseencuentrasiempre sumergidayporlotanto,ladisponibilidaddealimentoesmásconstantequeenla poblaciónintermareal.Asuvez,lapoblacióndelbancointermarealestásometidaa períodosdedesecaciónyafactoresambientalescomolabajadadesalinidadpor lluviasolasubidadelastemperaturasduranteelperíododeverano. WalkeryHefferman(1994),encontrarondiferenciaseneldesarrollogonadal entrealmejas(Mercenariamercenaria)sembradasencuatronivelesmareales distintos,presentandolasdelintermarealmayorporcentajedeindividuos indiferenciadosquelasdelsubmareal.Eversoleetal.(1980)encontraronenM. mercenariamayorÍndicedeCondicióngonadalenlasalmejasprocedentesdelárea submareal.Sinembargo,noestáclarosiestasalmejasrespondenadiferenciasde temperatura,abundanciadefitoplancton,tiempodeexposiciónalalimentooalgún otrofactorfísicocausadoporlaexposiciónalasmareas(Eversole,2001).Enlos trabajosrealizadosporBorrero(1987)yFranz(1996)enelmejillónGeukensiademissa demostraronqueexistíaunretrasotemporalenelciclogametogénicoyuna disminuciónenelcrecimientoenaquellosmejillonessituadosaunnivelintermareal altoencomparaciónconlossituadosenunnivelintermarealbajo. Lacomposiciónbioquímicadelaalmejababosa,alolargodelciclo gametogénico,varíaprincipalmentedebidoaloscambiosqueseproducenenla gónada.Laevolucióndelacantidaddeproteínasydelípidostotalesenelrestodel individuo,nopresentaningunarelaciónconlaevolucióndelciclogametogénico,
3.Cicloreproductivo 94 manteniéndosemásomenosconstantesalolargodelaño;laevolucióndeestos componentesenlagónadapresentaunavariaciónclaraalolargodelciclo.Encuanto alglucógeno,sepresentaunaevoluciónparalelaenlagónadayenelrestodel individuo. Enlastrespoblacioneslacantidaddeglucógenoylípidosdisminuye notablementeenaquellosmesesenloscualeslosindividuosestánenlamáxima madurezypuesta.Lavariacióndelasproteínasesinversaaladelrestode componentes,aumentandocuandoéstosdisminuyen.González(1975)enestamisma especie,yaobservabaquehabíaunarelacióninversaentreproteínasyglucógeno, disminuyendolafracciónproteicadesdeunmáximoenprimaveraaunmínimoen otoño,yalcanzandoelglucógenosumáximoenotoñoysumínimoenprimavera. Estaevolucióndeloscomponentesbioquímicos,enrelaciónconelciclo gametogénico,tambiénsedaenotrasespeciesdebivalvoscomoenlaostraOstrea edulis(Ruiz,1992),laalmejafinaR.decussatus(RodríguezMoscoso,2000)yel longueirónEnsissiliqua(MartínezPatiño,2002). Enestudiosrealizadosendiferentesmoluscosbivalvossedescribendostipos deestrategias:laoportunistaylaconservadora.Así,enalgunasespecieselperíodode produccióndegametoscoincideconeldemayordisponibilidaddenutrientes,porlo quemuestranunaflexibilidadensuestrategiareproductoraasociadaaunestilode vidaoportunista(MacArthuryWilson,1967yLubet,1986).Enlasespeciesdeestilode vidaconservador,losnutrientessealmacenanendiferentesórganosdelcuerpoyla produccióndegametostienelugardurantelosperíodosdebajaproducciónde nutrientes.Otrasespeciessiguenunaestrategiaintermedia,utilizandolosnutrientes almacenadoscomocomplementodelosrecientementeasimilados,satisfaciéndoseasí losrequerimientosenergéticosdelareproducción(Sastry,1979). Laalmejababosatienelacapacidaddealmacenarreservasentejidos especializados(célulasvesiculares),queledanciertaindependenciaparaeldesarrollo delagametogénesisconrespectoalascondicionesmedioambientales.Así,acumula
Discusión 95 glucógenoylípidosduranteelveranoyotoño(estilodevidaconservador)para comenzarlagametogénesisenelinvierno,permitiéndoleempezaradesovarcuando comienzaaincrementarselatemperaturadelmar.Apartirdelaprimaveraseproduce unaumentoenladisponibilidaddealimentoenelmar,porloqueduranteestaépoca sesiguenproduciendogametos(estilodevidaoportunista).Estolehacetenerventaja competitivafrenteaotrasespecies,siendolainversiónenergéticamáseficienteala horaderepartirelgastoenergéticoentrereproducciónycrecimiento(ÁlvarezFariña, 2005). EsenlaprimaveradondeseencuentranlosvaloresmásbajosenlosÍndices deCondicióngonadalyvisceralenlastrespoblacionesdeestudio.Estedatocoincide conPérezCamacho(1980),queafirmaqueenesaépocaseobservanmenores contenidosencarneenlaalmejababosa. Observandolosdatosdelciclogametogénico,lapoblacióndeCamariñas presentabaunamayorsincroníaentrelosindividuos;mientrasqueenlaspoblaciones deOGrovelosestadiosseencuentranmássolapados.Esporelloqueenlaprimera población,laevolucióndeloscomponentesbioquímicosseencuentramásmarcada.Al encontrarmayorproporcióndeindividuosengametogénesisduranteelotoñoen Camariñas,lacantidaddeglucógenoessignificativamentemayorqueenlasotrasdos poblaciones.EnlasdeOGrove,alnohabertantasincroníaentrelosindividuos,la variacióndeloscomponentesbioquímicospresentamásoscilacionesapesardetener lamismaevoluciónqueenCamariñas. Todoslosparásitosdetectadosenesteestudioyahabíansidodescritosenla almejafina(R.decussatus),babosa(V.pullastra)yrubia(V.rhomboides)deGalicia (Villalbaetal.,1993b;López,1995yOrdásetal.,2001).Sinembargo,nohayestudios sobreelefectoenlareproduccióndeestosparásitosenlaalmejababosadeGalicia. LosresultadosmuestranqueaexcepcióndePerkinsusolseniylos esporoquistesdetrematodos,elrestodelosparásitosnocausanmayortrastornoen elindividuo,comomuchodesencadenanunareacciónhemocitarialigeraalrededor
3.Cicloreproductivo 96 delparásito.Sinembargo,sehanobservadoinfeccionesgravesporP.olseni,queen algunoscasosllegabaaocuparhastaun50%delagónada.Enelcasodelos esporoquistesconcercariasdetrematodos,éstoslleganainvadirlatotalidaddela gónadaprovocandolacastración. Estasinfeccionesyasehabíanobservadoenotrasespeciesdebivalvosde Galicia,comoenlaalmejafinaparasitadaporP.olseni(Casas,2001),enlanavajayel berberechoporesporoquistesdetrematodos(Darriba,2001eIglesias,2006).Con relaciónalas3zonasdeestudio,destacalamayorprevalenciadeP.olsenienlazona intermarealdeOGroveconrelaciónalaszonassubmareales,loquepodríaindicaruna influenciadelnivelmarealsobrelapresenciadeesteparásitoenlaalmejababosa.Son necesariosmásestudiosparaconfirmarestosdatos.
4.CAPÍTULOII: DESARROLLOEMBRIONARIOY LARVARIO
4.Desarrolloembrionarioylarvario 104 4.2.3PROCESADOPARAELMICROSCOPIOELECTRÓNICODETRANSMISIÓN DesdelaaparicióndelagástrulahastalalarvaDserecogióunamuestracada doshoras,parasuposteriorvisionadoenelmicroscopioelectrónicodetransmisión. Aligualqueparaelmicroscopioelectrónicodebarrido,lafijacióndelas muestrasserealizóconglutaraldehídoylapostfijacióncontetraóxidodeosmio. Posteriormentesedeshidrataronconlasiguienteescaladeacetonas: acetonaal50%(1x10min) acetatodeuranilo1%enacetonaal70%(1x60min) acetonaal70%(2x15min) acetonaal80%(2x15min) acetonaal90%(2x15min) acetonaal95%(2x15min) acetonaal100%(2x15min) Despuésdequelasmuestrasfuerondeshidratadasseimpregnaronenresina Spurr,enneveraa4ºCyrotor: 1Spurr:3acetona(1x2h) 1Spurr:1acetona(1x2h) 3Spurr:1acetona(1x3‐4h) Posteriormenteseincluyeronenresinatotalatemperaturaambiente: resinatotal(1x2‐5h) resinatotal(1x12h) resinatotal(1x2h) FinalmenteseincluyeronenresinaSpurr,a60ºCdurante48h.
Materialymétodos 105 Parapoderrealizarcortesdelosbloquesserealizóelpiramidadodelbloque conelpiramidotomoLeicaUltratim.Posteriomenteserealizaronsemifinosquese tiñeronconazuldemetilenoyseobservaronconelmicroscopioóptico,para seleccionarlaszonasdeinterés.Serepiramidóelbloqueyserealizaronloscortes ultrafinos,deaproximadamente70‐90nm,conelultramicrotomoLeicaReichert Ultracut. Paraelcontrastadodelasmuestrasseimpregnaronlosultrafinoscon disolucionesdemetalespesados;seaplicóunadisoluciónacuosadeacetatodeuranilo 2%durante30minyunadisolucióndecitratodeplomodurante10min. FinalmentelasmuestrasseobservaronconunmicroscopioDualBeamFocused IonBeam(FIB)FEIHelios600NanolabunFIBFEIHeliosparalasmicrofotografíasdelos embrionescompletosyconelmicroscopioelectrónicodetransmisiónJeolJem1010 paralosdetalles.
4.Desarrolloembrionarioylarvario 106 4.3RESULTADOS 4.3.1DESARROLLOEMBRIONARIOYLARVARIO EnlatablaIV.1semuestraeltiempodeaparicióndecadaunodelosdistintos estadiosembrionariosylarvariosobservadosyelrangodetallasmedioobtenidoen losdoscultivosestudiados. TABLAIV.1:EstadiosembrionariosylarvariosdeV.pullastra.Tiemposdeaparicióndesdelafertilización yrangodetallasdecadaestadio. EstadioTiempodesdefertilizaciónTamaño(µm) Huevosinfecundar0h65‐75 Estadiode2células1h30min80‐90 Estadiode4células2h80‐90 Estadiode8células2h30min80‐90 Estadiode16células3h30min80‐90 Estadiode32‐64células4h80‐90 Blástula5h30min80‐90 Gástrula7‐8h80‐90 Trocófora13‐14h80‐90 LarvaD30‐32h100‐105 LarvaUmbonada8‐9días140‐150 LarvaPediveliger16‐18días220‐240 Postlarva21‐22días250‐270
Resultados 107 Elovocitosinfecundaresesférico,marrónyestárecubiertode microvellosidades(Figuras4.1y4.11).Eldiámetrodelosovocitosesdeentre65y75 µm.Losespermatozoidesposeenunacabezaconunos4µmdelargoyunflagelode unas45µmdelongitud(Figura4.9).Lacabezadelespermatozoidepresentaunaforma cilíndricayenlabaseseobservan4mitocondrias(Figura4.10).Alos30minutostrasla fecundaciónapareceelprimercorpúsculopolar. Elestadiode2célulassealcanza1hy30mintraslafecundación.Presentael corpúsculopolarenelplanodedivisiónyseobservandosblastómerosdesiguales,uno máspequeño(AB)enelpoloanimalyunomásgrande(CD)enelpolovegetal(Figuras 4.2y4.12). Despuésde2hpost‐fertilizaciónsealcanzaelestadiode4células,con3 blastómerosiguales(A,B,C)enelpoloanimalyunmacrómero(D)enelpolovegetal (Figuras4.3y4.13).Alas2hy30minseobservaelestadiode8célulascon7 micrómerosdispuestosenelpoloanimalsobreunmacrómerolocalizadoenelpolo vegetal(Figuras4.4y4.14). Lasdivisionessevansucediendoyalas4hdespuésdelafertilización,la mayoríadelosembrionesestánenestadiode32‐64células(Figuras4.6,4.7y4.15).A medidaquevanaumentandolasdivisionesesdifícilprecisarelnúmeroexactode células,tantoalmicroscopioópticocomoalmicroscopioelectrónicodebarrido.Los micrómerosvanrecubriendoelmacrómerohastaquedartotalmenteenvueltopor ellos,dandolugar5h30minpost‐fertilizaciónalablástula(Figuras4.8y4.16).Esel primerestadioembrionariociliadoymóvil.Lamovilidaddelablástulaesreducida, limitándoseamovimientoscircularessindesplazamientolateral.
4.Desarrolloembrionarioylarvario 108 FIGURA4(1‐8):Microfotografíasalmicroscopioóptico deldesarrolloembrionariodeV.pullastra.1: Ovocitosinfecundar.2:Estadiode2células.3:Estadiode4células.4:Estadiode8células.5:Estadiode 16células.6:Estadiode32células.7: Estadiode64células.8: Blástula. Barrasdeescala:20µm. 1 56 34 2 78
Resultados 109 FIGURA4(9‐16):Microfotografíasalmicroscopioelectrónicodebarridodeldesarrolloembrionariode V.pullastra.9:Espermatozoide.10:Detalledelacabezadelespermatozoide,mitocondria(mit).11: Ovocitosinfecundar.12:Estadiode2células(AB,CD),vistalateral.13:Vistalateraldelestadiode4 células(A,B,C,D).14:Estadiode8célulasmostrandoelmacrómero(macr)ylosmicrómeros(micr), vistalateral.15:Estadiode32a64células.16:Blástula.Barrasdeescalafotos11,12,13,14,15y16:20 µm;foto9:10µm;foto10:2µm. AB CD AC B Dmacr micr 16 13 15 14 10 1112 9 mit
4.Desarrolloembrionarioylarvario 110 Lagastrulaciónocurreporepibolia,enellalosmicrómerossemultiplican rápidamenteysesitúanrodeandoalosmacrómerosquequedanenunaposición interna.Entrelas7y8horasdespuésdelafecundaciónseobservalagástrula,con ciliosdemayorlongitudquelablástula(Figuras4.17,4.18y4.19)yconmayor movilidadqueésta. Enesteestadioapareceelblastoporo,comoresultadodeunainvaginación,que inicialmenteseobservaenelpolovegetalyquesegúntranscurrelagastrulación,se desplazahacialaparteventraldelafuturalarva.Tambiénapareceotrahendidura, opuestaalblastoporo,correspondientealaglánduladelaconcha,quetieneuna formamásalargada(Figuras4.20y4.21). Unaseccióndelembrión,vistaamicroscopíaelectrónicadetransmisión(MET), muestraquelabasedeestahendiduraconstituyelaglánduladelaconcha(Figuras 4.22y4.23).Laglánduladelaconchaestáformadaporunaspocascélulasenlasque lasmicrovellosidadesvandesapareciendoprogresivamente.Estascélulassonlasque vanaelaborarelperiostracoyporelmomentosoncélulasindiferenciadas.
Resultados 111 FIGURA4(17‐19):GástruladeV.pullastra (7‐8hpost‐fertilización).17: Microfotografíaalmicroscopio óptico.18:Gástrulamostrandoelblastoporo(blas)ylainvaginacióndelaglánduladelaconcha(igc). Microscopioelectrónicodebarrido.19:Secciónsagitalalmicroscopioelectrónicodetransmisióndeuna gástrulamostrandoambasinvaginaciones,elblastoporo(blas)ylainvaginacióndelaglánduladela concha(igc).V:ventral,D:dorsal,A‐P:ejeanteroposterior.Barrasdeescala20µm. 17 18 19 blas igc blas igc DV A P
4.Desarrolloembrionarioylarvario 112 FIGURA4(20‐23):Microfotografíasalmicroscopioelectrónicodebarridoydetransmisióndeuna gástrulatardíadeV.pullastra.20:Gástrulatardíamostrandolainvaginacióndelaglánduladelaconcha (igc).Microscopioelectrónicodebarrido.21:Detalledelainvaginacióndelaglánduladelaconcha.22: Seccióntransversaldelagástrulatardíaatravésdelainvaginacióndelaglánduladelaconcha. Microscopioelectrónicodetransmisión.23:Detalledelainvaginaciónmostrandolascélulasdela glánduladelaconcha(asteriscos).Barrasdeescalafotos20y22:20µm;fotos21y23:5µm. 22 20 21 23 igc **
Resultados 113 Entrelas13‐14horaspost‐fertilizaciónlagástrulasetransformaenunatípica larvatrocóforapiriformeciliada,deunas60μmdelongitudapico‐basalyquenada másactivamentequelosestadiosanteriores(Figuras4.24y4.25).Latrocóforaposee unaregiónciliadaamododecoronallamadaprototroca,queladivideendosregiones desiguales.Enlaregiónanterioraparecelametatroca,unacoronadeciliosformada porunmechóndeciliosmáslargosconocidocomopenachoapical(Figuras4.26y 4.27).Enlaregiónposteriorunconjuntodeciliosjuntoalanoformalallamada telotroca.Enestaregiónposteriortambiénseencuentraelblastoporoquedarálugara labocaenlaparteventralylaglánduladelaconchasituadaenlapartedorsal,queen estemomentopresentaunapelículadeaspectomembranosoycontinuo,sinquese puedaobservarlacharnelayelligamento(Figuras4.28,4.29y4.30). LaglánduladelaconchavasecretandolaprodisoconchaIdeaspecto membranosoynocalcificada(Figuras4.31,4.32y4.33);enlatrocóforatardíala prodisoconchaIseextiendecubriendolossegmentosizquierdoyderechoconectados porunabandamásgruesa,queeslaprimeracharnela,estableciéndoselasimetría bilateral(Figuras4.34y4.35).ConMETsepuedeobservarcomoelperiostracose insertaenelbordedelmanto,dondeseencuentranlascélulassecretoras(T1)(Figuras 4.36y4.37).Lascélulassecretoras(T1)presentanunasmicrovellosidades,mientras queenlasnosecretoras(T3),cubiertasporelperiostraco,éstasnoestánpresentes. Nosehaconseguidoobtenerimágenesdelascélulassecretorasdelligamento(T2). LaprodisoconchaIseextiendetotalmentehastaqueenvuelvelaspartes visceralesdelalarva,laprototrocavaadarlugaralveloylatelotrocaalmechón postanal(Figuras4.38y4.39).Entrelas30y32horasdespuésdelafertilizaciónse observaelestadiodelarvaDveliger,conuntamañodeentre100y105µmylas valvastodavíanocalcificadasperoyaenvolviendotodaslaspartesblandasdelalarva (Figura4.40).
4.Desarrolloembrionarioylarvario 120 FIGURA4(41‐44):LarvaDdeV.pullastra 48horasdespuésdelafertilización.41:Microfotografíaal microscopioóptico.42:MicrofotografíasalmicroscopioelectrónicodebarridodelalarvaDconelvelo, vistalateral.Ciliospreorales(pre),adorales(ad)ypostorales(post).43:SecciónlongitudinaldelalarvaD almicroscopioelectrónicodetransmisiónconlasvalvas(val),elvelo(vel)ylacharnela(cha).44:Sección transversaldelaprodisoconchaIdelalarvaD.Seobservaunacapasecundaria,localizadaentreelmanto (M)yelperiostraco(flecha),enlaqueseincluyenlosprimeroscristalesdecalciodelaconcha (asteriscos).Barrasdeescalafotos41,42y43:20 µm;foto44:0,5µm. 42 41 43 vel cha pre ad post val M* * 44
Resultados 121 FIGURA4(45‐47):Microfotografíasalmicroscopioelectrónicodebarridode lalarvaDdeV.pullastra.45: VistadorsaldelalarvaDconlacharnela.46:LarvaDconlacharnelayelvelo.47:Vistaventraldelalarva Dconelvelo(vel)yelpenachopostanal(ppa).Barrasdeescala:20µm. 46 45 47 vel ppa
4.Desarrolloembrionarioylarvario 122 FIGURA4(48‐50): Larvaumbonadade V.pullastra 8‐9díasdespuésdelafertilización.48: Microfotografíaalmicroscopioópticodelalarvaumbonada.49:Larvaumbonadaalmicroscopio electrónicodebarridomostrandolatransicióndelaprodisoconchaI(pI)alaprodisoconchaII(pII).50: Detalledelatransición(flecha).Barrasdeescalafotos48y49:50µm;foto50:20µm. 49 48 50 pI pII
Resultados 123 FIGURA4(51‐53):MicrofotografíasalmicroscopioelectrónicodebarridodelalarvaumbonadadeV. pullastra.51:Larvaumbonadamostrandoelvelo.52:Larvaumbonada,vistaventral.53:Vistadorsalde lalarvaumbonadaconlacharnela.Barrasdeescala:50µm. 52 51 53
4.Desarrolloembrionarioylarvario 124 55 54 56 FIGURA4(54‐56):Larvapediveligerde16‐18díasdeV.pullastra. 54: Microfotografíasalmicroscopio ópticodeunalarvapediveligermostrandoelpieyelvelo.55:Microfotografíasalmicroscopioelectrónico debarridodeunalarvapediveligerconelpie.56:Detalledelpieciliadodelalarvapediveliger. Barrasdeescalafotos54y55:50µm;foto56:20µm.
Resultados 125 FIGURA4(57‐60):Postlarvade21‐22díasde V.pullastra. 57: Fotografía almicroscopioópticodela postlarva.58:FotografíaalmicroscopioelectrónicodebarridodelapostlarvaconlaprodisoconchaI(pI), laprodisoconchaII(pII)yladisoconcha(dis).59:DetalledelatransicióndelaprodisoconchaIIala disoconcha(flecha).60:Vistadorsaldelapostlarvaconlacharnela.Barrasdeescalafotos57,58y60: 100µm;foto59:50µm. 58 57 60 59 dis pI pII
4.Desarrolloembrionarioylarvario 126 4.4DISCUSIÓN Aunqueexistenestudiossobreeldesarrolloembrionarioymorfologíalarvaria deotrosbivalvosutilizandomicroscopíaelectrónicadebarrido(HodgsonyBurke, 1988;Bellolioetal.,1993;TardyyDongrad,1993;Grosetal.,1997;Mouëzaetal., 1999y2006;RaleighyKeegan,2007;Cannueletal.,2009;daCostaetal.,2008;da Costa,2009yAranda,2010),ésteeselprimeroqueserealizaenlaalmejababosa Venerupispullastra. EltamañodelosovocitosdeV.pullastraessimilaraldeotrasespeciesde VenéridosdeinteréscomercialenGalicia,comoRuditapesdecussatus,R. philippinarumyV.rhomboides(MartínezPatiñoetal.,2008y2010). LacabezadelosespermatozoidesdeV.pullastrapresentaunaforma cilíndrica,yesmáspequeñaqueladeR.decussatus(Aranda,2010),lacualpresenta unaformadetrompeta.Eltamañodelosespermatozoides,incluidalacola,essimilar aldeEnsissiliqua(daCosta,2009)yaldeotrasespeciesdeVenéridos,como AnomalocardiabrasilianayChionecancellata(Mouëzaetal.,1999y2006). Lasegmentacióndelhuevoes,aligualqueenelrestodelosbivalvos,espiraly conducealaformacióndeunablástuladeltipoesteroblástula,enlaquelos macrómerosrecubrentotalmentelosmicrómeros.LablástulaenV.pullastra,primer estadiociliado,aparece5hy30mindespuésdelafertilización.PérezCamachoy Román(1973)enunestudiorealizadoenestamismaespeciedetectaronlaaparición delosprimerosestadiosmóvilesentre6y7horasdespuésdelafertilización,un tiemposimilaralencontradoenesteestudio.Deentrelasespeciescultivadasen Galicia,eltiempodeaparicióndelablástulaenV.pullastraessimilaraEnsissiliquay R.decussatus,ymásrápidoqueenE.arcuatusyDonaxtrunculus(daCostaetal., 2008;Arandaetal.,2009;daCosta,2009yLouzán,comunicaciónpersonal).
Resultados 127 Aligualqueocurreenotrosbivalvoslagastrulaciónocurreporepibolia.Enella losmicrómerossemultiplicanrápidamente,ysesitúanrodeandoalosmacrómeros, formándoseasíelectodermoyelendodermo.EnV.pullastra,7‐8hdespuésdela fecundación,sedesarrollaunagástrula,tiemposimilaralobtenidopordaCosta (2009)enE.siliquayAranda(2010)enR.decussatus. ConelmicroscopioelectrónicodebarridoseconfirmaqueenlagástruladeV. pullastra,seobservandosinvaginaciones,elblastoporoylainvaginacióndela glánduladelaconcha.Enotrasespeciesdebivalvos,comoC.cancellata(Mouëzaet al.,2006),A.brasiliana(Mouëzaetal.,1999),R.decussatus(Aranda,2010),E. arcuatusyE.siliqua(daCostaetal.,2008ydaCosta,2009),tambiénseconfirmala presenciadeambasinvaginacionescuandolagástrulapresentaunospocoscilios, antesdeformarselaprototrocacaracterísticadelatrocófora. LalarvatrocóforaenV.pullastraaparece13‐14hdespuésdelafertilización, siendountiemposimilaraldelaaparicióndelatrocóforaenotrasespeciesde bivalvos,comoenR.decussatus,E.siliquayD.trunculus(Arandaetal.,2009;daCosta, 2009yLouzán,comunicaciónpersonal).Lalarvatrocóforanadaactivamentegraciasa lacoronadeciliosquepresenta,laprototroca. Lainvaginacióndelaglánduladelaconchaquesedesarrollaenelestadiode gástrula,enlatrocóforaaparecesituadadebajodelaprototroca.Graciasalas observacionesrealizadasconelmicroscopioelectrónicodetransmisión,ambas constituyenunahendiduraabiertaenlapartedorsaldelatrocófora,apartirdela cualsesecretaelperiostraco.Enlatrocóforatardíalasecrecióndelaglánduladela concha,deaspectomembranoso,sevaexpandiendoendireccionesopuestas, quedandolasdosregionesunidasporunabandamásgruesaqueserálafutura charnela.Finalmente,30hdespuésdelafertilización,elperiostracoacaba envolviendolaspartesblandasdelalarvayseformalalarvaD,característicaporla presenciadelveloylacharnelarecta.
4.Desarrolloembrionarioylarvario 128 Laformacióndelaprimeraconchalarvaria,segúnloobservadoenV.pullastra, seajustaconelmodelodescritoporMouëzaetal.(2006)paraelvenéridoC. cancellata,enelcualseproponíaunainterpretacióndistintaalapropuestapor Kniprath(1980)enMytilusgalloprovincialisyCasseetal.(1998)enPectenmaximus, lascualessebasabanenelmodelodescritoparagasterópodos.TantoenV.pullastra comoenC.cancellata,noesnecesarioquelainvaginacióndelaglánduladelaconcha secierreporcompletoparacomenzarlasecrecióndelperiostraco. ElestudiocomparativorealizadoconMEByMETmuestralosmovimientos morfogénicosquehacenquelaglánduladelaconchaselocaliceenposicióndorsal debajodelafuturaprototroca,enelquesedesarrollanunacapadecélulasciliadasde distintostiposcubriendolaglánduladelaconcha,apartirdelacualseformala prodisoconcha.EneltrabajorealizadoporMouëzaetal.(2006)enlaespecieC. cancellatadescribenlosdistintostiposdecélulas.Elperiostracoeslaprimeraparte visibledelaconchayseformaapartirdecélulassecretotasT1.Enunprimer momento,elperiostracoescontinuoyaquelospolosapicalesdelascélulassecretoras delligamentoT2estánrecubiertasporlascélulassecretotasT1.Ennuestroestudio conV.pullastranosehapodidoobservarlascélulassecretorasdelligamentoT2.Las célulasnosecretorasT3sederivandecélulasmadreT1ynoelaboranelmaterialdel periostraco,sinoqueproducenlacapaorgánicasegundadelaconchayestánligadas conlacalcificacióndelamisma. Traslaobservaciónalmicroscopioelectrónicodebarridosehapodido confirmarque,aligualqueenR.decussatus(Aranda,2010),enlalarvaDrecién formada,laprodisoconchaIestodavíadeaspectomembranoso,teniendoquepasar 48htraslafecundaciónparaquelasvalvasdelaprodisoconchaesténtotalmente calcificadas. ElórganomáscaracterísticodelalarvaDeselvelo,quedebidoasunaturaleza ciliada,esutilizadoparalanataciónylacapturadealimento.Apartirdeesteestadio, lalarvacomienzaaalimentarseylaprodisoconchacomienzaacrecer.La
Resultados 129 prodisoconchaI,secretadaporlaglánduladelaconcha,presentaunasuperficie punteada,mientrasquelaprodisoconchaII,secretadaporellóbulodelmantocuando lalarvaDcomienzaaalimentarse,presentaunasuperficieestriadaconcéntricamente. EnV.pullastra,entrelos16y18díasdespuésdelafecundación,aparecela larvapediveligerenlaqueseobservatodavíaelveloyelpie,ambosciliados.Eneste momentolalarvacomienzaabuscarunsubstratoparafijarse,pudiendonadarpor brevesperíodosdetiempoyreptarporelsubstrato.Durantelametamorfosiselvelo sereabsorbe,perdiendolafuncióndecaptacióndealimentoydesplazamiento, comenzandoadesarrollarselosfilamentosbranquiales. Despuésdelafijaciónymetamorfosis,22díasdespuésdelafecundación,la postlarvacomienzaacreceryelmantoinicialasecrecióndeladisoconcha, observándoseunaslíneasdecrecimientomásmarcadas.Adiferenciadeotros bivalvos,comoE.arcuatusyE.siliqua(daCostaetal.,2008ydaCosta,2009),R. decussatus(Aranda,2010)yD.trunculus(Louzán,comunicaciónpersonal),la disoconchadeV.pullastrapresentamicrovellosidades.Éstaspodríanservircomouna adaptaciónalmedioparamantenerseenterradosyevitareldesplazamientoporlas corrientesenlasprimerasfasespostlarvariastraslafijación.Unestudiosecuencialde lamorfologíadelaconchadepostlarvasysemillapermitiríadeterminardurantequé fasesestánpresentesestasmicrovellosidades.Además,puestoquenosehadescrito lapresenciadeéstasenotrasespeciesdebivalvoscomercialesdeGalicia,podríaser unbuencaráctertaxonómicoparalaidentificacióndepostlarvasdeV.pullastra. EnrelaciónaotrosbivalvosdeinteréscomercialenGaliciacultivadosenlas mismascondicionesenelCentrodeCultivosMariñosdeRibadeo,lametamorfosisen V.pullastratienelugarmástardequeenE.arcuatus(daCostaetal.,2008),E.siliquay Solenmarginatus(MartínezPatiño,2002)yesmásrápidaqueenR.decussatus (MartínezPatiñoetal.,2001),R.philippinarum(MartínezPatiñoetal.,2008)yD. trunculus(Louzánetal.,2009).
6.Cultivoenelmedionatural 232 TABLAVI.7:Desdobledelosdistintossublotesdelapruebaconmallade1mm. Lastasasdecrecimientosemantuvieronalpasarlasemillaabolsasdemayor luzdemalla,aunqueentrelasdistintasdensidadesnoseapreciatantadiferenciacomo seobservóenlasemillademenortamaño. Enlassiguientesfigurassemuestralaevolucióndelcrecimientodelasemilla estabuladaadistintasdensidades. FIGURA6.24:Evolucióndelcrecimientoenmmencadaunadelasdensidades. BATEAMALLA2mm Fechainicio:15/05/06Fechafinal:21/06/06 Densidad kg/m2 Talla (mm) Peso (mg/ind)DíasTalla (mm) Peso (mg/ind)GL30GW30Mort. 0,72<T34,82 13,76 37 11,78 235,98 70,69 224,784,22 1,44<T34,89 14,489,53 120,32 66,06 209,562,81 2,15<T34,61 11,978,48 83,09 63,93 202,881,39 0,89>T35,91 26,443714,05 413,4 59,85 190,421,15 1,79>T35,52 21,1814,06 414,71 63,33 201,483,80 3 5 7 9 11 13 15 mm 0,72<T3 1,44<T3 2,15<T3 0,89>T3 1,79>T3 15/05/06 21/06/06 3 4 5 6 mm 0,72 1,44 2,15 28/04/06 15/05/06 Malla1mm Malla2mm
Resultados 233 6.3.2CONTROLPATOLÓGICOYMADURACIÓNREPRODUCTIVADELASEMILLA SerealizóelestudiohistológicodelasemilladeV.pullastraqueseutilizóenlas experienciasdepreengordedelapartado6.3.1.1. 6.3.2.1CONTROLPATOLÓGICO EnlatablaVI.8semuestranlosresultadosdelestudiopatológicodelasemilla antesdeserintroducidaenelsistemadepreengordeydespuésdefinalizadaestafase. TABLAVI.8:Prevalencias(%)delosorganismosparásitosycomensalesobservadosencadaunadelas muestras. Coloniastiporicketsianoendig. Nematopsissp. Ciliadosenbranquia Ciliadosendigestivo Haplosporidio Steinhausiasp. Paravortexsp. Metazooendigestivo Metacercariaenpie FechaTalla Controlinicial04/11/047,2±0,10041500000 Controlfinal Batea11/04/0516,0±0,2023171033700 Intermareal23/06/0512,2±0,301010000300 Controlinicial21/04/058,4±0,2004000000 Controlfinal Batea26/05/0513,1±0,3003000000 Intermareal21/07/0511,8±0,603487001000 Controlinicial06/07/057,2±0,2000000000 Controlfinal Batea24/08/0514,7±0,20080300130 Int.OGrove03/11/0511,5±0,4323600001303 Int.Vilaxoán03/11/0512,0±0,2373327032700 Controlinicial01/02/067,0±0,2030300300 Controlfinal Batea20/04/0618,1±0,20010000700 Intermareal26/05/0611,8±0,100134501600 Controlinicial27/04/066,8±0,2000000000 ControlfinalBatea05/06/0612,7±0,20160008000 Enloscontrolesinicialesdedosdeloslotesnoseencontróningúnparásito,en otrosdossóloseobservaronciliadosyenotrolote,ademásdeciliados,se encontraronquistesdeNematopsissp.eindividuosdeParavortexsp.
6.Cultivoenelmedionatural 234 Enloscontrolesfinaleslasalmejasestabanafectadasporvariosparásitosy comensales.Enalgunasexperienciasseobservaronindividuosdelagregarina Nematopsissp.,aisladamentesedetectaronplasmodiosdehaplosporidioenelepitelio deldigestivoyquistesdeSteinhausiasp.enovocitos.Enlaexperienciaqueseinicióen veranode2005seobservaronalgunosmetazoosindeterminadosendigestivoy metarcercariasdetrematodoenpie.Encasitodaslasexperienciassedetectaron individuosdeParavortexsp.alfinaldelasexperiencias.Seencontraroncoloniasde tiporicketsianoenbranquiaalfinaldelaexperienciadeveranode2005queenel sistemaintermarealfinalizóennoviembre.Aunquenotieneimportanciapatológica, losciliadosenbranquiapresentaronlasmayoresprevalencias. Conrelaciónalossistemasdecultivo,lasalmejaspreengordadasenbatea estánmenosparasitadasquelasdelintermareal.Dependiendodelaépocadelañoen queserealiceelpreengordetambiénhaydiferencias,asílasalmejasquese preengordaronenveranoestabanmásparasitadasquelasdeprimavera.Lasalmejas delpreengordedeotoñode2004acabarontambiénmásparasitadasqueen primavera. Ningunodelosparásitosdetectadosenlasemillatieneimportanciapatológica, puescomomucho,desencadenabanunareacciónhemocitarialigeraalrededordel parásito. 6.3.2.2MADURACIÓNREPRODUCTIVA EnlatablaVI.9semuestranlastallasmediasenlongituddelaspartidas ensayadasenpreengorderealizadasenparalelotantoenbateacomoenintermareal,y elniveldediferenciaciónsexualencontradaencadaunadeellasmediantetécnica histológica,alinicioyfinaldelpreengorde.
Resultados 235 TABLAVI.9:Porcentaje(%)deindividuosdecadaloteencadaestadio.E1:Iniciodelagametogénesis; E2:Gametogénesisavanzada;E3:MadurezypuestayE4:Renovacióngonadal. I:Indeterminado;H:HembrayM:Macho. E1E2E3E4%total FechaTallaIHMHMHMHMIHM Controlinicial04/11/047,2±0,12967400000029674 Control final Batea11/04/0516,0±0,20001000000001000 Intermareal23/06/0512,2±0,30001000000001000 Controlinicial21/04/058,4±0,21853180110000185329 Control final Batea26/05/0513,1±0,300052317100005941 Intermareal21/07/0511,8±0,600000553114006931 Controlinicial06/07/057,2±0,25050000000050500 Control final Batea24/08/0514,7±0,203050132770008020 Int.OGrove03/11/0511,5±0,41010000036710107713 Int.Vilaxoán03/11/0512,0±0,21470003373014833 Controlinicial01/02/067,0±0,2047713137130006733 Control final Batea20/04/0613,1±0,201333047700005050 Intermareal26/05/0611,8±0,10840020640002872 Controlinicial27/04/066,8±0,2432107290000432829 Control finalBatea05/06/0612,7±0,201605220840007624 Lasdiversaspartidasquesecolocarontantoenlabateacomoenintermareal paraprocederalafasedepreengorde,presentaronunciertoniveldediferenciación sexual(Figura6.25),indicandoqueéstaseinicióyaenelcriadero.Lamayoríadelos individuosaliniciarelpreengorde(entre6,8y8,6mm)seencontrabanenestadiode iniciodegametogénesis,aunquetambiénseencontrabanindividuosenestadiode reposo,engametogénesisavanzadayenmadurez.Latallamínimaenlaquese detectóeliniciodelagametogénesisdentrodeestaspartidasfuede4,9mm. AB FIGURA6.25:ImágenesdemicroscopíaópticadesemilladeV.pullastra aliniciodelpreengorde. A:Hembraeniniciodegametogénesis.B:Machoengametogénesisavanzada. Barradeescala100 µ m.
6.Cultivoenelmedionatural 236 Alolargodelafasedepreengordelasemillavaavanzandodentrodesuciclo reproductivo(Figura6.26).Alfinalizarelpreengordeyaseencuentramayorporcentaje deindividuosenmadurezquealinicio,einclusoseobservanalgunosindividuosen renovacióngonadalparacomenzarotrociclodegametogénesis. 6.3.3CRECIMIENTODIFERENCIAL Alrealizarelestudiohistológicodemaduraciónreproductivadelasemilla utilizadaenlaspruebasdepreengordeenlasdistintasépocasdelaño,seobservóque enlamayoríadelaspartidasestudiadashabíaunelevadoporcentajedehembras.Se presentaenlasiguientetablaelporcentajedesexosqueseobservóencadaunadelas partidasalfinalizarlafasedepreengorde. TABLAVI.10:Porcentajedeindividuosdecadasexoencontradosenlasdistintaspruebasalfinalizarel preengordeyrelaciónhembras:machos(H:M)encadasubpartida. I:Indeterminado;H:HembrayM:Macho.Diferenciassignificativasennegrita. IniciopruebaFinalpruebaTalla(mm)%I%H%MH:M Otoño2004 Batea (11/04/05) 16,0±0,2 0100 01:0 ‐ Intermareal (23/06/05) 12,2±0,3 0100 01:0‐ Primavera2005Batea (26/05/05) 13,1±0,3 059 41 1,4:1 (χ2=1,200;g.l.=1;p >0,050) Intermareal (21/07/05) 11,8±0,6 069 31 2,2:1 (χ2=4,800;g.l.=1;p =0,028) Verano2005 Batea (24/08/05) 14,7±0,2 080 20 4:1(χ2=10,800;g.l.=1;p= 0,001) Int.OGrove (03/11/05) 11,5±0,4 10 77 13 5,9:1 (χ2=13,370;g.l.=1;p =0,000) Int.Vilaxoán (03/11/05) 12,0±0,2 14 83 327,6:1(χ2=21,160;g.l.=1;p =0,000) Invierno2006 Batea (20/04/06) 13,1±0,2 050 50 1:1(χ2=0,040;g.l.=1;p >0,050) Intermareal (26/05/06) 11,8±0,1 028 72 1:2,57 (χ2=6,533;g.l.=1;p =0,011) Primavera2006Batea (05/06/06) 12,7±0,2 076 24 3,16:1 (χ2=6,533;g.l.=1;p =0,011) AB FIGURA6.26:ImágenesdemicroscopíaópticadesemilladeV.pullastra alfinalizarelpreengorde. A:Hembraengametogénesisavanzadaenbatea.B:Hembraenmadurezenintermareal. Barradeescala100µm.
Resultados 237 Ensietedelasdiezpartidasseobservóquelaproporcióndehembrasera significativamentemayorqueladelosmachosysóloenunadelaspartidasse desviabasignificativamenteenfavordelosmachos,enlapruebadeintermareal iniciadaeninviernode2006.Endosdelaspruebaslarelaciónhembras:machosnose desviabasignificativamentedeunaproporción1:1,laspruebasdebateainiciadasen primaverade2005einviernode2006. AlanalizarlapartidadeV.pullastra,quehabíainiciadoelprocesode preengordeenotoñode2004,conunatallamediade7,2mm,alfinalizarel preengorde,conunatallafinalde16mmenbateay12,2mmenintermareal, presentabael100%dehembrasyningúnmacho.Lapartidahabíasidosuministrada porelcriaderodeA´Ostreira,S.L.Segúninformaciónproporcionadaporlos responsablesdelcriadero,procedíadelacabezadeunapuestadealmejababosa obtenidaduranteelveranodelaño2004.Enfuncióndeestosresultados,semantuvo ellotepreengordadoenbateahastaelmesdeseptiembre,momentoenelcualla semillateníaunatallamediade28mm,realizandorepetidosanálisishistológicos.De untotalde372individuosanalizadosduranteestosmesesposterioresalpreengorde, solamentesedetectaron4machos. Unahipótesisquepodríaexplicarlosresultadosanterioresseríaquelas hembraspresentenuncrecimientomayorquelosmachos.Lapresenciademás hembrasenestaspartidas,vendríafavorecidaporlasprácticashabitualesdetamizado yclasificacióndecabezasycolasqueserealizanenloscriaderos,yquesesuponeque eslacausaqueoriginaestaanormalidadfinaldeproporcióndesexosenloslotesde preengorde.Estoslotesdesemillaprocedíandecriaderosindustriales,porloquenose conocelaevolucióndelosmismosdurantelafasedecriadero.Probablemente,a excepcióndelapruebadeinviernode2006,elrestodelaspruebasserealizócon partidasdesemillaquesecorrespondíanconlascabezasdelaspuestas. Paraconfirmarestahipótesissepusieronenmarchadosexperiencias.Enla primerasecontrolaronlosdesdoblesdeunapuestacompletadurantelafasede criadero,yposteriormentesepreengordarontodosloslotesenbatea.Enlasegunda
6.Cultivoenelmedionatural 238 pruebaseutilizarondospuestas,quesemantuvieronencriaderohastaquelasemilla alcanzóuntamañoadecuadoparaserestudiada. 6.3.3.1SEGUIMIENTOENBATEA Deformaexhaustivasecontrolaronlosdiversosdesdoblesdeunapuestade almejababosadeldía22/02/2005parasuposteriorpreengordeenbateaapartirdel 26/05/05. Laprimeraseparaciónserealizóenelcriadero:Cabezas(1,2‐2,1mm)yColas (0,6‐1,2mm).Lasegundaseparaciónfuepreviaalaintroducciónenelsistemade preengordeenbatea:Cabezas+(10,10mm),Cabezas‐(8,79mm),Colas+(5,61mm)y Colas‐(4,29mm). EnlatablaVI.11seexponenlosresultadosentérminosdeporcentajesde hembrasymachosenlasdiferentessubpartidasoriginadas. TABLAVI.11:Porcentajesdehembrasymachosenlascuatrosubpartidas:(CB+)másgrandesdela cabeza,(CB‐)máspequeñasdelacabeza,(CL+)másgrandesdelacolay(CL‐)máspequeñasdelacola. Relaciónhembras:machosencadasubpartida.Diferenciassignificativasennegrita. Subpartida%H%MH:M CB+65,1034,901,94:1(χ2=5,120;g.l.=1;p=0,024) CB‐ 40,9059,101:1,15(χ2=2,000;g.l.=1;p>0,050) CL+82,9017,104,5:1(χ2=20,480;g.l.=1;p=0,000) CL‐ 50,0050,001:1(χ2=0,000;g.l.=1;p>0,050) Losresultadosparecenindicarque,enlaprimeradivisiónqueserealizóenel criadero(conuntamizde750µm),elposiblecrecimientodiferencialexistenteaesta tallanopermiteunaseparaciónfísica.Sinembargo,lasegundadivisiónpreviaal preengordeenbatea,síoriginaesaseparaciónfísicaentrehembrasymachos.Lasmás grandesdecadaunadelasfraccionesseparadasenelcriadero,másgrandesdelas cabeza(CB+)ymásgrandesdelacola(CL+),yacontienenmayoritariamentehembras,
Resultados 239 mientrasqueenlasmuestrascorrespondientesalasmáspequeñasdelacabeza(CB‐) ydelacola(CL‐)contienenmachosyhembras,confirmandoelmayorcrecimientode lashembrasenrelaciónconlosmachosenestafase. Lacomposiciónsexualdelasdiversasmarcasdeclase:14,5>x>11,5mm;11,5 >x>8,5mmy8,5>x>5,5mmdelacabeza,quesemuestrearonel26/05/2005(Tabla VI.12)apuntanenlamismadirección. TABLAVI.12:Porcentajesdehembras(%H)ymachos(%M),valoresdepesohúmedoindividual(Ph)y tallamedia(L)decadaclasedetalla.Relaciónhembras:machosencadasubpartida. Diferenciassignificativasennegrita. Marcadeclase Ph(mg)L(mm) %H%MH:M 14,5>x>11,5147,710,287,512,56,5:1(χ2=16,133;g.l.=1;p=0,000) 11,5>x>8,593,28,885,714,36,5:1(χ2=16,133;g.l.=1;p=0,000) 8,5>x>5,548,07,114,385,7 1:6,5(χ2=16,133;g.l.=1;p=0,000) EnlatablaVI.13semuestranlosresultadosdecrecimientodelasdiversas subpartidas. Amedidaquelasemillavacreciendolatasadecrecimientodisminuyey tiendenaigualarseaquellosindividuosquepartierondelmismogrupoenlaprimera división.Así,aliniciodelpreengordeladiferenciaentreCB+yCB‐esde1,31mm,lo querepresentaun13%delatallamientrasquealfinaldelpreengorde,ladiferencia entrelasdosesdetansólo0,76mm,un4%delatallafinal. Enlosdosgruposdelascolasestadiferenciatodavíaesmásperceptible.Al iniciodelpreengordehabíaun23%dediferenciaentrelasdostallas(1,32mm)yenla fechafinalseredujohastaun15%(2,95mm). Lashembraspresentan,enteoría,unmayorcrecimientoquelascolocaenlas partidasmásgrandesdelacabezaylacola(CB+yCL+).Sinembargo,lamaduración sexuallesprovocaunaposteriorralentizacióndelcrecimientorespectodelafracción
6.Cultivoenelmedionatural 240 máspequeña(CB‐yCL‐),porloquesidejáramoscrecerlasemilladurantemástiempo posiblementelasdosfraccionessesolaparían(CB+conCB‐yCL+yCL‐). TABLAVI.13:ParámetrosdelongitudL(mm),pesohúmedoindividualPh(mg)ytasadecrecimiento mensualenlongitudGL30yenpesoGW30delasdiversassubpartidas. Lastasasdecrecimientoenlosdoslotesdelacolasonmayoresquelosdos lotesdelacabeza,debidoaqueéstasempezaronelpreengordeconmenortallaque lasotras.Sinembargo,aliravanzandoelpreengorde,latasadecrecimientodisminuye yaigualtallaseobservanlasmismastasas. Enningunodelosloteslamortalidad,durantelafasedelpreengorde,superó al3%. Fecha26/05/0508/06/0521/06/05 07/07/05 19/07/05 09/08/05 24/08/0507/09/05 CB+ L(mm)10,1012,9816,24 18,65 21,11 21,88 GL30 57,8951,71 25,94 30,98 6,38 Ph(mg)144,73321,78655,34 1.017,47 1.507,21 1.689,11 GW30184,38164,14 82,49 98,24 17,99 CB‐ L(mm)8,7911,7914,58 17,74 19,58 21,12 GL30 67,7649,02 36,78 24,67 11,95 Ph(mg)93,16236,61465,04 867,52 1.187,21 1.509,92 GW30215,10155,93 116,91 78,43 37,97 CL+ L(mm) 5,61 9,39 11,69 16,33 18,0119,34 GL30 96,58 54,77 52,78 19,5815,27 Ph(mg) 22,30 114,75 230,77 667,28 909,991.141,06 GW30 307,16 174,67 167,65 62,0448,49 CL‐ L(mm) 4,29 5,47 7,60 12,32 14,5316,39 GL30 45,56 82,22 76,28 33,0026,25 Ph(mg) 9,55 20,65 58,55 272,46 459,57674,00 GW30 144,60 260,54 242,78 104,5682,06
Resultados 241 6.3.3.2SEGUIMIENTOENCRIADERO Seharealizadoelseguimientodelasemillaobtenidaendosdesoves controladosenelcriaderoycultivadossegúnloexplicadoenelcapítuloIII.Losdos cultivospartierondelarvasnacidasenfebrerode2008yunañodespués,todoslos individuosdelcultivoseencontrabanenunrangodetallasentre8y18mm.Fueen estemomentocuandoserealizóelestudiohistológicogonadalysecalculóel porcentajedemachosyhembrasenlasemilla.Paraellosehicierontressublotesen cadacultivo:almejaspequeñas(entre8y10mm),almejasmedianas(entre12y14 mm)yalmejasgrandes(entre16y18mm). Lasupervivenciadelasemilladurantelafasedepreengordequeserealizóen criaderofuediferentecomparandolosdoscultivos.Enelcultivo1,lasupervivencia desdequelasemillapresentabaunatallaconvalorescomprendidosentre2,5y5,5 mmhastaelfinaldelaexperiencia(entre8y18mm)fuedel65%,mientrasqueenel cultivo2fuetansólodel10%. EnlatablaVI.14sepresentanlosdatosdelestudiodesexosdecadaunodelos cultivos.Encuantoalaproporcióndesexos,enlapuesta1haymayornúmerode individuoshembraenlossublotesgrandeymediano,mientrasqueenelpequeñohay mayorproporcióndemachos.Entodoelcultivoseencontróun55%dehembrasyun 45%demachos.Enlapuesta2seencontrómayornúmerodeindividuoshembraen todoslossublotes,enlatotalidaddelcultivosóloseencontróun19%demachos, frenteal81%dehembras. Comosevioenlapruebarealizadaenbatea,losmachosparecequetienenun crecimientomenorduranteestafasedepreengorde.Estopodríaexplicarqueenel cultivo2,conunabajasupervivencia(10%),alfinaldelaexperienciaseencontraraun elevadoporcentajedehembras(81%),indicandoquelosmachospodríanhaber quedadoeliminadospormortalidad.
6.Cultivoenelmedionatural 248 ‐Postlarvario.Eneldesarrollopostlarvariohastalaobtencióndesemillapara preengorde,seobtuvounasupervivenciadel30%yalos90díasdelapuestalasemilla alcanzóunatallamediade4,70mm,momentoenelquesesacarondelcriaderopara suestabulaciónenelsistemadepreengorde.Enlasfigura6.31yenlatablaVI.17se muestralaevolucióndeldesoveduranteeldesarrollopostlarvario. ‐ Preengorde.Afinalesdemayosecomenzólafasedepreengordeen Barallobre.Separtíadeunasemillainicialde4,70mmyen4mesessellegóaunatalla de13,90mm.LaGL30duranteestafasefuede24,27ylasupervivenciafuedel83%.En latablaVI.18semuestranlosdatosyenlafigura6.32laevolucióndelcrecimiento duranteelpreengorde. HuevoLarvaDUmbonada Pediveliger Postlarva Días02813 17 Tamaño73±2,5µm103±5,2 µm 127±11,3 µm 190±22,5 µm 235±29,9µm Supervivencia50% Días172436 41 62 90 Tamaño235±29µm360±77µm 786±76 µm 942±132 µm 2.360±428 µm4.700±711µm Supervivencia30% FIGURA6.31: Evolucióndeldesarrollopostlarvario. TABLAVI.16:Evolucióndeldesarrollolarvarioenelcriadero. TABLAVI.17:Evolucióndeldesarrollopostlarvarioenelcriadero. y=0,0009x 1,9079 R²=0,9933 0 1 2 3 4 5 15 30 45 60 75 90 días Cultivopostlarvario Longitud(mm)
Resultados 249 TABLAVI.19:TasadecrecimientoysupervivenciaduranteelengordeenBarallobre. ‐Engorde.Enlafasedeengorde,lasemillasembradaenelparquedecultivo conunatamañomediode13,90mmalcanzóen15mesesunatallamediade31,55 mm,conunaGL30de5,59yunasupervivenciadel75%.Sehaestimadoeltiempoque tardaríanenllegaralatallacomercial(38mm)enbasealatasadecrecimiento observadaenestafasedeengorde,siendode18meses. EnlatablaVI.19semuestraelresumendelosdatosobtenidosduranteel engordeyenlafigura6.33laevolucióndurantelafasedeengorde. Talla Inicial (mm) Talla Final (mm) Peso Inicial (g) Peso Final (g) Días GL30GW30Supervivencia Preengorde4,70±1,1213,90±2,02 0,026 0,455 134 24,27 64,0883% Talla Inicial (mm) Talla Final (mm) Peso Inicial (g) Peso Final (g) Días GL30GW30Supervivencia Engorde13,90±2,0231,55±2,80 0,455 5,860 440 5,59 17,42 75% FIGURA6.32: Crecimientoenlongituddelasemilladurantelafasedepreengorde. TABLAVI.18: Crecimientoenlongituddelasemilladurantelafasedepreengorde. y=9,8024ln(x)‐ 39,094 R²=0,9822 0 2 4 6 8 10 12 14 90 110 130 150 170 190 210 días Preengorde Longitud(mm)
6.Cultivoenelmedionatural 250 Enlafigura6.34semuestralaevolucióndeldesovedesdesuetapaencriadero, hastaelpreengordeyengordeenelmedionatural.Laduracióndelcultivointegralde estaespecie,enestascondicionesdecultivo,seríade25meses:3mesesencriadero,4 mesesdepreengordeenmesasenintermarealy18mesesdeengordeenunparque intermareal. FIGURA6.34: Evolucióndeldesovedesdesuetapaencriadero hastaelpreengordey engordeenelmedionatural. FIGURA6.33:Crecimientoenlongituddurantelafasedeengorde. y=17,928ln(x)‐ 83,342 R²=0,9826 0 4 8 12 16 20 24 28 32 224 324 424 524 624 días Engorde Longitud(mm) y=‐0,0461x 2 +2,6111x‐ 2,4266 R²=0,9965 0 4 8 12 16 20 24 28 32 0 5 10 15 20 25 meses longitud(mm) Cultivointegral
Discusión 251 6.4DISCUSIÓN Losresultadosobtenidosenestetrabajoconfirmanquelaubicaciónmás favorableparaelpreengordedealmejababosaVenerupispullastra,eslabatea.En todaslaspruebasrealizadas,enlasqueseutilizóelsistemadecultivoenminibolsas, lasmayorestasasdecrecimientoseobtuvieronenlossistemasubicadosenlabatea enrelaciónconaquellossistemasubicadosenzonasintermareales.Además,la mortalidadproducidaenlossistemasdeminibolsasenlabateafueprácticamente nula(entre0y3,70%),mientrasqueenintermareallamortalidadregistradafue superior,convaloresentre4,04y31,71%. Ladiferenciadecrecimientoentrelasdosubicacionessedebeaqueenel intermarealelcultivoestásometidoalrégimenmareal,experimentandoemersionesy comoconsecuenciaparonesdealimentacióndiarios,loquesetraduceenmenores tasasdecrecimientoqueenlabatea.Enésta,laestabilidaddelmedioesmayor,ya quelacontinuainmersióndelsistemadecultivohacequeseproduzcaunamayor disponibilidaddelalimentoyunamayorestabilidaddelascondicionesambientales, loquealfinalsetraduceenunamejoradelcrecimiento.Enelcasodelaalmejababosa estacircunstanciaesimportanteyaquedesarrollasuvidanaturaldeformageneralen completainmersión. Latemperaturaóptimadecrecimientodelaalmejababosa,estaríaentornoa los20ºC(Albentosaetal.,1994).Enestetrabajoseencontrarontemperaturasde hasta23ºCenelsistemadepreengordeenelintermarealduranteelverano,mientras queenlabatea,enestamismaépoca,nosesobrepasaronlos20ºC. Elpotencialdecrecimientoenlasdosubicacionesvariódependiendodela épocadecultivo,yaquelatemperaturayelalimentodisponibleejercenunainfluencia directaenelcrecimientoydesarrollogametogénicodelosmoluscosbivalvos(Sastry, 1979yBeningeryLucas,1984).Afinalesdeotoñoyduranteelinviernola temperaturadelaguademaresbajay,asuvez,ladisponibilidaddefitoplancton
6.Cultivoenelmedionatural 252 tambiénesmenor,porloquelatasadecrecimientoseralentizaencualquieradelas dosubicacionesempleadasennuestrocaso.Desdelaprimaverahastaprincipiosdel otoño,latasadecrecimientoaumentacoincidiendoconlasubidadetemperaturayla abundanciadefitoplancton. Durantelaprimaverayverano,partiendodeunasemilladetallade5a7mm, senecesitan2mesesenbateay4enintermarealparaquelasemillaalcanceunatalla entre12‐14mm,queseconsideraóptimaparaefectuarlassiembrasenlaszonasde engorde.Silaépocadepreengordeserealizaduranteelotoño‐invierno,lasemilla precisaeldobledetiempoqueenlaprimavera‐veranoparaalcanzarlamismatallade siembra. DeentrelastresespeciescultivadasenGalicia,laalmejababosadebidoasu mayormetabolismo,eslaquemenosparóndecrecimientoexperimentadurantelos mesesdeinviernoylaquemayortasadecrecimientopuedealcanzar.Laalmejafinay japonesapresentanunatasamáximasemejante,diferenciándoseenquelaalmeja japonesaralentizamástardesucrecimientoconlallegadadelinviernoeiniciamás prontoelcrecimientopost‐invernal.Debidoasumayortasadecrecimiento,laalmeja babosademandamenoresdensidadesdecultivoenrelaciónalasotrasespecies (GarcíaFernándezetal.,2003). Comoseveclaramente,latasadecrecimientoobtenidaduranteelpreengorde, nosólodependedelsistema,laubicaciónylaépocadecultivo,sinoquetambiéndela densidaddecultivoylatallainicial. Dentrodelosparámetrosdecultivoladensidadesunodelosfactoresquemás influenciatieneenelcrecimientoyenlamortalidad;detalformaque,aunadensidad excesiva,elcrecimientopuedellegaradetenerseyaproduciraltosporcentajesde mortalidad(Martínezetal.,1997).Enestetrabajoseobtuvieronlosmejores resultadosdecrecimientoenlasdensidadesmásbajas(0,89kg/m2),obteniéndose dobletasadecrecimientoqueamayordensidad(3,58kg/m2).
Discusión 253 Noobstante,ladensidadóptimaqueadmiteundeterminadosistemade cultivodependedediversosfactores:laubicación,laestaciónanualylatallainicial delasemilla. Debidoalasdiferenciasdecrecimientoentreelintermarealylabatea,enel sistemademinibolsasempleadoenestetrabajo,elcrecimientosemostróinclusomás favorableaaltadensidadenbatea(3,58kg/m2),queadensidadmásbajaen intermareal(0,89kg/m2). Uncultivoadmitedensidadessuperioresenlasépocasdemenorcrecimiento (otoño‐invierno),mientrasqueenlosmesesdemayorcrecimiento(primavera‐verano) ladensidadinicialpuedellegaracuadriplicarseenunmes.Laperiodicidaddelas operacionesdedesdobleylimpiezahandeintensificarseenlasépocasdemayor temperaturaycontallasmáspequeñas.Enlíneasgenerales,conrelaciónalas prácticasdemanejodelasemilla,puededecirsequelosdesdoblesdebenrealizarse cuandolabiomasaestabuladaenlossistemasdecultivoseduplica. Encuantoalatallainicialdelasemilla,amenortamañoladensidadutilizada debesermenor,yaquealsersemilladepequeñotamaño,elnúmerodeunidadesque puedenintroducirseenelsistemaesmáselevado. Comohemosvisto,laubicación,laestaciónanualylatallainicialdelasemilla, sonfactoresimportantesalahoradeescogerladensidaddecultivo;aunqueésta siempredependerádeladisponibilidaddeespacio,delsistemaempleadoydela manodeobranecesaria.Enresumen,convienetenerencuentaaquellosaspectosque puedeninfluirdirectamenteenlarentabilidaddelsistemadepreengorde. Elpreengorderealizadoenlasminibolsasdemalla1mmparaalmejade3,8 mm,iniciadoenlaprimaveraenelsistemademinibolsasenbatea,sehademostrado viable,obteniéndoseunbuencrecimientoynopresentandoproblemasde mortalidad;indicandoqueesunsistemaválidoparaelpreengordedesemillade tamañomuypequeño.Unavezquealcanzanlatallaadecuada,queenépocas
6.Cultivoenelmedionatural 254 favorablesdecrecimientopuedeserdelordende15/20días,puedeestabularseyaen mallasconlucesde2mmyposteriormentede3mm,paraseguirelprocesohastael finaldelaetapadepreengorde,conresultadosexcelentesencuantoacrecimientoy supervivencia.EnunensayorealizadopordeSantiagoetal.(2009)enunsistemade flujoforzadoenCamariñas,lasemilladeV.pullastradeunatallainicialde3,3mm alcanzabaenunperíodode11a13díasunatallaalrededorde5mm. Losbuenosresultadosdesupervivenciaycrecimientoobtenidosconsemillade menortamañoalhabitual(retenidaentamiz1,5‐2mm)permitensolucionarunode losprincipalesproblemasenelcultivodealmeja,elpasodelcriaderoalmedionatural. Amedidaquelasemillacreceenelcriadero,aumentanlascomplicacionesde cultivarlaencondicionescontroladas.Labiomasasevamultiplicandoenpocotiempo deformaexponencial,loqueimplicaunconsiderableaumentoenlasnecesidadesde espacio,volumendeaguabombeadayproduccióndemicroalgas.Estesistema permitesacardelcriaderoalmejadepequeñotamaño(3‐4mm)paraquesealimente directamentedelmar,aumentandoasílacapacidaddeproduccióndeloscriaderos. Dadosestosresultadosdecrecimientodesemilladuranteelpreengordeen bateamedianteelsistemademinibolsasenjaulas,yutilizandounaestrategiade entradadediferentespartidasalolargodelaño,esperfectamenteviablequeenun viveroflotantededimensionesnormalesconlainstalacióndeunas30jaulas,pueda llevarseacaboelpreengordedealmejababosadeunacantidadentornoalos30/35 millonesdeunidadesalaño,partiendodeindividuosalrededordelos3ó4mmde tallainicial(Cerviño,2010). EnlastablasVI.20yVI.21semuestraunarevisiónlosresultadosobtenidospor otrosautoresenlossistemasdepreengordeyengordemáscomúnmenteutilizadosen Galicia.
TABLAVI.20:ComparacióndelosresultadosobtenidosporotrosautoresenlosdiversossistemasdepreengordeensayadosconV.pullastra. L1:Longitudinicial.L2:Longitudfinal.W1:Pesoinicial.W2:Pesofinal.GL30:Tasadecrecimientomensualenlongitud.GW30:Tasadecrecimientomensualenpeso. L1 (mm) L2 (mm) W1 (g) W2 (g) MesesFechainicio GL30 GW30SistemaLocalizaciónAutor 4,713,90,026 0,45 4,5Mayo2006 24,3 64,1 Sacosintermareal Barallobre Estetrabajo 7,8 15,0 12,1 0,078 0,514 0,258 1,5 3,5 Abril2005 40,5 12,3 117,1 34,2 Minibolsasbatea Minibolsasintermareal Cambados OGrove Estetrabajo 6,30 13,6 10,4 0,047 0,373 0,182 2,6 3,8 Febrero2006 29,6 13,2 79,3 35,4 Minibolsasbatea Minibolsasintermareal Cambados Vilaxoán Estetrabajo ‐ ‐ 86,6 225,32 1Verano2000 ‐102,45 Cestillosenbatea Cambados GarcíaFernándezetal. (2001) 5,015,0 ‐ ‐ 3‐4Abril1998 20,2 ‐Sacosintermareal Vilaxoán Abelláetal. (2001) 5,8 12,9 15,8 0,025 0,269 0,512 4Mayo2007 19,8 24,9 59,4 75,5 ContenedoresconflujoinvertidoCamariñasdeSantiagoetal.(2007) 7,110,60,058 0,186 2,3Febrero2006 17,2 49,9Tamboresdeflujoinvertido enefluentedepiscifactoría(Insuíña) OGroveGuerraetal.(2007) 7,113,30,058 0,316 2,3Febrero2006 26,9 72,7Tamboresdeflujoinvertido ensemillerotradicional(Remagro) OGroveGuerraetal.(2007) 10,424,8 ‐ ‐ 3,3Mayo2006 26,3 ‐Sistemadeplatillosenbatea Moaña PérezCorvachoyPardoVuelta(2007) 5,518,5‐ ‐ 4Mayo200930,7 ‐ SistemadeplatillosenbateaAPobradoCaramiñalJuanManuelPaisal (ProameixaFernández) Comunicaciónpersonal Discusión 255
TABLAVI.21:ComparacióndelosresultadosobtenidosporotrosautoresenlosdiversossistemasdeengordeensayadosconV.pullastra. L1:Longitudinicial.L2:Longitudfinal.W1:Pesoinicial.W2:Pesofinal.GL30:Tasadecrecimientomensualenlongitud.GW30:Tasadecrecimientomensualenpeso. L1 (mm) L2 (mm) W1 (g) W2 (g)MesesFechainicioGL30GW30 SistemaLocalizaciónAutor 13,9 31,5 0,4505,86014,5Octubre2006 5,6 17,4 ParqueintermarealBarallobre Estetrabajo 12,5 28 ‐ ‐ 8Abril1996 4‐ParqueintermarealVilaxoán deCooetal. (1997) 12,8 35,5 ‐ ‐ 17Abril2007 6,1 ‐ParqueintermarealCarril Santamaríaetal. (2009) 9,2 31,6 0,1206,02412Septiembre2008 10,1 32,3 ParqueintermarealVilaxoán Oteroetal. (2010) 15,0 38,0 ‐ ‐ 13‐16Julio1998 12,5‐17,5 ‐Parquesubmareal Vilaxoán Abelláetal. (2001) 8,0 38,1 ‐ ‐ 11 ‐ 13,8 ‐Cajasconsubstratoenbatea APobradoCaramiñal Parada(2007) 13,2 25,2 0,3602,9277Abril1996 9,4 30,4 Cajassinsubstratoenbatea Noia Rama Villar yReyMéndez(1997) 6.Cultivoenelmedionatural 256
Discusión 257 Esdifícilcompararlosresultadosobtenidosporotrosautoresyaque,lastasas decrecimientoobtenidasencadaunodelossistemas,estaríaninfluenciadasporla tallainicialyfinaldelasemilla,olaépocadeinicioyduracióndelcultivo. Aúnasí,seobservaquelosdatosobtenidosdelatasadecrecimientoenel preengorderealizadoenelintermareal,tantoenestetrabajocomoeneldeAbelláet al.(2001),soninferioresalosobtenidosenlosdiversossistemasrealizadosen completainmersión:minibolsas(estetrabajo),cestillos(GarcíaFernándezetal.,2001), semillerotradicionalyefluentedepiscifactoría(Guerraetal.,2007),contenedoresde flujoforzado(deSantiagoetal.,2007)ysistemadeplatillos(PérezCorvachoyPardo Vuelta,2007). Latasadecrecimientoalcanzadaenestetrabajoenlafasedeengordeenun parqueintermarealdeBarallobre,esparecidaalaobtenidaenunparqueenVilaxoán (deCooetal.,1997)yotroenCarril(Santamaríaetal.,2009),ambostambiénen intermareal.Estosresultadosnosindicanqueseobtuvieronmenorestasasde crecimientoquelosobtenidospordiversosautoresensubmareal:Abelláetal.(2001) enunparquesumergido,Parada(2007)encajasconsubstratoyRamaVillaryRey Méndez(1997)encajassinsubstrato,ambosenbatea.Igualmente,parecenconfirmar quelafasedeengorde,aligualqueenelpreengorde,seacortasiserealizaenun sistemapermanentementesumergido.Enunparqueintermarealsenecesitarían alrededorde18mesesdeengorde,mientrasquelatallacomercialenunsistema submarealsealcanzaríaalos12mesesdesdelafinalizacióndelpreengorde. Enbasealosresultadosobtenidosenestetrabajoyalosdeotrosautores,se estimaqueelcultivointegraldeestaespecie,desdelaobtencióndeldesovehastala tallacomercial,sepodríacompletaren18mesessiserealizaelpreengordeenun sistemaensuspensióndurantelaprimavera‐verano,ysecompletaconelengordeen unsistematambiénsumergido.Sielpreengordeyengordeserealizanensistemas intermareales,eltiempodecultivoaumentaríahastalos26meses.
7.Conclusiones 265 7.CONCLUSIONES CicloreproductivodeVenerupispullastraenelmedionatural: 1.‐Lacaracterísticaprincipaleslapresenciadegametosmadurosdurantetodoel año.Estoesdebidoaqueposeeungranperíododemadurezypuesta,abarcando principalmentelosmesesdesdefebreroajulio,alaausenciadeunperíododereposo, alaasincroníafoliculardentrodeunmismoindividuoyalaheterogeneidadde estadiosdentrodeunmismomuestreo. 2.‐Lacantidaddeglucógenoylípidosengónadaaumentaenlosmesesdeverano yotoñocoincidiendoconlagametogénesis,disminuyendoeninviernoyprimavera durantelaépocademáximamadurez.Laevolucióndelasproteínasengónadaes inversaaladelrestodecomponentes.Lacantidaddeproteínasydelípidostotalesen elrestodelindividuo,nopresentaningunarelaciónconlaevolucióndelciclo gametogénico.Encuantoalglucógeno,presentaunaevoluciónparalelaenlagónaday enelrestodelindividuo. 3.‐Lastrespoblacionesestudiadaspresentanunpatróndedesarrollosimilar.Las mayoresdiferenciassedanentrelasdospoblacionesdeOGrove,yaqueenladel bancointermarealelnúmerodeindividuosenmadurezdurantetodoelaño,esmenor queenlasubmareal.DestacatambiénlamayorprevalenciadePerkinsusolsenienla zonaintermarealdeOGroveconrelaciónalaszonassubmareales. DesarrolloembrionarioylarvariodeV.pullastra: 4.‐Elestudiodeldesarrolloembrionariomediantemicroscopíaelectrónica, permiteobservarquelainvaginacióndelaglánduladelaconchasedesarrollaenel estadiodegástrulayqueenlatrocóforaseobservacomounahendiduraabiertaenla partedorsal,apartirdelacualsesecretaelperiostraco.Treintahorasdespuésdela fertilización,ésteacabaenvolviendolaspartesblandasdelalarvaformandolalarvaD,
7.Conclusiones 266 aunquetendránquepasarcuarentayochohorastraslafecundaciónparaquelas valvasesténtotalmentecalcificadas. 5.‐ Enlapostlarva,ademásdelaprodisoconchaIdeaspectopunteadoyla prodisoconchaIIconanillosconcéntricos,sedistingueladisoconcha,conunaslíneas decrecimientomásmarcadasy,adiferenciadeotrosbivalvos,lapresenciade microvellosidades. ProtocolodecultivodeV.pullastraencriadero: 6.‐Sepuedenrecogerreproductoresencualquierbanconaturalgallegoyestación delaño.LacalidaddelaspuestasnoestárelacionadaconlosvaloresdelÍndicede Condición,lacomposiciónbioquímicayelíndicedemadurezdelosdistintoslotes usadoscomoreproductores. 7.‐Unmétodoefectivoparalainducciónalapuestaeslaestimulacióncon choquestérmicos,conunatemperaturamínimade12ºCymáximade20ºC.Sepueden mantenerlosreproductoresacondicionadosenelcriadero,duranteunmesomás, paraobtenervariaspuestasdeunmismolote,nomermandolacalidaddelasmismas. 8.‐Elcultivolarvariocomienza48hdespuésdelapuestayfinaliza aproximadamentealos18días,conuncrecimientomediodiarioentre7‐8µm/díay unasupervivenciamediadel56%.Alos25díasdeliniciodelcultivofinalizala metamorfosisylaspostlarvasdeunos40días,conunasupervivenciadel49%desdela fijación,presentanuntallade600‐700µm.Estosresultadosseconsiguenconuna temperaturadecultivode18±1ºCyunadietamixtaabasedediatomeasyflagelados. CultivodeV.pullastraenelmedionatural: 9.‐Elpreengordeenelmedionaturalsemuestraviableconsemillaapartirde3,5 mmdelongitudretenidaentamizde2mm.Losresultadossondistintossegúnlos sistemasylaubicación;así,seobtuvieronmayorestasasdecrecimientoenelsistema ubicadoenbateaqueenelmismosistemaenlazonaintermareal.Duranteelinvierno
7.Conclusiones 267 latasadecrecimientoseralentiza,necesitandoeldobledetiempoqueenelrestodel añoparaalcanzarlamismatalladesiembra.Enbatealasalmejasfinalizanel preengordemenosparasitadasquelasdelintermareal. 10.‐Lasdiversaspartidasdesemillautilizadasenlafasedepreengorde presentaronunciertoniveldediferenciaciónsexual,indicandoqueéstaseinicióenel criadero.Laalmejababosanacidaencriaderoenelinvierno,madurasexualmente duranteelpreengordeenprimavera,observandoindividuosde6mesesdeedadcon unagónadatotalmentedesarrollada. 11.‐Existeuncrecimientodiferencialenlosprimerosestadiosdevida,alcanzando lashembrasmayoresporcentajesenlascabezasdelaspuestas.Elpuntoenelqueel crecimientodiferencialsemanifiestasueleserapartirdeltamañoT2(3‐4mm)yse mantienehastaquelashembrasreducensutasadecrecimiento,porloquelas diferenciasdetallaypesoentrelascabezas(mayoritariamentehembras)ylascolas (compuestaspormachos)alfinaldelpreengordesevareduciendo. 12.‐Elcultivointegraldeestaespecie,desdelaobtencióndeldesovehastalatalla comercial,realizandoelpreengordeyengordeenunsistemaintermareal,se completaríaen26meses.Encondicionesóptimas,esdecirsisecomienzael preengordeenprimaveraenunsistemaensuspensiónyserealizaelengordetambién ensuspensión,eltiempodecultivoseríade18meses.
8.BIBLIOGRAFÍA
8.Bibliografía 271 8.BIBLIOGRAFÍA ABELLÁ,E.;MARTÍNEZ,M.;SEBE,M.P.;ALCALDE,A.;MOSQUERA,P.yPARADA,J.M. 2001.Experienciadecultivodealmejababosa(Venerupispullastra): preengordeyengordeenlaRíadeArousa,Galicia.MonografíasdelInstituto CanariodeCienciasMarinas.4:118‐123. ACKMAN,R.G.1989.Fattyacids.En:Ackman,R.G(ed).Marinebiogeniclipids,fatsand oils.CRCPress,Florida.1:103‐138. ADACHI,K.1979.Seasonalchangesoftheproteinlevelintheadductormuscleofthe clam,Tapesphilippinarum(AdamsandReeve,1850)withreferencetothe reproductiveseasons.Comp.Biochem.Physiol.64A:85‐89. AGUIRRE,P.1973.Guíadelmariscador.PlanmarisquerodeGalicia(ed). ALBENTOSA,M.;BEIRAS,R.yPÉREZCAMACHO,A.1994.Determinationofoptimal thermalconditionsforgrowthofclam(Venerupispullastra)seed. Aquaculture.126:315‐326. ÁLVAREZFARIÑA,P.2005.Dinámicareproductoradedosespeciesdealmejas autóctonasdelasRíasGallegas,Venerupisaurea(Gmelin,1790)yVenerupis pullastra(Montagu,1803);estudiohistológico,histoquímicoyestereológico. Tesisdoctoral.Univ.deSantiagodeCompostela. ÁLVAREZSEOANE,G.1960.Variaciónestacionaldelacomposiciónquímicadela almejababosaTapespullastraMont.Inv.Pesq.18:3‐32. ANDRÉ,C.;LINDERGARTH,M.;JONSSON,P.R.ySUNDBERG,P.1999.Species identificationofbivalvelarvaeusingrandomamplifiedpolymorphicDNA (RAPD):differentiationbetweenCerastodermaeduleandC.lamarcki.J.Mar. Biol.Ass.U.K.79:563‐565. ANSELL,A.D.;LOOSMORE,F.A.yLANDER,K.F.1964.Studiesonthehard‐shellclam, Venusmercenaria,intheBritishwaters.VolII.Seasonalcycleinconditionand biochemicalcomposition.J.Appl.Ecol.1:83‐95. ARANDA,J.A.2010.Desarrolloembrionarioylarvariodealmejafina,Ruditapes decussatus(Linné,1758):estudioalmicroscopioópticoyelectrónicode barrido.TrabajoFindeMaster.Univ.deSantiagodeCompostela. ARANDA,J.A.;OJEA,J.;NÓVOA,S.yMARTÍNEZPATIÑO,D.2009.Primerosdatosdela calidaddelaspuestas,enrelaciónalestadodelosreproductoresdedos especiesdealmejas:RuditapesdecussatusyRuditapesphilippinarum.ForoAc. Rec.Mar.RíasGalegas.12:617‐624.
8.Bibliografía 272 AVENDAÑO,M.yLEPENNEC,M.1997.Intraspecificvariationingametogenesisintwo populationsoftheChileanmolluscanbivalve,Argopectenpurpuratus (Lamarck).AquacultureRes.28:175‐182. BARBER,B.J.yBLAKE,N.B.1991.ReproductivePhysiology.En:Scallops:Biology, EcologyandAquaculture,DevelopmentsinAquacultureandFisheriesScience. Elsevier,Amsterdam.21:377‐428. BAYNE,B.L.1965.GrowthanddelayofmetamorphosisofthelarvaeofMytilusedulis (L).Ophelia.2:1‐47. BAYNE,B.L.1983.Thephysiologicalecologyofmarinemolluscanlarvae.En:Verdonk, N.H.;VandenBiggelaar,J.A.M.andTompa,A.S.(ed).TheMollusca.Vol.3. Development.AcademicPress,NuevaYork,USA. BAYNE,B.L.;GABBOT,P.A.yWIDDOWS,J.1975.Someeffectsofstressintheadultson theeggsandlarvaeofMytilusedulis.J.Mar.Biol.Assoc.U.K.675‐689. BELLOLIO,G.;LOHRMANN,K.yDUPRÉ,E.1993.Larvalmorphologyofthescallop Argopectenpurpuratusasrevealedbyscanningelectronmicroscopy.The Veliger.36:332‐342. BENINGER,P.G.yLUCAS,A.1984.Seasonalvariationsincondition,reproductive activityandgrossbiochemicalcompositionoftwospeciesofadultclam rearedinacommonhabitat:TapesdecussatusL.(Jeffreys)andTapes philippinarum(AdamsandReeve).J.Exp.Mar.Biol.Ecol.79:19‐37. BESNARD,J.Y.;LUBET,P.yNOUVELOT,A.1989.Seasonalvariationsofthefattyacid contentsoftheneutrallipidsandphospholipidsinthefemalegonadofPecten maximusL.Comp.Biochem.Physiol.93B(1):21‐26. BORRERO,F.J.1987.Tidalheightandgametogenesis:reproductionvariationamong populationsofGeukensiademissa.Biol.Bull.173:160‐168. BOUCHET,P.yROCROI.2010.NomenclatorofBivalveFamilies;withaclassificationof bivalvefamiliesbyR.Bieler,J.G.CarterandE.V.Coan.Malacologia.52(2):1‐ 184. BREESE,W.P.yROBINSON,A.1981.Razorclams,Siliquapatula(Dixon):Gonadal development,inducedspawningandlarvalrearing.Aquaculture.22:27‐33. CANNUEL,R.;BENINGER,P.G.;McCOMBIE,H.yBOUDRY,P.2009.Gilldevelopment anditsfunctionalandevolutionaryimplicationsintheBlueMusselMytilus edulis(Bivalvia:Mytilidae).Biol.Bull.217:173‐188.
8.Bibliografía 273 CARBALLAL,M.J.;LÓPEZ,C.;CERVIÑOOTERO,A.yMARTÍNEZPATIÑO,D.2006. PathologicalanalysisofseedclamRuditapesdecussatus,Venerupispullastra andRuditapesphilippinarumpre‐fatteningintheRíadeArousa(Spain). CongresoInternacionaldeAcuiculturaAQUA2006.Florencia.Italia.136. CARBALLAL,M.J.;CERVIÑOOTERO,A.yMARTÍNEZPATIÑO,D.2007. Parasitesand gonaddevelopmentinclamspre‐fattenedinthreedifferentsystems. CongresoInternacionaldeAcuiculturaAQUA2007.Estambul.Turquía.100. CASAS,S.M.2001.EstudiodelaPerkinsosisenlaalmejafina,Tapesdecussatus (Linnaeus,1758),deGalicia.Tesisdoctoral.Univ.deSantiagodeCompostela. CASAS,S.M.;VILLALBA,A.yREECE,K.S.2002.StudyofPerkinsosisinthecarpetshell clamTapesdecussatusinGalicia(NWSpain).I.Identificationofthe aetiologicalagentandinvitromodulationofzoosporulationbytemperature andsalinity.Dis.Aquat.Org.50:51‐65. CASSE,N.;DEVAUCHELLE,N.yLEPENNEC,M.1998.Embryonicshellformationinthe ScallopPectenmaximus(Linnaeus).TheVeliger.41:133‐141. CERVIÑO,A.1996.Programadedesarrolloproductivo,económico,profesionaly organizativodelmarisqueoapie.XuntadeGalicia. CERVIÑO,A.2010.Preengordedesemilladealmeja.En:Guerra,A.(ed).Jornadas sobrecriaderos,semillerosycultivosdesemilla.43‐51. CERVIÑO,A.;GUERRERO,S.yASKEW,C.1989.Over‐winteringofVenerupisdecussata inRíadeArousa.Galicia.EASSpecialPublication.10:59‐60. CHÁVEZVILLALBA,J.;POMMIER,J.;ANDRIAMISEZA,J.;POUVREAU,S.;BARRET,J.; COCHARD,J.C.yLEPENNEC,M.2002.Broodstockconditioningoftheoyster Crassostreagigas:originandtemperatureeffect.Aquaculture.214:115‐130. COFFROTH,M.A.yMULAWKAIII,J.M.1995.Identificationofmarineinvertebrate larvaebymeansofPCR‐RAPDspecies‐specificmarkers.Limnol.Oceanogr.40: 181‐189. CRAGG,S.M.1985.TheadductorandretractormusclesofveligerofPectenmaximus (Bivalvia:Pectinidae).J.Moll.Stud.51:276‐283. CRAGG,S.M.1989.TheciliatedrimofthevelumoflarvaeofPectenmaximus(Bivalvia: Pectinidae).J.Moll.Stud.55:492‐508. CRESPO,C.A.1989.HistofisiologíadelasreservasbioenergéticasdelmantodeMytilus galloprovincialisLmk.Tesisdoctoral.Univ.deSantiagodeCompostela.
8.Bibliografía 280 LANNAN,J.E.;ROBINSON,A.yBREESE,W.P.1980.Broodstockmanagementof CrassostreagigasII.Broodstockconditioningtomaximizelarvalsurvival. Aquaculture.21:337‐345. LARSEN,J.B.;FRISCHER,M.E.;RASMUSSEN,L.J.yHANSEN,B.W.2005.Single‐step nestedmultiplexPCRtodifferentiatebetweenvariousbivalvelarvae.Mar. Biol.146:1119‐1129. LAUCKNER,G.1983.DiseasesofMollusca:Bivalvia.En:Kinne,O.(ed).Diseasesof MarineAnimals.Vol.II.BiologischeAnstaltHelgoland.Hamburg.477‐459. LEPENNEC,M.1970.ElevagesaulaboratoiredeMollusquebivalves:morphogénèsede lacoquilledesVeneridae.Tesis3erciclo.Paris,Francia. LEPENNEC,M.1980.Thelarvalandpost‐larvalhingeofsomefamiliesofbivalve molluscs.J.Mar.Biol.Ass.U.K.60:601‐612. LEPENNEC,M.1981.Lesméthodesexpérimentalesinduisantlapontechezles mollusquesbivalvesmarins.Haliotis.11:139‐155. LEPENNEC,M.;GUEGUEN,F.;COCHARD,J.;PAULET,Y.yDORANGE,G.1990.Relations entrelecontenulipidiquedesovocytesdePectenmaximus(Mollusque, bivalve)etlesperformancesdeslarvesenélevage.Haliotis.10:101‐113. LEPENNEC,M.;BENINGER,P.G.;DORAGE,G.yPAULET,Y.1991.Trophicsourcesand pathwaystothedevelopinggametesofPectenmaximus(Bivalvia:Pectinidae). J.Mar.Biol.Ass.U.K.71:451‐463. LIVI,S.;CORDISCO,C.;DAMIANI,C.;ROMANELLI,M.yCROSETTI,D.2006. IdentificationofbivalvespeciesatanearlydevelopmentalstagethroughPCR‐ SSCPandsequenceanalysisofpartial18SrDNA.Mar.Biol.149:1149‐1161. LOOSANOFF,V.1954.Newadvancesinthestudyofbivalvelarvae.Am.Sci.42:607‐ 624. LOOSANOFF,V.yDAVIES,H.C.1963.Rearingofbivalvelarvae.Avd.Mar.Biol.1:1‐136. LOOSANOFF,V.;DAVIES,H.C.yCHANLEY,P.E.1966.Dimensionsandshapesoflarvae ofsomemarinebivalvemollusks.Malacologia.4:351‐435. LÓPEZ,C.1995.EstudiopatológicodelaalmejaRuditapesdecussatus(Linneaus,1758) cultivadaenGaliciaysusmecanismosdedefensa.TesisDoctoral.Univ.de SantiagodeCompostela. LORENZO,S.;FUENTES,J.yGONZÁLEZ‐FERNÁNDEZ,A.2003.IdentificationofMytilus galloprovincialislarvaefromtheGalicianRíasbymousemonoclonal antibodies.Aquaculture.219:545‐559.
8.Bibliografía 281 LORENZO,S.;GONZÁLEZ‐FERNÁNDEZ,A.;DEMIGUEL,E.yFUENTES,J.2005.Two monoclonalantibodiesfortherecognitionofMytilusspp.larvae:studieson culturedlarvaeandtestsonplanktonsamples.Aquaculture.250:736‐747. LOUZÁN,A.2008.Cicloreproductor,composiciónbioquímicaypatologíadelos progenitoresdeDonaxtrunculus(Linné,1758),deunbanconaturalde Valdoviño(NOGalicia),paralaobtencióndesemillaencriadero.Diplomade EstudiosAvanzados.Univ.deSantiagodeCompostela. LOUZÁN,A.;CERVIÑOOTERO,A.;NÓVOA,S.;OJEA,J.yMARTÍNEZPATIÑO,D.2007. Seguimientodelcicloreproductorydesarrollolarvariodeunapoblaciónde coquinaDonaxtrunculus(Linné,1758).ForoAc.Rec.Mar.RíasGalegas.10: 475‐481. LOUZÁN,A.;DACOSTA,F.;NÓVOA,S.;OJEA,J.yMARTÍNEZPATIÑO,D.2009.Estudio deldesarrollolarvariodeunapoblacióndecoquinaDonaxtrunculus(Linné, 1758).ActasdelXIICongresoNacionaldeAcuicultura.Madrid.572‐573. LOWRY,H.O.;ROSEBROUGH,N.J.;FARR,A.L.yRANDALL,R.J.1951.Protein measurementwiththeFolinfenolreagent.J.Biol.Chem.193:265‐275. LUBET,P.1959.Recherchessurlecyclesexueletl’emissiondesgamèteschezles MytilidaeetlesPectinidae(Moll.Bivalves).RevueTrav.Inst(scient.tech). Pêch.Marit.23:387‐548. LUBET,P.1986.Thereproductivestrategiesofmarinebivalvemolluscs.En:Advances inInvertebrateReproduction4.Porchet,M.;Andries,J.C.yDhainaut,A.(eds). Elsevier,SciencePublishers.401‐408. LUCAS,A.1965.Recherchesurlasexualitèdesmollusquesbivalves.ThèsesUniv. Rennes. MacARTHUR,R.H.yWILSON,E.O.1967.TheTheoryofIslandBiogeography.Princeton LandmarksinBiology. MAIA,F.;SOBRAL,M.P.yGASPAR,M.2006.Cicloreproductivoeprimeiramaturação deSolenmarginatuseVenerupispullastranaRiadeAveiro.Basescientíficas paraagestãodestesrecursos.Relat.Cient.Téc.IPIMAR,Sériedigital (http://ipimar‐iniap.ipimar.pt)nº30. MANN,R.1979.Somebiochemicalandphysiologicalaspectsofgrowthand gametogenesisinCrassostreagigasandOstreaedulissustainedatelevated temperatures.J.Mar.Biol.Ass.U.K.59:95‐110. MARSH,J.B.yWEINSTEIN,D.B.1966.Simplecarryingmethodfordeterminationof lipids.J.LipidRes.7:574‐576.
8.Bibliografía 282 MARTÍNEZ,I.;SILVA,A;DOMÍNGUEZ,L.;ÁLVAREZ‐FARIÑA,P.ySÁNCHEZ,J.L.2005. Efectocombinadodelfotoperíodoylaracióndealimentosobreel acondicionamientodeRuditapesdecussatus,Linné1758,encriadero.Actas delXCongresoNacionaldeAcuicultura.Gandía,Valencia.520‐521. MARTÍNEZ,M.;CERVIÑO,A.;COO,A.;GARCÍA,A.;MARTÍNEZPATIÑO,D.;NÓVOA,S.; OJEA,J.;SEBE,M.P.;CASAL,A.;FARIÑA,J.;MOSQUERA,P.yRODRÍGUEZ,R. 1997.Parámetrosbiológicosymedioambientalesdelpreengordedealmeja fina(Venerupisdecussata)ensistemassobreelevados.Xornadassobreo DesenvolvementoProdutivodoMarisqueoaPé.SantiagodeCompostela. MARTÍNEZPATIÑO,D.2002.EstudiodelosSolénidos,Solenmarginatus(Pennánt, 1777)yEnsissiliqua(Linné,1758),delosbancosnaturalesdelaRíade OrtigueirayRíadelBarquero:ciclogametogénico,composiciónbioquímicay cultivolarvario.TesisDoctoral.Univ.deSantiagodeCompostela. MARTÍNEZPATIÑO,D.;NÓVOA,S.yOJEA,J.2001.Cultivolarvarioypostlarvariode almejafina(Ruditapesdecussatus)yalmejababosa(Venerupissenegalensis) encriadero.ActasdeVIIICongresoNacionaldeAcuicultura.Santander.304‐ 306. MARTÍNEZPATIÑO,D.;OJEA,J.;NÓVOA,S.yRODRÍGUEZ,J.L.2002.Therelation betweentheoocytequalityoffourspeciesofbivalvemolluscsandtheirrates oflarvalgrowth.AbstractsAquacultureEurope2002.Specialpublicationnº 32.333‐334. MARTÍNEZPATIÑO,D.;NÓVOA,S.;OJEA,J.yRODRÍGUEZ,J.L.2007.Efectodela cantidaddealimentosuministradoaloscultivosenelcrecimientoy composiciónenácidosgrasosdelaslarvasdealmejababosaVenerupis pullastra(Montagu,1803).ActasdelXICongresoNacionaldeAcuicultura. Vigo.Pontevedra.411‐414. MARTÍNEZPATIÑO,D.;CERVIÑOOTERO,A.;LOUZÁN,A.;DACOSTA,F.;OJEA,J.y NÓVOA,S.2008.ProduccióndeespeciesdeinterésmarisqueroenlaPlanta deCultivosdeRibadeo.IIForoIberoamericanodelosRecursosMarinosyla Acuicultura.Cumaná.Venezuela.629‐633. MARTÍNEZPATIÑO,D;CERVIÑOOTERO,A.;ARANDA,J.A.;MONTES,J.yOJEA,J.2010. Primerosresultadosdelproyecto:desarrollodelcultivoencriaderodela almejarubiaVenerupisrhomboides.ForoAc.Rec.Mar.RíasGalegas. (pendientepublicación). MASSAPINA,C.;JOAQUIM,S.;MATIAS,D.yDEVAUCHELLE,N.1999.Oocyteand embryoqualityinCrassostreagigas(Portuguesestrain)duringaspawning periodinAlgarve,SouthPortugal.Aquat.LivingResour.12(5):327‐333.
8.Bibliografía 283 MATIAS,D.;JOAQUIM,S.;LEITAO,A.yMASSAPINA,C.2009.Effectofgeographic origin,temperatureandtimingofbroodstockcollectiononconditioning, spawningsuccessandlarvalviabilityofRuditapesdecussatus(Linné,1758). AquacultureInt.17:257‐271. MEDEIROSBERGEN,D.E.;OLSON,R.R.;CONROY,J.A.yKOCHER,T.D.1995.Distribution ofholoturianlarvaedeterminedwithspecies‐specificgeneticprobes.Limno. Oceanogr.40:1225‐1235. MEDHIOUB,M.N.1986.Recherchescytologiquessurlecycledereproductionet l’evolutiondesreserveschezlapalourdejaponaiseRuditapesphilippinarum (AdamsetReeve),(MollusqueLamelibranche).TheseUniv.Caen. MILLER,K.M.;JONES,P.yROUGHGARDEN,J.1991.Monoclonalantibodiesasspecies‐ specificprobesinoceanographicresearch:exampleswithintertidalbarnacle larvae.Mol.Mar.Biol.Biotechnol.1:35‐47. MORSE,D.;HOOKER,N.yMORSE,A.1977.Hydrogenperoxydeinducesspawningin molluskswithactivationofProstaglandinEndoperoxidesynthetase.Science. 196:298‐300. MORVAN,C.yANSELL,A.D.1988.Stereologicalmethodsappliedtoreproductivecycle ofTapesrhomboides.Mar.Biol.97:355‐364. MOUËZA,M.;GROS,O.yFRENKIEL,L.1999.Embryonic,larvalandpostlarval developmentofthetropicalclam,Anomalocardiabrasiliana(Bivalvia: Veneridae).J.Moll.Stud.65:73‐88. MOUËZA,M.;GROS,O.yFRENKIEL,L.2006.Embryonicdevelopmentandshell differentiationinChionecancellata(Bivalvia:Veneridae):anultrastructural analysis.Invertebr.Biol.125:21‐33. NÓVOA,S.2007.Metabolismolipídico,ácidosgrasosenelcultivolarvariodealmeja babosa,Venerupispullastra(Montagu,1803).“Calidadovocitaria,larvariay nutricionalconunaaproximaciónalusodelamicroencapsulaciónlipídica”. Tesisdoctoral.Univ.deSantiagodeCompostela. NÓVOA,S.;MARTÍNEZPATIÑO,D.;OJEA,J.;SOUDANT,P.;SAMAIN,J,F.;MOAL,J.y RODRÍGUEZ,J.L.2002.Ingestion,digestionandassimilationofgelatin‐acacia microcapsulesincorporatingdeuterium‐labeledarachidonicacidbylarvaeof theclamVenerupispullastra.J.ShellfishRes.21(2):649‐658. NÓVOA,S.;MARTÍNEZPATIÑO,D.;OJEA,J.yRODRÍGUEZ,J.L.2003.Composiciónen ácidosgrasosdelarvasDdealmejafinaRuditapesdecussatus(Linnè,1787), obtenidasapartirdeprogenitoresacondicionadosendiferentesregímenesde temperaturayprogenitoresdelmedionatural.ActasdelIXCongresoNacional deAcuicultura.Cádiz.
8.Bibliografía 284 NÓVOA,S.;OJEA,J.;MARTÍNEZPATIÑO,D.yRODRÍGUEZ,J.L.2007.Calidadovocitaria delaalmejababosaVenerupispullastra(Montagu,1803),relacionadaconsu contenidoenácidosgrasosω3yω6.ActasdelXICongresoNacionalde Acuicultura.Vigo.419‐422. OJEA,J.;NÓVOA,S.;MARTÍNEZPATIÑO,D.yRODRÍGUEZ,J.L.1999.Evaluacióndela calidadnutritivadelfitoplanctonentressistemasdecultivoempleadosen criaderosdemoluscos.ActasdelVIICongresoNacionaldeAcuicultura.Gran Canaria.317‐322. OJEA,J.;MARTÍNEZPATIÑO,D.yNÓVOA,S.2001Ciclogametogénicodeuna poblacióndealmejafina(Ruditapesdecussatus)yrelaciónconsucontenido englucógeno.ActasVIIICongresoNac.Acuicultura.309‐311. OJEA,J.;MARTÍNEZPATIÑO,D.;NÓVOA,S.;PAZOS,A.J.yABAD,M.2002.Contenidoy distribucióndeglucógenoenrelaciónconelciclogametogénicodeRuditapes decussatus(L.,1758)enunapoblaciónnaturaldelaslagunasdeBaldaio (Galicia,noroestedeEspaña).Bol.Inst.Esp.Oceanogr.18(1‐4):1‐7. OJEA,J.;MARTÍNEZPATIÑO,D.;NÓVOA,S.yCERVIÑOOTERO,A.2005.Ciclo gametogénicodeunapoblacióndealmejajaponesaRuditapesphilippinarum (AdamsyReeve,1850)enlaRíadeCamariñas(noroestedeEspaña)yrelación conlacomposiciónbioquímicamayoritaria.Bol.Inst.Esp.Oceanogr.21(1‐4): 337‐342. OJEA,J.;SILVA,A.;MARTÍNEZPATIÑO,D.;NÓVOA,S.;GARCÍAMARTÍNEZ,P.yABAD, M.2007.Condicionesóptimasparaelacondicionamientodelaalmejafina, Ruditapesdecussatus(Linnaeus,1758)encriadero.ActasdelXICongreso NacionaldeAcuicultura.Vigo.391‐394. OJEA,J.;PAZOS,A.J.;MARTÍNEZPATIÑO,D.;NÓVOA,S.;GARCÍAMARTÍNEZ,P.; SÁNCHEZ,J.L.yABAD,M.2008.Effectsoftemperatureregimeonbroodstock conditioningofRuditapesdecussatus.J.ShellfishRes.27(5):1093‐1100. OJEA,J.;MARTÍNEZPATIÑO,D.;NÓVOA,S.yCATOIRA,J.L.2009.Cultivodelerizode marencriadero:desovesydesarrolloslarvarios.ActasdelXIICongreso NacionaldeAcuicultura.Madrid.582‐583. OLSON,R.R.;RUNSTADLER,J.A.yKOCHER,T.D.1991.Whoselarvae?Nature.351:357‐ 358. OTERO,M.;BUA,I.yGUERRA,A.2010.Crecimientoyproduccióndetresespeciesde almejasprocedentesdediferentessistemasdepreengorde.ForoAc.Rec. Mar.RíasGalegas.12:299‐305.
8.Bibliografía 285 ORDÁS,M.C.;GÓMEZLEÓN,J.yFIGUERAS,A.2001.Histopathologyoftheinfectionby Perkinsusatlanticusinthreeclamspecies(Ruditapesdecussatus,R. philippinarumandR.pullastra)fromGalicia(NWSpain).J.ShellfishRes.20(3): 1019‐1024. PARADA,J.M.2007.Engordeaescalaindustrialdealmejababosa(Venerupis senegalensis)yalmejafina(Tapesdecussatus)enbateahastalatalla comercial.XICongresoNacionaldeAcuicultura.Vigo.415‐418. PATIL,J.;GUNASEKERA,R.;DEAGLE,B.yBAX,N.2005.SpecificdetectionofPacific Oyster(Crassostreagigas)larvaeinplanktonsamplesusingnested polymerasechainreaction.Mar.Biotechnol.7:11‐20. PAUGAM,A.;LEPENNEC,M.yGENEVIÉVE,A.F.2000.Immunologicalrecognitionof marinebivalvelarvaefromplanktonsamples.J.ShellfishRes.19:325‐331. PÉREZ,D.;LORENZOABALDE,S.;GONZÁLEZFERNÁNDEZ,A.yFUENTES.J.2009. InmunodetectionofMytilusgalloprovincialislarvaeusingmonoclonal antibodiestomonitorlarvalabundanceontheGaliciancoast:Optimizationof themethodandcomparisionwithidentificationbymorphologicaltraits. Aquaculture.156(5):991‐1006. PÉREZCAMACHO,A.1980.BiologíadeVenerupispullastra(Montagu,1803)y Venerupisdecussata(Linné,1767)(Mollusca,Bivalvia),conespecialreferencia alosfactoresdeterminantesdelaproducción.Bol.Inst.Esp.Oceanogr.281: 43‐76. PÉREZCAMACHO,A.yROMÁNCABELLO,G.1973.EldesarrollolarvariodeVenerupis pullastra.Bol.Inst.Esp.Oceanogr.165:215‐268. PÉREZCAMACHO,A.;ROMÁNCABELLO,G.yTORRECERVIGÓN,M.1977.Experiencias encultivosdelarvasdetresespeciesdemoluscosbivalvos:Venerupis pullastra(Montagu),Venerupisdecussata(Linnaeus)yOstreaedulis (Linnaeus).Bol.Inst.Esp.Oceanogr.235:215‐268. PÉREZCAMACHO,A.yROMÁN,G.1987.Lareproducciónenlosmoluscosbivalvos.pp: 133‐184.En:Espinosa,J.yLabarta,U.(ed).ReproducciónenlaAcuicultura. PlandeFormacióndeTécnicosSuperioresenAcuicultura(FEUGA).Madrid. PÉREZCORVACHO,E.yPARDOVUELTA,M.J.2007.Ocultivodeameixaenbatea:a experienciadaconfraríadeMoaña.ForoAc.Rec.Mar.RíasGalegas.9:263‐ 269. PHILLIPS,N.E.;WOOD,A.R.yHAMILTON,J.S.2008.Molecularspeciesidentificationof morphologicallysimilarmussellarvaerevealsunexpecteddiscrepancy betweenrelativeabundanceofadultsandsettlers.J.Exp.Mar.Biol.Ecol. 362(2):90‐94.
8.Bibliografía 286 RALEIGH,J.yKEEGAN,B.F.2007.EmbryonicdevelopmentinthebivalveScrobicularia plana(Semelidae)usingscanningelectronmicroscopy.Invert.Reprod. Develop.50:139‐144. RAMAVILLAR,A.yREYMÉNDEZ,M.1997.Preengordeenbateadesementedeameixa fina(Tapesdecussatus)ebabosa(Venerupispullastra).Xornadassobreo DesenvolvementoProdutivodoMarisqueoaPé.SantiagodeCompostela. ROBERT,R.;TRUT,G.yLABORDE,J.L.1993.Growth,reproductionandgross biochemicalcompositionoftheManilaclamRuditapesphilippinaruminthe bayofArcachon.France.Mar.Biol.116:291‐299. RODRÍGUEZ,S.;QUINTANA,R.;LAMAS,L.;AYENSA,G.;VELASCO,F.J.yPASCUAL,C. 1993.Etudecomparativeducyclegamétogéniqueetcomposition biochimiquedeTapesdecussatusetRuditapesphilippinarumdanslaRíade MurosyNoya.Production,EnvironmentandQuality,BordeauxAquaculture 92.EuropeanAquacultureSociety.SpecialPublicationNº18,Ghent,Belgium. RODRÍGUEZMOSCOSO,E.2000.Histofisiologíadelareproduccióndealmejafina Ruditapesdecussatus(Linné,1758),enlaRíadeArosa(Poblaciónnaturaly poblacióndecultivo).TesisDoctoral.Univ.deSantiagodeCompostela. RODRÍGUEZMOSCOSO,E.;PAZO,E.J.;GARCÍA,A.yFERNÁNDEZCORTÉS,F.1992. ReproductivecycleofManilaclam,Ruditapesphilippinarum(Adamsand Reeve1850)inRíadeVigo(NWSpain).Sci.Mar.56(1):61‐67. RODRÍGUEZMOSCOSO,E.;ARNAIZ,R;COO,A.;MARTÍNEZPATIÑO,D.;SILVA,A.y VARELA,J.A.1993.ProcesodemaduraciónyacondicionamientodeTapes decussatus(Linné,1787)fueradelaépocanatural.ActasIVCongresoNac. Acuicultura.335‐340. RODRÍGUEZMOSCOSO,E.yARNAIZ,R.1998.Gametogenesisandenergystorageina populationofthegroovedcarpet‐shellclam,Tapesdecussatus(Linné,1787), innorthwestSpain.Aquaculture.162:125‐139. ROMÁN,G.1989.Efectodelcicloreproductivoyacondicionamientoeneldesarrollo larvario,fijaciónyposteriorcrecimientodesemilladeOstreaedulisLinné 1758.TesisDoctoral.Univ.deSantiagodeCompostela. ROMÁN,G.yPÉREZCAMACHO,A.1976.Cultivodelarvasdevieira,Pectenmaximus (Linnaeus),enlaboratorio.Bol.Inst.Esp.Oceáno.223.1‐17. RUIZ,C.1992.ComposiciónbioquímicaycicloreproductorenOstreaedulisL.,y CrassostreagigasTh.TesisDoctoral.Univ.deSantiagodeCompostela.
8.Bibliografía 287 SANTAMARÍA,I.;OTERO,M.;FERNÁNDEZ,M.yGUERRA,A.2009.Engordedealmeja babosa,Venerupispullastra(Montagu,1803),enlosparquesdeCarril,Ríade Arousa(Pontevedra).ForoAc.Rec.Mar.RíasGalegas.11:371‐376. SASTRY,A.N.1979.Pelecypoda(excludingOstridae).En:ReproductionofMarine Invertebrates.AcademicPress,NewYork.5:113‐292. SEDANO,F.J.1992.Contribuciónalestudiodelmetabolismoenergéticodurantelos desarrollosembrionarioylarvarioenMytilusgalloprovincialisLamark.Tesis Doctoral.Univ.deSantiagodeCompostela. SEMENIKHINA,O.Y.;KOLOTUKHINA,N.K.yEVSEEV,G.A.2006.Morphologyofvenerid (Bivalvia,Veneridae)larvalshellsfromtheSeaofJapan.Zool.Zhurnal.85(9): 1067‐1075. SILBERFELD,T.yGROS,O.2006.EmbryonicdevelopmentofthetropicalbivalveTivela mactroides(Born,1778)(Veneridae:subfamilyMeretricinae):aSEMstudy. Cah.Biol.Mar.47:243‐251. TARDY,J.yDONGARD,S.1993.LecomplexeapicaldelavéligèredeRuditapes philippinarum(AdamsetReeve,1850)MollusqueBivalveVénéridé.C.R.Acad. Sci.Ser.3.316:177‐184. THOMPSON,R.J.;RATCLIFFE,N.A.yBAYNE,B.L.1974.Effectsofstarvationonstructure andfunctioninthedigestiveglandofthemussel(MytilusedulisL.).J.Mar. Biol.Ass.U.K.,54:699‐712. TORO,J.E.1998.Molecularidentificationoffourspeciesofmusselsfromsouthern ChilebyPCR‐basedmolecularmarkers:thepotentialuseinstudiesinvolving planktonicsurveys.J.ShellfishRes.17:1203‐1205. VILLALBA,A.;CARBALLAL,M.J.yLÓPEZ,M.C.1993a.Estudiodelciclogonadaldetres especiesdealmeja,Ruditapesdecussatus,VenerupispullastrayVenerupis rhomboides,delasríasgallegas.ActasIVCongresoNac.Acuicultura.341‐346. VILLALBA,A.;LÓPEZ,M.C.yCARBALLAL,M.J.1993b.Parásitosyalteraciones patológicasdetresespeciesdealmejas,Ruditapesdecussatus,Venerupis pullastrayVenerupisrhomboides,enlasríasgallegas.ActasIVCongresoNac. Acuicultura.551‐556. VILLALBA,A.;CARBALLAL,M.J;LÓPEZ,C.;CABADA,A.;CORRAL,L.yAZEVEDO,C.1999. Branchialrickettsia‐likeinfectionassociatedwithclamVenerupisrhomboides mortality.Dis.Aquat.Org.6:53‐60.
8.Bibliografía 288 VILLALBA,A.;CASAS,S.M.;LÓPEZ,C.yCARBALLAL,M.J.2005.Studyofperkinsosisin thecarpetshellclamTapesdecussatusinGalicia(NWSpain).II:Temporal patternofdiseasedynamicsandassociationwithclammortality.Dis.Aquat. Org.65:257‐267. WALKER,R.L.yHEFFERMAN,P.B.1994.Temporalandspatialeffectsoftidalexposure onthegametogeniccycleofthenorthernquahog,Mercenariamercenaria (Linnaeus,1758),incoastalGeorgia.J.ShellfishRes.13:479‐486. WALNE,P.R.1966.Experimentsinthelarge‐scalecultureofthelarvaeOstreaedulisL. Fish.Invest.Min.Agric.Fish.Food(G.B.).Ser2.25. WILSON,J.ySEED,R.1974.ReproductioninMytilusedulisL.(Mollusca:Bivalvia)in CarlingfordLough,NorthernIreland.IrishFisheriesInvestigationsB.15:1‐30. WINBERG,G.G.1971.Methodsfortheestimationofproductionofaquaticanimals. AcademicPress,London. XIE,Q.yBURNELL,G.M.1994.Acomparativestudyofthegametogeniccyclesofthe clamsTapesphilippinarum(AdamsandReeve,1850)andTapesdecussatus (Linnaeus)onthesouthcoastofIreland.J.ShellfishRes.13(2):467‐472. YAN,X.;ZHANG,G.yYANG,F.2006.Effectsofdiet,stockingdensity,and environmentalfactorsongrowth,survival,andmetamorphosisofManilaclam Ruditapesphilippinarumlarvae.Aquaculture.253:350‐358. ZAR,J.H.1996.Biostatisticalanalysis.Thirdedition.PrenticeHallInc.NuevaYersey. USA. ZHANG,G.yYAN,X.2006.Anewthree‐phaseculturemethodforManilaclam, Ruditapesphilippinarum,farminginnorthernChina.Aquaculture.258:452‐ 461.